Summary

Quantification de l’activité In Vitro de l’Hypopigmentation

Published: March 06, 2019
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Summary

Nous décrivons trois méthodes expérimentales pour l’évaluation de l’activité de l’hypopigmentation des produits chimiques in vitro : quantification du contenu de l’activité et la mélanine 2) tyrosinase 1) cellulaire et 3) mesure de mélanine de mélanine cellulaire coloration et analyse d’images.

Abstract

Cette étude présente les méthodes de laboratoire pour la quantification de l’hypopigmentation activité in vitro. La mélanine, le pigment majeur dans les mélanocytes, est synthétisée en réponse à de multiples facteurs cellulaires et de l’environnementales. La mélanine protège les cellules de la peau contre les dommages UV, mais a aussi des fonctions biochimiques et biophysiques. Production excessive ou l’accumulation de mélanine dans les mélanocytes peut causer des problèmes dermatologiques, comme les taches de rousseur, taches brunes, mélasma et taupes. Donc, le contrôle de la mélanogenèse avec des agents de l’hypopigmentation est important chez les personnes nécessitant des soins cliniques ou cosmétiques. La mélanine est principalement synthétisée dans les mélanosomes de mélanocytes dans un processus biochimique complexe appelé mélanogénèse, qui est influencé par extrinsèque et facteurs intrinsèques, tels que les hormones, l’inflammation, l’âge et exposition à la lumière ultraviolette. Nous décrivons trois méthodes permettant de déterminer l’activité de l’hypopigmentation de produits chimiques ou des substances naturelles dans les mélanocytes : mesure de l’activité de la tyrosinase 1) cellulaires et teneur en mélanine 2) 3) coloration et quantification mélanine cellulaire avec image analyse.

Dans la mélanogénèse, tyrosinase catalyse l’étape cinétiquement limitante qui convertit la L-tyrosine en 3, 4-dihydroxyphénylalanine (L-DOPA), puis en dopaquinone. Par conséquent, l’inhibition de la tyrosinase est un mécanisme primaire d’hypopigmentation. Les mélanocytes, activité de la tyrosinase peut être quantifiée en ajoutant la L-DOPA comme substrat et en mesurant la dopaquinone production par spectrophotométrie. Mélanogénèse peut également être mesurée en quantifiant la teneur en mélanine. La fraction cellulaire contenant de la mélanine est extraite avec NaOH et la mélanine est quantifiée par spectrophotométrie. Enfin, la teneur en mélanine peut être quantifiée par analyse d’image après coloration de Fontana-Masson de la mélanine. Bien que les résultats de ces essais in vitro ne peuvent pas toujours être reproduits dans la peau humaine, ces méthodes sont largement utilisés dans la recherche de la mélanogénèse, surtout comme l’étape initiale pour identifier l’activité potentielle de l’hypopigmentation. Ces méthodes permettent également d’évaluer la différenciation, la croissance et l’activité des mélanocytes. Des résultats cohérents avec les trois différentes méthodes assurer la validité des effets.

Introduction

Mélanine joue un rôle essentiel dans la physiologie, la pathologie et toxicologie de plusieurs organes, y compris la peau, des yeux et cerveau1. Principales fonctions de mélanine sont effets photo-dépistage et biochimiques. La mélanine absorbe la lumière visible et proche infrarouge ainsi que des rayonnements ultraviolets (UV), avec des taux d’absorption accrue de courtes longueurs d’onde de la lumière ; ainsi, la mélanine protège les tissus contre les dommages causés par la lumière visible ou UV radiation2. La mélanine est un antioxydant et a une affinité pour les métaux et autres produits chimiques toxiques ; par conséquent, il peut protéger des tissus du stress oxydatif et chimiques3. Cependant, la production excessive de mélanine entraîne des problèmes dermatologiques.

La quantité et la qualité de la mélanine dans la peau et les iris sont les déterminants les plus importants de la couleur de l’iris et la peau. Personnes peuvent avoir des préférences de couleur de peau différente ; certains favorisent la peau bronzée, tandis que d’autres favorisent les couleurs de peau plus légères. Selon ces profils de consommateurs, une hypopigmentation cosmétiques ont été développés pour satisfaire les marchés individuels pour peau favorisée couleurs4. En conséquence, études d’activité hypopigmentation et anti-mélanogenèse sont importantes tant scientifiquement que pratiquement.

