Summary

Kaninen Blod-shunt modell för studier av akut och sen Sena effekter av subaraknoidalblödning: Tekniska aspekter

Published: October 02, 2014
doi:

Summary

The experimental intracranial pressure-controlled blood shunt subarachnoid hemorrhage (SAH) model in the rabbit combines the standard procedures — subclavian artery cannulation and transcutaneous cisterna magna puncture, which enables close mimicking of human pathophysiological conditions after SAH. We present step-by-step instructions and discuss key surgical points for successful experimental SAH creation.

Abstract

Tidig hjärnskada och fördröjd cerebral vasospasm båda bidrar till negativa effekter efter subaraknoidalblödning (SAH). Reproducerbara och kontrollerbara djurmodeller som simulerar båda villkoren är för närvarande ovanligt. Därför är nya modeller som krävs för att efterlikna mänskliga patofysiologiska villkor som följer av SAH.

Denna rapport beskriver de tekniska nyanserna i en kaninblod-shunt SAH modell som möjliggör styrning av intracerebral tryck (ICP). En extrakorporeal shunt placeras mellan det arteriella systemet och subaraknoidalrummet, vilket möjliggör granskaren oberoende SAH i en sluten kraniet. Steg-för-steg instruktioner om förfaranden och nödvändig utrustning finns beskrivna, liksom tekniska överväganden för att producera modellen med minimal dödlighet och sjuklighet. Viktiga detaljer som krävs för framgångsrik kirurgisk skapandet av denna robusta, enkla och konsekventa ICP-styrd SAH kaninmodell beskrivs.

Introduction

Aneurysmal subaraknoidalblödning (SAH) är en av de mest livshotande neuropatologiska förhållanden, ofta leder till bestående neurologiska skador eller dödsfall 1. Tidigare forskning har fokuserat på fördröjd cerebral vasospasm (DCVS) som den primära etiologin för neurologiska skador i samband med SAH 2. Däremot har de allmänt dåliga kliniska resultat av patienter som lider av SAH efter behandling av vasospasm lett till en expansion av forskningsfokus att inkludera effekterna av tidig hjärnskada (EBI) efter SAH 3. Ökad förståelse av betydelsen av både EBI och DCVS bidra till fattiga kliniska resultat efter SAH är avgörande för utvecklingen av effektivare behandlingsstrategier.

Hittills har enkla och dubbla autologt blod injektion i cisterna magna varit standardmetoden för SAH induktion för att studera DCVS 2-6. Även vanligt förekommande i tidigare studier,denna modell troligen inte återge de neuropatologiska viktiga förändringar i samband med SAH inducerade EBI 7. I motsats härtill är endovaskulär perforering känt att producera svåra akuta patofysiologiska förändringar som delvis efterliknar symptomen av EBI 7.

Rapporten beskriver en ny kanin modell av SAH utformad för att möjliggöra utredning av både EBI och DCVS, vilket möjliggör mer exakt karakterisering av SAH-inducerad patologi 8-10. Med den beskrivna tekniken är standard cisterna magna modell anpassad genom att ansluta arteriella systemet av den subklavikulära artären och den cisterna magna via en extrakorporeal shunt. Blodflödet är därmed kopplad till kaninens fysiologi och driven av tryckgradienten mellan arteriellt blod och det intrakraniella trycket. Blödningen stannar när intracerebral tryck (ICP) är lika med diastoliskt blodtryck och blodet i shuntsystemet koagulerar. Använda värd & #8217; fysiologi minskar examinator beroende SAH induktion, vilket leder till en mer enhetlig modell för SAH som tillförlitligt producerar både EBI och DCVS fenotyper 3,8-10.

Protocol

Tre månader gamla kvinnliga Nya Zeeland kaniner som väger 2,5-3,5 kg användes för detta förfarande. Studien utfördes i enlighet med National Institutes of Health riktlinjer för vård och användning av försöksdjur och med godkännande av Animal Care kommittén i kantonen Bern, Schweiz (godkännande # 105/13). Alla kirurgiska ingrepp utfördes under sterila förhållanden vid experimentella kirurgiska institutet vid Institutionen för klinisk forskning vid Bern universitetssjukhus i Bern, Schweiz. En veterinär …

