Summary

細胞内小胞の追跡への応用:変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

Published: October 01, 2014
doi:

Summary

In this video protocol we track – at high speed and in three dimensions – fluorescently labeled lysosomes within living cells, using the orbital tracking method in a modified two-photon microscope.

Abstract

このビデオプロトコルの目的は、改変された二光子顕微鏡1を用いた三次元蛍光軌道粒子追跡実験を行い、分析する方法を議論することである。従来のアプローチ(ラスタスキャンまたは広視野フレームのスタックに基づく)とは対照的に、3D軌道追跡は、3次元変位を局所化し、高い空間(10nmの精度)と時間分解能(50 Hzの周波数応答)で追従させるミクロン2、数百の長さスケールに移る蛍光粒子。方法は、追跡される物体の周りの円軌道を実行するために二光子レーザー走査顕微鏡のハードウェアを制御フィードバックアルゴリズムに基づいている:フィードバック機構は、変位を制御することにより、中央に蛍光被写体を維持する走査ビーム3-5。この技術の利点を実証するために、私たちはアル中で動きの速い細胞小器官、リソソームを、続いてivingセル6,7。細胞は、標準的なプロトコルに従って播種し、商業的にリソソーム色素を用いて染色した。私たちは、生きた細胞内の3D軌道追跡実験を行うために、短時間のハードウェア構成をより詳細に制御ソフトウェアを議論する。私たちは、詳細に走査顕微鏡を制御し、粒子の周りに周回軌道でビームの運動を可能にするために必要なパラメータを議論する。私たちは、この方法が効果的に生きた細胞内の3Dでの微小管に沿っラベルリソソームの速い動きを追跡するために使用することができる方法を示すことで結論付けている。リソソームは、典型的には、微小管ネットワーク8に沿って向けられた動きを表示し、0.4ミクロン/秒の範囲の速度で移動することができる。

Introduction

アプローチは、多数の顕微鏡を用いて三次元で蛍光粒子を追跡するためにこれまでに開発されてきた。ほとんどのアプローチは、理想的には、典型的には、軸方向にトラッキングを達成するために、顕微鏡の発光光学系のカスタマイズされた修飾と組み合わせた二次元的に追跡するために適した、高速カメラの使用に依存する。このプロセスは、典型的には、時間がかかり、かつ粒子が追跡されている場合にのみ、妥当な時間分解能(10 Hz)をされ得たが、レーザ走査型顕微鏡(共焦点またはつの光子のいずれか)は従来のz-スタックの時間シーケンスを実行することにより、蛍光粒子を追跡することができ能動的フィードバック機構2により小さなラスタ撮像領域の中心に保った。

ロックイン粒子にするという考えは、軌道追跡法の拠点となっています。代わりに、ラスタの円軌道を蛍光粒子の周囲に実行されるスキャンします。に沿って蛍光の強度軌道は正確に粒子位置4を局在する。

粒子の局所的な位置は、顕微鏡スキャナおよび再中央粒子位置の軌道を作動させるために使用することができる。顕微鏡のガルバノスキャナはアナログ電圧によって駆動される。この電圧の交流成分、 すなわち正弦波、集束レーザビームを軌道を行うことができ、XYスキャンミラーに適用される余弦波を円軌道を実行可能にする。信号のDCオフセットは、軌道中心の位置を変化させることを容易にする。軌道周期が決定され、AC信号の波形が設定されると、フィードバックシステムは、信号のDC成分のみを更新する必要がある。

検出器から収集した蛍光シグナルを読み取ることができるソフトウェアは、スキャナおよび検出器を制御するために、粒子の位置を計算し、DC電源をオフに更新が要求されるセット。軌道パラメータ(サイズ及びタイミング)の注意深い選択を撮像成功したフィードバックに必要なこれらのパラメータは、追跡する必要がある蛍光粒子の特性に基づいて調整されなければならないれる。

技術の物理的および数学的な基礎は、2Dと3D両方のアプリケーションのために、過去4,5で説明した。このプロトコルでは、簡単にセットアップの主要なハードウェアコンポーネントを記述し、より詳細にパラメータの選択と私たちは、生細胞内で高い時間分解能でのリソソームの変位を可能にする以下の典型的な実験に必要なサンプル調製。

Protocol

1試料の調製 10%ウシ胎児血清およびペニシリンストレプトマイシン50μgの/ mlの100 IU / mlを補足したDMEMを用いて組織培養フラスコ中CHOK1細胞を維持する。 37℃で5%CO 2の加湿インキュベーターで細胞を培養する。 収穫した後、0.16ミリメートルの表面厚さで直径14mmのマイクロウェルにCHOK1細胞をプレート。イメージング、周りの60〜70%の集密度に最適な密度のための種の?…

Representative Results

このプロトコルによれば、高速3D単一粒子追跡は、蛍光標識されたリソソームの変位を追跡するために修飾された二光子顕微鏡を用いて生細胞の内部で行うことができる。行った実験は、エンドソーム成熟過程9後の細胞内を移動する孤立したリソソームの追跡で構成されています。リソソームは、蛍光緑の色素を用いて染色し、2光子励起を利用し930 nmで励起した。本発明者らのデー?…

Discussion

ここ数年、蛍光顕微鏡技術とインストルメンテーションの驚異的な進歩にもかかわらず、高い時間分解能で三次元での蛍光粒子の軌跡を達成することは、フィールドでの課題となってきた。高い時間分解能は、二次元でトラッキング粒子が達成された場合には、軸方向への拡張は、典型的には、システム10の周波数応答の劇的な減少をもたらす。

このビデオプロ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This project was supported by grants NIH NIGMS 8P41 GM103540-28 and P50-GM076516

Materials

Name Company Model
Lysotracker DND 26 Life technologies L-7526
tubuline tracker Green Life technologies T34075
Mitotracker RED Life technologies M7512
Coherent Chamelon- ultra II TI Coherent
Calcite polarize Melles Griot Glan 
Galvanometer-motor mirror Cambridge technologies M 6350
Dichroic mirror Chroma technologies 700 DCSPXR
Motorized stage ASI MS2000
Piezo  PI P721-LLQ
Photomultiplier tube Hamamatsu H7422P-40
Data acquisition card IO tech PCI 1128-4000
Imaging software LFD Global for images-SimFCS

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Anzalone, A., Annibale, P., Gratton, E. 3D Orbital Tracking in a Modified Two-photon Microscope: An Application to the Tracking of Intracellular Vesicles. J. Vis. Exp. (92), e51794, doi:10.3791/51794 (2014).

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