Summary

Isolatie en Cultuur van de Muis Primaire Pancreatic Acinaire Cells

Published: August 13, 2013
doi:

Summary

In deze publicatie beschrijven we een snelle en gemakkelijke werkwijze voor het isoleren en kweken van primaire acinaire cellen van de pancreas muizen. Deze methode vormt een waardevolle benadering van de fysiologie van verse primaire normale / getransformeerde exocriene pancreas cellen te bestuderen.

Abstract

Dit protocol maakt snelle isolatie (minder dan 1 uur) van muizen pancreas acini, waardoor ze in kweek te handhaven gedurende meer dan een week. Meer dan 20 x 10 6 acinaire cellen kunnen worden verkregen uit een muis alvleesklier. Dit protocol biedt de mogelijkheid om zelfstandig liefst 10 pancreases verwerken parallel. Omdat behoudt acinaire architectuur, dit model geschikt voor het bestuderen van de fysiologie van de exocriene pancreas in vitro in tegenstelling tot cellijnen van pancreatische tumoren, die vele genetische veranderingen waardoor geheel of gedeeltelijk verlies van hun acinaire differentiatie tonen.

Introduction

Een vaak voorkomend probleem voor onderzoekslaboratoria aan exocriene pancreas weefsel is de moeilijkheid kweken acinaire cellen in vitro gedurende een periode die lang genoeg is om een lange-termijn experiment mogelijk.

Een factor belemmert de ontwikkeling van dergelijke kweeksystemen is de intrinsieke gevoeligheid van pancreatische weefsel experimentele manipulatie vanwege het hoge gehalte in glycolytische, proteolytische en lipolytische enzymen, die letterlijk verteren de pancreas weefsel wanneer ze vrijkomen bij de isolatie van pancreatische cellen.

Een tweede factor is het opmerkelijk vitro plasticiteit van acinaire cellen, die de neiging hebben om hun secretie kenmerken verliezen en transdifferentiate andere rijpe cellen, zoals pancreatische ductale cellen of hepatocyt-achtige cellen 1. In vitro, heeft deze plasticiteit is afhankelijk van de experimentele condities (zoals kweekmedium samenstelling) 2 </sup> en introduceert een mate van complexiteit in het ontwerp van geschikte kweekomstandigheden voor exocriene pancreas cellen 1.

Verscheidene werkwijzen zijn ontwikkeld voor de isolatie en kweek van acinaire cellen, eerst van de cavia pancreas 3-5. In eerste instantie, deze protocollen betrokken vertering van pancreas weefsel met collagenase, chymotrypsine, en een protease cocktail, met de uiteindelijke isolatie door krachtige mechanische dissociatie. De pancreatische cellen die op deze wijze getoond abnormale structurele en functionele kenmerken, met name een verlies van apicale structuren en aanzienlijke schade aan de membraanreceptoren. Geïsoleerde cellen in stand bleef voor slechts 1 of 2 dagen.

Voorbereiding van verspreide acini onderhoudt hun intra-en intercellulaire architectuur, behoud van celmembranen, beperken van schade aan de oppervlakte receptoren, en daarmee het verbeteren van exocriene secretie als respons op secretagogen 6-8. Als een automalt, deze methode biedt het grote voordeel van acinar levensvatbaarheid van de cellen uit te breiden tot 7-10 dagen in vitro. Bovendien is deze methode nog liever acinaire cellen geïsoleerd 9-12 vanwege onderhoud van intercellulaire contacten, waaronder mobiele koppeling gap junctions, is een essentiële factor van de exocriene acinaire cel-fenotype 13.

Aangezien de dedifferentiatie van acinaire cellen en hun transdifferentiatie ductale cellen is een van de voorgestelde mechanismen voor het ontstaan ​​van agressieve exocriene pancreas kanker 14 de gedispergeerde acini model ook een adequaat systeem alvleesklier plasticiteit en de daaropvolgende moleculaire mechanismen te bestuderen. Verder in combinatie met het gebruik van genetisch gemodificeerde dieren 15,16 en de ontwikkeling van technieken voor genoverdracht (2 adenovirale of lentivirale transductie, nanodeeltjes worden gebruikt, enz.), dit in vitro primaire acinaire cellen bij kanzeer nuttig zijn om te bepalen hoe verschillende genetische disfuncties de regelingen inzake acinaire cel differentiatie of dedifferentiatie en dienen beter begrip van de moleculaire gebeurtenissen die verantwoordelijk zijn voor het ontstaan ​​van pancreatitis, precancereuze letsels en veranderingen in cel plasticiteit.