Representative Results

Kaninen blod shunt modell av SAH som beskrivs i denna rapport fram EBI i hippocampus (figur 2A, B), basal cortex (Figur 2A, B), och cerebral kärlsystemet (figur 2C) så tidigt som 24 timmar efter skada och visar en karakteristisk distributions blod (Figur 2D) 8. Dessutom utlöser modellen måttliga till svåra grader av DCVS på dag tre efter SAH induktion (Figur 3) 10. Dödligheten är 20-30% på grund av a…

Discussion

Shunten Modellen producerar patologi liknande den som observerats hos människa efter akut SAH 3,8,10. Det har föreslagits att EBI kan förvärra, behålla och till och med utlösa DCVS 12, och som sådan denna modell kan hjälpa till att utreda både de tidiga och sena DCVS faser, inklusive EBI och DCVS interaktioner efter SAH. Särskilt repeterbar in vivo DCVS övervakningstekniker inklusive DSA 13, datortomografi angiografi 14 och transkraniell Doppler 15</su…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Laurie von Melchner, Bern Universitetssjukhus, Institutionen för neurokirurgi, Bern, Schweiz, för korrekturläsning och redigering av manuskriptet och Paskus Jeremiah, Boston Barnsjukhus, Boston, MA för korrekturläsning det ursprungliga förslaget. Vi uppskattar skickliga hantering av djurvård, anestesi och operativ hjälp från Daniel Mettler, DVM, Max Müller, DVM, Daniel Zalokar och Olgica Beslac, Experimentell Kirurgiska Institutet, Institutionen för klinisk forskning, universitetet i Bern, Bern, Schweiz. Vi tackar Michael Lensch, chef forskningssjuksköterska, Institutionen för intensivvård, Bern University Hospital och University of Bern, Bern, Schweiz, för realtidsövervakning av data och efterbearbetning av fysiologiska parametrar. Vi tackar Edin Nevzati, Carl Muroi och Salome Erhardt, för deras utmärkta laboratorium teknisk och operativ hjälp.

Detta arbete stöddes av Department of Intensive Care Medicine, Bern University Hospital och University of Bern, Bern, Schweiz, Institutionen för klinisk forskning, universitetet i Bern, Bern, Schweiz, och forskningsfonden från Kantonsspital Aarau, Aarau, Schweiz. Vi tackar Elsevier, för nytryck tillstånd till figurerna 1 och 2.

Materials

Name Company Catalog Number Comments/Description
Equipment
operation microscope Zeiss, Jena, Germany Zeiss, OPMI-MD surgical microscope
surgical equipment B. Braun, Germany forceps medical n°5, vessel sciccors 8cm, microclip 4mm
respirator Hugo Sachs
hair clipper 3M Surgical Clipper   Starter Kit 9667A
body warm plate FHC
blood gas analyzer Radiometer, Copenhagen, Denmark ABL 725
cardiac monitoring Camino Multi-Parameter Monitor, Integra, Plainsboro, NJ, US AP-05
software analysis BIOPAC Systems, Inc., Goleta, CA, USA Biopac MP100 and acqKnowledge software,version 3.8.1
software analysis ImagePro Discovery, MediaCybernetics, Silver Spring, MD, USA image-Pro Plus version 
angiography apparatus DFP 2000 A-Toshiba MIIXR0001EAA
ICP monitor Camino Laboratories, San Diego, CA, USA ICP monitor, Model 110-4B
blood flow monitor Oxford Optronix Ltd., Oxford, UK CAL KIT microsphere solution
laser-Doppler flowmetry fine needle probes  Oxford Optronix Ltd., Oxford, UK MNP110XP, 0.48 mm diameter
pressure tube B. Braun, Germay PE 1.0 mm × 2.0 mm
anesthesia monitor GE Medical Systems, Switzerland  Datex S5 Monitor
Material
20 G vascular catheter Smiths Medical Jelco i.v. catheter, REF 4057
5.5F three-lumen central venous catheter  Connectors, Tagelswangen, Switzerland silicone catheter STH-C040
22Gx40mm needle  Emergo Group Inc., Netherlands
high-speed microdrill Stryker, Solothurn, Switzerland 5400-15 
bone wax Ethicon, Johnson & Johnson,NJ, USA ETHW31G
bipolar forceps Aesculap, Inc., PA, US US349SP 
Ketamin Any generic product
Xylazine Any generic product
Buprenorphine Any generic product
Fentanyl Any generic product
transdermal fentanyl matrix patches  Any generic product
Lidocaine 1%  Any generic product
4% papaverin HCl  Any generic product
Neomycin sulfate  Research Organics Inc., OH, USA Any generic product
Povidone-iodine  Any generic product
0.9% sodium chloride Any generic product
Iopamidol  Abott Laboratories, IL, USA Any generic product
3-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP824G
5-0 non absorbable suture Ethicon Inc., USA 8618G
4-0 polyfilament sutures Ethicon Inc., USA VCP284G

