Summary

歯科用インプラント ・異種材料の口腔バイオ フィルム形成

Published: June 24, 2018
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Summary

ここでは、口腔バイオ フィルム形成細菌の細胞生存率と形態的特徴の分析を含む歯科補綴アバットメント チタン、ジルコニア材料を評価するためのプロトコルを提案する.強力な顕微鏡検査の技術に関連付けられているその場でモデルは、口腔バイオ フィルムの解析に使用されます。

Abstract

歯科インプラントと補綴コンポーネントが細菌の植民地化およびバイオ フィルム形成しやすいです。低い微生物付着を提供する材料の使用は、有病率とインプラント周囲の病気の進行を減らすことができます。観点から、口腔内環境の複雑さと口腔バイオ フィルムの不均一性歯や歯科材料の表面のバイオ フィルムの解析を有効にすることができます技術が必要な顕微鏡検査。この資料では、口腔バイオ フィルム形成チタンとセラミック補綴支台用材として形態学的および細胞レベルで口腔バイオ フィルム解析にかかわる方法を比較するために実装されたプロトコルのシリーズを説明します。前述のように本研究ではチタン、ジルコニアの歯科補綴物の支台用材料の口腔バイオ フィルム形成の評価の in situモデルは、方法論の妥当性を実証することにより、48 h のバイオ フィルムの良好な保全を提供します。多光子顕微鏡には、試験材料に形成されるバイオ フィルムの領域代表者の分析ができます。さらに、蛍光物質の使用と多光子顕微鏡による画像の処理微生物の非常に異質人口の細菌生存率の解析をことができます。電子顕微鏡用試料の調製は、バイオ フィルム、画像解像度が良いとしない人工の構造の保全を推進しています。

Introduction

細菌バイオ フィルム複雑構造的機能的組織微生物、細胞、生物学的活性ポリマー マトリックス1,2を合成する微生物種の多様性によって特徴付けられます。生物的または非生物的表面に細菌の付着には、主に唾液糖タンパク質1,3,4から成る, 獲得被膜の形成が続きます。微生物とペリクルの物理化学的相互作用弱い最初確立、細菌アドヘシンと獲得被膜の糖蛋白受容体との間の強い相互作用によって続いた。多種間コミュニティ1,3,4,を形成、既に添付している細菌の受容体への二次植民の 1006 ヘテロ凝集を通じて徐々 に微生物の多様性5

口腔微生物叢とホストとの共生関係の恒常性は、口腔の健康を維持する上で重要です。口腔バイオ フィルム内 dysbiosis は齲蝕と歯周疾患2,5の開発のリスクを高める可能性があります。臨床研究は、歯またはインプラントのバイオ フィルムの蓄積と歯肉炎やインプラント周囲粘膜炎67の発展と因果関係を示しています。炎症性プロセスの進行は、インプラントとインプラント8の結果の損失に します。

歯科インプラントと補綴コンポーネントは、細菌の植民地化およびバイオ フィルム形成9になりやすいです。低い微生物付着を提供する表面の構造と化学組成と材料の使用は、有病率とインプラント周囲疾患9,10の進行を減らすことができます。チタンは、インプラントの補綴橋台の製造のためほとんど使用材料しかし、セラミック材料は最近導入された、彼らの審美的な特性と生体適合性11,12のためチタンに代わるものとして人気を集めています。また重要なは、セラミック材料に関連付けられているおそらく減らされた潜在的な表面粗さ、濡れ性、表面自由エネルギー10,13のために主に、微生物に付着します。

In vitro研究は補綴支面9,14,15,16,17に微生物の理解の進歩に貢献しています。しかし、その変化する温度と pH および栄養アベイラビリティおよびせん断力の存在によって表される口腔内の動的な環境はない体外実験プロトコル18、再現性のあります。 19。この問題を克服するために代わりに、その場で有利ex vivo解析10,20,のための立体構造を保持するバイオ フィルム形成のモデルの使用21,22,23,24

口腔の基板上に形成されたバイオ フィルムの複雑な構造の解析光学的高密度物質25を表示することができる顕微鏡検査の技術が必要です。多光子レーザー顕微鏡は、バイオ フィルムの構造解析26モダンなオプションです。フェムト27にパルス赤外の波長に近い光源と非線形光学の使用が特徴です。このメソッドは、蛍光材料または材料の蛍光物質、第 2 高調波発生と呼ばれる現象から派生した非線型光信号によって生成された画像に加え、マークの画像の獲得のために示されます。多光子顕微鏡の利点の中では励起光27の強度によるセルの最小被害で得られた素晴らしい画像の深度です。