Isolatie van verspreide acini is de aanpak die we gebruiken in ons laboratorium om cultuur acinaire cellen. We beschrijven hier en discussiëren over de gebruikte methode. Het gaat enzymatische dissociatie van pancreatische weefsel (met bacterieel collagenase) gekoppeld met mechanische verbreking zonder dissociatie van acinaire cellen. Terwijl de meeste protocollen betrekking hebben op het kweken van de acini, hetzij in suspensie of op speciaal behandelde plastic substraten, we groeien ze in suspensie slechts kort (voor 24 uur), daarna zaaien ze op een matrix steigers wanneer langdurige celcultuur vereist.

Dit protocol maakt een snelle isolatie (minder dan 1 uur) van gedispergeerde ac alvleesklierini, duurzaam is voor meer dan een week in de cultuur. Het maakt isolatie van meer dan 20 x 10 6 acinaire cellen per muis alvleesklier. De eenvoud maakt het mogelijk om onafhankelijk verwerken liefst 10 alvleesklier in parallel. Door het handhaven van de intra-en intercellulaire architectuur van acini en daarmee de acinaire fenotype van geïsoleerde primaire cellen, dit model is een systeem waar de studie van transdifferentiatie mechanismen, zoals alle andere exocriene pancreas thans beschikbare modellen zijn afgeleid van de pancreas tumoren weergeven vele genetische veranderingen leidt tot cellulaire transformatie.

Protocol

Alle procedures werden door een ethiek commissie goedgekeurd onder de regelgeving van overheidsgezag ("Comite d'Evaluation Commun au Centre Leon Berard, à l'Animalerie de transit de l'ENS, au PBES et au laboratoire P4" (CECCAPP)). Muizen werden in een specifiek pathogeen-vrije dierlijke faciliteit in het "Plateforme AniCan, Centre Leon Berard" (Lyon, Frankrijk) onderhouden en behandeld in overeenstemming met de institutionele richtlijnen. Een schematische wee…

Representative Results

Figuur 1 schematiseert de "verspreide" acini methode voor het primaire acinaire cellen isoleren. De kritische stappen die moeten strikt worden nageleefd tijdens het protocol, beschreven in de discussie deel. Om de verwijdering te vergemakkelijken, de pancreas moet worden vanuit het abdomen samen met de aangehechte milt (figuur 2). Beide organen moeten apart worden gesneden, en de overblijvende vetweefsel die nog kunnen worden gehecht aan de alvlees…

Discussion

In dit protocol beschrijven we een werkwijze voor het isoleren acinaire cellen. Deze methode maakt het mogelijk om meer dan 20 x 10 6 acinaire cellen per dier isoleren in minder dan 1 uur. Dankzij de snelle en eenvoudige implementatie (maar liefst 10 pancreases kan onafhankelijk per experiment parallel worden verwerkt), lijkt dit protocol als een goed compromis tussen de bestaande isolatie methoden 3-5,9-12,17.

Kritische stappen / Trouble-shooting

<p class=…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken het personeel van AniCan (CRCL, Lyon) voor hun technische bijstand met de verzorging van dieren. Dit werk werd ondersteund door het Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale (INSERM Avenir Program), de Ligue Nationale Contre le Cancer, door de Association pour la Recherche sur le Cancer, door het Institut National du Cancer, en door beurzen uit de Ligue Nationale Contre le Cancer (JG), van het Institut National du Cancer (JG), van het Ministère de l'Enseignement Superieur et de la Recherche van Frankrijk (RMP en DFV) en van de Association pour la Recherche sur le Cancer ( DFV).

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
0.2 μm filter Dutscher 146560
10 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357551
100 μm filter Beckton Dickinson 352360
100 mm Petri dish Beckton Dickinson 353003
1000 μl filter tips Starlab S1122-1830
20 μl filter tips Starlab S1120-1810
200 μl filter tips Starlab S1120-8810
25 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357535
5 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357543
50 ml polypropylene tube Beckton Dickinson 352070
6-well plate Beckton Dickinson 353046
Acetic acid 100% VWR BDH Prolabo 20104.298
Collagenase IA Sigma-Aldrich C2676
Curved forceps, Dumont #7 World Precision Instruments 14188 To sterilize before use
Dissecting scissors, straight World Precision Instruments 14393 To sterilize before use
Epidermal Growth Factor, human Promokine C-60180
Ethanol absolute (AnalaR Normapur) VWR BDH Prolabo 20821.310
Fetal Bovine Serum Lonza 14-801F
Forceps, Dumont #5 World Precision Instruments 14098 To sterilize before use
Hank’s Balanced Salt Solution 1x Gibco 14025050
HEPES 1 M (pH 6.98-7.30) Lonza 17-737F
Incubator O2/CO2 Sanyo MCO-19M
Inverted microscope Nikon Eclipse TS100
Matrigel Beckton Dickinson 356234
Microbiological Safety Cabinet, level II Faster SafeFast Elite 212 S
Noyes scissors, sharp/sharp tips, German World Precision Instruments 500228-G To sterilize before use
Penicillin-Streptomycin mixture Gibco 15140122
Phosphate Buffer Saline 10x Gibco 14200067
Pipet-Aid Drummond Scientific Company Pipet-Aid XP
Pipetman P1000 Gilson F123602
Pipetman P20 Gilson F123600
Pipetman P200 Gilson F123601
Refrigerated centrifuge Eppendorf 5810R
Scalpel Paramount Surgimed Ltd. Disposable Scalpel Size 23
T25 flask, 25 cm2 Sigma-Aldrich Z707481
Trypsin inhibitor, from Glycine Max Sigma-Aldrich T6522
Type I collagen Beckton Dickinson 354236
Waymouth’s medium Gibco 31220-023