Riferimenti

  1. Taylor, T. N., et al. Lifetime cost of stroke in the United States. Stroke; a journal of cerebral circulation. 27, 1459-1466 (1996).
  2. Kikkawa, Y., Kameda, K., Hirano, M., Sasaki, T., Hirano, K. Impaired feedback regulation of the receptor activity and the myofilament Ca2+ sensitivity contributes to increased vascular reactiveness after subarachnoid hemorrhage. Journal of cerebral blood flow and metabolism : official journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 30, 1637-1650 (2010).
  3. Marbacher, S., Fandino, J., Kitchen, N. D. Standard intracranial in vivo animal models of delayed cerebral vasospasm. British journal of neurosurgery. 24, 415-434 (2010).
  4. Marbacher, S., Neuschmelting, V., Graupner, T., Jakob, S. M., Fandino, J. Prevention of delayed cerebral vasospasm by continuous intrathecal infusion of glyceroltrinitrate and nimodipine in the rabbit model in vivo. Intensive care medicine. 34, 932-938 (2008).
  5. Zhou, M. L., et al. Comparison between one- and two-hemorrhage models of cerebral vasospasm in rabbits. Journal of neuroscience. 159, 318-324 (2007).
  6. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58, 1190-1197 (2006).
  7. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65, 331-343 (2009).
  8. Marbacher, S., et al. A new rabbit model for the study of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of neuroscience. 208, 138-145 (2012).
  9. Marbacher, S., et al. Outer skull landmark-based coordinates for measurement of cerebral blood flow and intracranial pressure in rabbits. Journal of neuroscience methods. 201, 322-326 (2011).
  10. Marbacher, S., et al. Extra-intracranial blood shunt mimicking aneurysm rupture: intracranial-pressure-controlled rabbit subarachnoid hemorrhage model. Journal of neuroscience. 191, 227-233 (2010).
  11. Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model. J Neurosci Methods. 167, 327-334 (2008).
  12. Macdonald, R. L. Delayed neurological deterioration after subarachnoid haemorrhage. Nature reviews. Neurology. 10, 44-58 (2014).
  13. Zhang, Z. W., et al. Platelet-derived growth factor-induced severe and chronic vasoconstriction of cerebral arteries: proposed growth factor explanation of cerebral vasospasm. Neurosurgery. 66, 728-735 (2010).
  14. Laslo, A. M., Eastwood, J. D., Chen, F. X., Lee, T. Y. Dynamic CT perfusion imaging in subarachnoid hemorrhage-related vasospasm. AJNR. American journal of neuroradiology. 27, 624-631 (2006).
  15. Shao, Z., et al. Effects of tetramethylpyrazine on nitric oxide/cGMP signaling after cerebral vasospasm in rabbits. Brain research. 1361, 67-75 (2010).
  16. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1086-1091 (1995).
  17. Veelken, J. A., Laing, R. J., Jakubowski, J. The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1279-1283 (1995).
  18. Zakhartchenko, V., et al. Cell-mediated transgenesis in rabbits: chimeric and nuclear transfer animals. Biology of reproduction. 84, 229-237 (2011).
  19. Capecchi, M. R. Gene targeting in mice: functional analysis of the mammalian genome for the twenty-first century. Nature reviews. Genetics. 6, 507-512 (2005).
  20. Flisikowska, T., et al. Efficient immunoglobulin gene disruption and targeted replacement in rabbit using zinc finger nucleases. PloS one. 6, e21045 (2011).
  21. Nakajima, M., et al. Effects of aging on cerebral vasospasm after subarachnoid hemorrhage in rabbits. Stroke. 32, 620-628 (2001).
check_url/it/52132?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Andereggen, L., Neuschmelting, V., von Gunten, M., Widmer, H. R., Takala, J., Jakob, S. M., Fandino, J., Marbacher, S. The Rabbit Blood-shunt Model for the Study of Acute and Late Sequelae of Subarachnoid Hemorrhage: Technical Aspects. J. Vis. Exp. (92), e52132, doi:10.3791/52132 (2014).

View Video