多光子顕微鏡による非生物的表面にバイオ フィルムの実行可能性分析、蛍光核酸の使用染料分光特性の異なると、細菌の細胞の浸透能力必要な28です。ライブとデッド細菌28,29,30間の視覚的な差別の fluorophores が付いて SYTO9 (緑色蛍光) とヨウ化 propidium (赤色蛍光) を使用できます。Propidium ヨウ化 SYTO9 そのままと侵害された膜を細菌細胞に入る間だけ破損した膜細菌に浸透します。両方の染料がセル内に存在する場合 propidium ヨウ化核酸の相性が大きいとマーク赤28,30SYTO9 を転置します。

観点から、口腔内環境の複雑さと口腔バイオ フィルムの不均一性歯や歯科材料の表面のバイオ フィルムの解析を有効にすることができます技術が必要な顕微鏡検査。この資料では、口腔バイオ フィルム形成チタンとセラミック補綴支台用材として形態学的および細胞レベルで口腔バイオ フィルム解析にかかわる方法を比較するために実装されたプロトコルのシリーズを説明します。

Protocol

本研究は、リベイラン ・ プレトの歯学部の制度検討委員会によって承認された、ボランティア参加者署名された書面による同意 (2011.1.371.583 プロセス)。 1. バイオ フィルム形成その場観察 参加者の選定 次の包含の規準に基づく患者の選択: 完全な歯や口腔疾患の臨床徴候と健康な人。 以下の除外基準に基づいて患者を除外: 妊…

Representative Results

本研究では多光子顕微鏡検査 (を使用して標本の合計スキャン領域に関連してチタン、ジルコニア ディスクに植民地化された領域の割合によって表されるバイオ フィルムの in situ成長の 48 時間後の植民地化の密度26.64 mm2)。図 2は、3 のテスト材料の表面の細菌の定着密度を表します。バイオ フィルムの密度が高いが、加工チタン …

Discussion

本研究で説明されたプロトコルは、チタン、ジルコニア補綴橋台は、細菌の細胞生存率と形態的特徴の分析を含む用材料のバイオ フィルム形成を評価するため開発されました。このため、テスト材料のサンプルを収容し、48 h の動的な口腔環境にさらされるそれらを保つために口腔内装置から成るバイオ フィルム形成の場でモデルは設計されました。デバイスは、快適かつ簡単に挿入…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者に感謝顕微鏡マルチユーザ研究室 (リベイラウンプレトの医学) からジョゼ ・ アウグスト ・ Maulin EDS と SEM の彼の寛大な支援の分析とビデオ版の彼の寛大なテクニカル サポートにビッグブラザー テイシェイラ マチャド。

Materials

Hydrogum 5 Zhermack Dental C302070
Durone IV Dentsply 17130500002
NiCr wire  Morelli 55.01.070
JET auto polymerizing acrylic Clássico
Dental wax  Clássico
Pressure pot  Essencedental
Sandpapers 600 grit NORTON T216
Sandpapers 1200 grit NORTON T401
Sandpapers 2000 grit NORTON T402
Metallographic Polishing Machine Arotec
Isopropyl alcohol SIGMA-ALDRICH W292907
Hot melt adhesive TECSIL PAH M20017
Filmtracer LIVE/DEAD Biofilm Viability Kit Invitrogen L10316
Pipette Tips, 10 µL KASVI K8-10  
Pipette Tips, 1,000 µL KASVI K8-1000B  
24-well plate  KASVI K12-024
Glass Bottom Dish Thermo Scientific 150680
AxioObserver inverted microscope  ZEISS
Chameleon vision ii laser Coherent
Objective EC Plan-Neofluar 40x/1.30 Oil DIC ZEISS 440452-9903-000
SDD sensors – X-Max 20mm² Oxford Instruments
Glutaraldehyde solution SIGMA-ALDRICH G5882
Sodium cacodylate Buffer  SIGMA-ALDRICH 97068 
Osmium tetroxide SIGMA-ALDRICH 201030
Na2HPO4 SIGMA-ALDRICH S9638 Used for preparation of phosphate buffered saline
KH2PO4 SIGMA-ALDRICH P9791 
NaCl MERK 1.06404
Kcl SIGMA-ALDRICH P9333 
Ethanol absolute for analysis EMSURE MERK 1.00983
CPD 030 Critical Point Dryer BAL-TEC
JSM-6610 Series Scanning Electron Microscope JEOL
SCD 050 Sputter Coater BAL-TEC