Riferimenti

  1. Lardon, J., Bouwens, L. Metaplasia in the pancreas. Differentiation. 73, 278-286 (2005).
  2. Sphyris, N., Logsdon, C. D., Harrison, D. J. Improved retention of zymogen granules in cultured murine pancreatic acinar cells and induction of acinar-ductal transdifferentiation in vitro. Pancreas. 30, 148-157 (2005).
  3. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Structural and functional characterization of isolated pancreatic exocrine cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 69, 3028-3032 (1972).
  4. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. I. Dissociation technique and morphologic characteristics of separated cells. J. Cell. Biol. 63, 1037-1056 (1974).
  5. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. II. Functional characteristics of separated cells. J. Cell. Biol. 63, 1057-1073 (1974).
  6. Schultz, G. S., et al. Guinea pig pancreatic acini prepared with purified collagenase. Exp. Cell Res. 130, 49-62 (1980).
  7. Williams, J. A., Korc, M., Dormer, R. L. Action of secretagogues on a new preparation of functionally intact, isolated pancreatic acini. Am. J. Physiol. 235, 517-524 (1978).
  8. Logsdon, C. D., Williams, J. A. Epidermal growth factor binding and biologic effects on mouse pancreatic acini. Gastroenterology. 85, 339-345 (1983).
  9. Han, B., Logsdon, C. D. Cholecystokinin induction of mob-1 chemokine expression in pancreatic acinar cells requires NF-kappaB activation. Am. J. Physiol. 277, 74-82 (1999).
  10. Ji, B., Kopin, A. S., Logsdon, C. D. Species differences between rat and mouse CCKA receptors determine the divergent acinar cell response to the cholecystokinin analog JMV-180. J. Biol. Chem. 275, 19115-19120 (2000).
  11. Ji, K. A., Yang, M. S., Jou, I., Shong, M. H., Joe, E. H. Thrombin induces expression of cytokine-induced SH2 protein (CIS) in rat brain astrocytes: involvement of phospholipase A2, cyclooxygenase, and lipoxygenase. Glia. 48, 102-111 (2004).
  12. Gaiser, S., et al. Intracellular activation of trypsinogen in transgenic mice induces acute but not chronic pancreatitis. Gut. 60, 1379-1388 (2011).
  13. Logsdon, C. D., Williams, J. A. Pancreatic acinar cells in monolayer culture: direct trophic effects of caerulein in vitro. Am. J. Physiol. 250, 440-447 (1986).
  14. Stanger, B. Z., Dor, Y. Dissecting the cellular origins of pancreatic cancer. Cell Cycle. 5, 43-46 (2006).
  15. Vincent, D. F., et al. Tif1gamma suppresses murine pancreatic tumoral transformation by a smad4-independent pathway. Am. J. Pathol. 180, 2214-2221 (2012).
  16. Vincent, D. F., et al. Inactivation of TIF1gamma cooperates with Kras to induce cystic tumors of the pancreas. PLoS Genet. 5, e1000575 (2009).
  17. Dorrell, C., et al. Isolation of mouse pancreatic alpha, beta, duct and acinar populations with cell surface markers. Mol. Cell Endocrinol. 339, 144-150 (2011).
  18. Case, R. M. Synthesis, intracellular transport and discharge of exportable proteins in the pancreatic acinar cell and other cells. Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 53, 211-354 (1978).
  19. Blauer, M., Nordback, I., Sand, J., Laukkarinen, J. A novel explant outgrowth culture model for mouse pancreatic acinar cells with long-term maintenance of secretory phenotype. Eur. J. Cell. Biol. 90, 1052-1060 (2011).
check_url/it/50514?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Gout, J., Pommier, R. M., Vincent, D. F., Kaniewski, B., Martel, S., Valcourt, U., Bartholin, L. Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells. J. Vis. Exp. (78), e50514, doi:10.3791/50514 (2013).

View Video