Riferimenti

  1. Do, T., Devine, D., Marsh, P. D. Oral biofilms: molecular analysis, challenges, and future prospects in dental diagnostics. Clinical, Cosmetic and Investigational Dentistry. 5, 11-19 (2013).
  2. Samaranayake, L., Matsubara, V. H. Normal Oral Flora and the Oral Ecosystem. Dental Clinics of North America. 61 (2), 199-215 (2017).
  3. Larsen, T., Fiehn, N. E. Dental biofilm infections – an update. Acta Pathologica, Microbiologica, et Immunologica Scandinavica. 125 (4), 376-384 (2017).
  4. Marsh, P. D., Do, T., Beighton, D., Devine, D. A. Influence of saliva on the oral microbiota. Periodontology 2000. 70 (1), 80-92 (2016).
  5. Marsh, P. D., Zaura, E. Dental biofilm: ecological interactions in health and disease. Journal of Clinical Periodontology. 44 Suppl 18, S12-S22 (2017).
  6. Zitzmann, N. U., Berglundh, T., Marinello, C. P., Lindhe, J. Experimental peri-implant mucositis in man. Journal of Clinical Periodontology. 28 (6), 517-523 (2001).
  7. Meyer, S., et al. Experimental mucositis and experimental gingivitis in persons aged 70 or over. Clinical and biological responses. Clinical Oral Implants Research. 28 (8), 1005-1012 (2017).
  8. Salvi, G. E., Cosgarea, R., Sculean, A. Prevalence and Mechanisms of Peri-implant Diseases. Journal of Dental Research. 96 (1), 31-37 (2017).
  9. Hahnel, S., Wieser, A., Lang, R., Rosentritt, M. Biofilm formation on the surface of modern implant abutment materials. Clinical Oral Implants Research. 26 (11), 1297-1301 (2015).
  10. Nascimento, C., et al. Bacterial adhesion on the titanium and zirconia abutment surfaces. Clinical Oral Implants Research. 25 (3), 337-343 (2014).
  11. Nakamura, K., Kanno, T., Milleding, P., Ortengren, U. Zirconia as a dental implant abutment material: a systematic review. The International Journal of Prosthodontics. 23 (4), 299-309 (2010).
  12. Scarano, A., Piattelli, M., Caputi, S., Favero, G. A., Piattelli, A. Bacterial adhesion on commercially pure titanium and zirconium oxide disks: an in vivo human study. Journal of Periodontology. 75 (2), 292-296 (2004).
  13. Nascimento, C., et al. Microbiome of titanium and zirconia dental implants abutments. Dental Materials. 32 (1), 93-101 (2016).
  14. Rimondini, L., Cerroni, L., Carrassi, A., Torricelli, P. Bacterial colonization of zirconia ceramic surfaces: an in vitro and in vivo study. The International Journal of Oral & Maxillofacial Implants. 17 (6), 793-798 (2002).
  15. de Avila, E. D., Avila-Campos, M. J., Vergani, C. E., Spolidorio, D. M., Mollo Fde, A. Structural and quantitative analysis of a mature anaerobic biofilm on different implant abutment surfaces. Journal of Prosthetic Dentistry. 115 (4), 428-436 (2016).
  16. de Avila, E. D., et al. Impact of Physical Chemical Characteristics of Abutment Implant Surfaces on Bacteria Adhesion. Journal of Oral Implantology. 42 (2), 153-158 (2016).
  17. de Avila, E. D., et al. Effect of titanium and zirconia dental implant abutments on a cultivable polymicrobial saliva community. Journal of Prosthetic Dentistry. 118 (4), 481-487 (2017).
  18. Lin, N. J. Biofilm over teeth and restorations: What do we need to know?. Dental Materials. 33 (6), 667-680 (2017).
  19. Prada-Lopez, I., Quintas, V., Tomas, I. The intraoral device of overlaid disk-holding splints as a new in situ oral biofilm model. Journal of Clinical and Experimental Dentistry. 7 (1), e126-e132 (2015).
  20. Prada-Lopez, I., Quintas, V., Vilaboa, C., Suarez-Quintanilla, D., Tomas, I. Devices for in situ Development of Non-disturbed Oral Biofilm. A Systematic Review. Frontiers in Microbiology. 7, 1055 (2016).
  21. Burgers, R., et al. In vivo and in vitro biofilm formation on two different titanium implant surfaces. Clinical Oral Implants Research. 21 (2), 156-164 (2010).
  22. do Nascimento, C., et al. Oral biofilm formation on the titanium and zirconia substrates. Microscopy Research and Technique. 76 (2), 126-132 (2013).
  23. Al-Ahmad, A., et al. In vivo study of the initial bacterial adhesion on different implant materials. Archives of Oral Biology. 58 (9), 1139-1147 (2013).
  24. Al-Ahmad, A., et al. Bacterial adhesion and biofilm formation on yttria-stabilized, tetragonal zirconia and titanium oral implant materials with low surface roughness – an in situ study. Journal of Medical Microbiology. 65 (7), 596-604 (2016).
  25. Thomsen, H., et al. Delivery of cyclodextrin polymers to bacterial biofilms – An exploratory study using rhodamine labelled cyclodextrins and multiphoton microscopy. International Journal of Pharmaceutics. 531 (2), 650-657 (2017).
  26. Lakins, M. A., Marrison, J. L., O’Toole, P. J., van der Woude, M. W. Exploiting advances in imaging technology to study biofilms by applying multiphoton laser scanning microscopy as an imaging and manipulation tool. Journal of Microscopy. 235 (2), 128-137 (2009).
  27. Zipfel, W. R., Williams, R. M., Webb, W. W. Nonlinear magic: multiphoton microscopy in the biosciences. Nature Biotechnology. 21 (11), 1369-1377 (2003).
  28. Stocks, S. M. Mechanism and use of the commercially available viability stain, BacLight. Cytometry Part A. 61 (2), 189-195 (2004).
  29. Johnson, M. B., Criss, A. K. Fluorescence microscopy methods for determining the viability of bacteria in association with mammalian cells. Journal of Visualized Experiments. (79), e50729 (2013).
  30. Stiefel, P., Schmidt-Emrich, S., Maniura-Weber, K., Ren, Q. Critical aspects of using bacterial cell viability assays with the fluorophores SYTO9 and propidium iodide. BMC Microbiology. 15, 36 (2015).
  31. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  32. Placko, H. E., Mishra, S., Weimer, J. J., Lucas, L. C. Surface characterization of titanium-based implant materials. The International Journal of Oral & Maxillofacial Implants. 15 (3), 355-363 (2000).
  33. So, P. T., Dong, C. Y., Masters, B. R., Berland, K. M. Two-photon excitation fluorescence microscopy. Annual Review of Biomedical Engineering. 2, 399-429 (2000).
  34. Benninger, R. K., Piston, D. W. Two-photon excitation microscopy for the study of living cells and tissues. Current Protocols in Cell Biology. , 11-24 (2013).
  35. Gardi, J. E., Nyengaard, J. R., Gundersen, H. J. The proportionator: unbiased stereological estimation using biased automatic image analysis and non-uniform probability proportional to size sampling. Computers in Biology and Medicine. 38 (3), 313-328 (2008).
  36. Melvin, N. R., Poda, D., Sutherland, R. J. A simple and efficient alternative to implementing systematic random sampling in stereological designs without a motorized microscope stage. Journal of Microscopy. 228 (Pt 1), 103-106 (2007).
  37. Neu, T. R., Kuhlicke, U., Lawrence, J. R. Assessment of fluorochromes for two-photon laser scanning microscopy of biofilms. Applied and Environmental Microbiology. 68 (2), 901-909 (2002).
  38. Neu, T. R., Woelfl, S., Lawrence, J. R. Three-dimensional differentiation of photo-autotrophic biofilm constituents by multi-channel laser scanning microscopy (single-photon and two-photon excitation). Journal of Microbiological Methods. 56 (2), 161-172 (2004).
  39. Neu, T. R., Lawrence, J. R. Innovative techniques, sensors, and approaches for imaging biofilms at different scales. Trends in Microbiology. 23 (4), 233-242 (2015).
  40. Lacroix-Gueu, P., Briandet, R., Leveque-Fort, S., Bellon-Fontaine, M. N., Fontaine-Aupart, M. P. In situ measurements of viral particles diffusion inside mucoid biofilms. Comptes Rendus Biologies. 328 (12), 1065-1072 (2005).
  41. Briandet, R., et al. Fluorescence correlation spectroscopy to study diffusion and reaction of bacteriophages inside biofilms. Applied and Environmental Microbiology. 74 (7), 2135-2143 (2008).
  42. Berney, M., Hammes, F., Bosshard, F., Weilenmann, H. U., Egli, T. Assessment and interpretation of bacterial viability by using the LIVE/DEAD BacLight Kit in combination with flow cytometry. Applied and Environmental Microbiology. 73 (10), 3283-3290 (2007).
  43. Bergmans, L., Moisiadis, P., Van Meerbeek, B., Quirynen, M., Lambrechts, P. Microscopic observation of bacteria: review highlighting the use of environmental SEM. International Endodontic Journal. 38 (11), 775-788 (2005).
  44. Hannig, C., Follo, M., Hellwig, E., Al-Ahmad, A. Visualization of adherent micro-organisms using different techniques. Journal of Medical Microbiology. 59 (Pt 1), 1-7 (2010).
  45. Knutton, S. Electron microscopical methods in adhesion. Methods in Enzymology. 253, 145-158 (1995).
  46. Fischer, E. R., Hansen, B. T., Nair, V., Hoyt, F. H., Dorward, D. W. Scanning electron microscopy. Current Protocols in Microbiology. , (2012).
check_url/it/57756?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Silva, T. S. O., Freitas, A. R., Pinheiro, M. L. L., do Nascimento, C., Watanabe, E., Albuquerque, R. F. Oral Biofilm Formation on Different Materials for Dental Implants. J. Vis. Exp. (136), e57756, doi:10.3791/57756 (2018).

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