Mélanogénèse est le complex processus de biosynthèse de la mélanine par une série de réactions chimiques enzymatiques et spontanées dans les mélanocytes. Un mélanocyte est entouré d’environ 36 kératinocytes et mélanocytes sont les usines de synthèse de la mélanine qui distribuent leurs produits aux kératinocytes voisins. Dans la peau, la mélanine produite et stockée dans le compartiment de melanosomal de mélanocytes est transportée vers les kératinocytes voisins dans l’épiderme via dendrites.

L-Tyrosine sert de substrat initial pour la mélanogénèse et l’enzyme tyrosinase catalyse deux réactions consécutives qui convertissent la L-tyrosine en 3, 4-dihydroxyphénylalanine (DOPA), puis en dopaquinone. Ces réactions sont l’étape cinétiquement limitante dans la mélanogénèse5,6. En conséquence, une hypopigmentation activité peut tout d’abord être mesurée en évaluant l’activité de la tyrosinase cellulaire directement. Pour ce faire, des extraits de mélanocytes contenant la tyrosinase sont incubés avec DOPA et la dopaquinone produite dans les échantillons peut être mesurée par spectrophotométrie à 475 nm. Les valeurs sont normalisées par les concentrations de protéines des échantillons et les substances ayant une hypopigmentation activité donnent lieu à moins dopaquinone formation comparée aux témoins.

Deuxièmement, une hypopigmentation activité peut être quantifiée en mesurant la mélanine dans les mélanocytes cultivés directement. Après le traitement des cellules avec la substance d’essai, la mélanine est extraite dans des conditions alcalines et de la teneur en mélanine est quantifiée par spectrophotométrie à 400 nm. Un agent de l’hypopigmentation se traduira par une plus faible teneur de mélanine que les contrôles7.

Enfin, l’activité de l’hypopigmentation peut être quantifiée par la coloration de la mélanine de Fontana-Masson et analyse d’images ultérieures. Coloration de Fontana-Masson, granules de mélanine réduisent le nitrate d’ammoniaque et d’argent à un état métallique noir visible et les zones noires de cellules dans des images microscopiques représentent la quantité de mélanine.

Un agent de l’hypopigmentation donne généralement des résultats cohérents et comparables avec ces trois méthodes, qui confirme que l’activité de la substance est valide. Alternativement, il peut être utile de mesurer l’expression des gènes clés et des protéines dans la mélanogénèse en réponse à une substance d’essai pour examiner l’activité hypopigmentation. En plus de la tyrosinase, protéines tyrosinase (TRP-1) et tautomerase tautomèrase (TRP-2) sont des enzymes critiques dans la mélanogénèse8. Le facteur de transcription associée à une microphtalmie de facteur de transcription (MITF) est un maître régulateur dans la mélanogénèse et la quantification des niveaux d’expression de ses gènes/protéines ou un dosage de l’activité du promoteur permet également d’évaluer l’activité hypopigmentation.

Protocol

1. préparation du milieu, composés et réactifs Préparer le milieu complet de croissance B16F10. Supplément Dulbecco aigle modifié (DMEM) avec 10 % sérum fœtal (SVF) et 1 % la pénicilline/streptomycine (PEST). Pour faire 500 mL de milieu complet, mélangez 445 mL du milieu de l’aigle modifié de Dulbecco (DMEM) avec 50 mL de FBS et 5 mL de PEST dans une bouteille en verre stérilisé 1 L. Après avoir mélangé doucement, le support de filtration par un filtre de flacon de 0,2 µm pour une nou…

Representative Results

Des résultats représentatifs de l’activité de l’hypopigmentation de l’arbutine, un anti-mélanogenèse composés en B16F10 mélanocytes sont indiqués ci-dessous. Figure 1 a montre qu’arbutine supprimée significativement l’activité de la tyrosinase cellulaires comparée au témoin imprégnées sur le véhicule. De même, la teneur en mélanine des cellules stimulées avec arbutine a été réduite significativement par rapport aux témoins (<st…

Discussion

Nous avons présenté des protocoles d’évaluation de l’activité de l’hypopigmentation des composés d’essai à l’aide de mélanocytes cultivés. Les résultats représentatifs ont montré l’effet de l’hypopigmentation de l’arbutine, un inhibiteur de la tyrosinase qui inhibe la tyrosinase activité et cellulaires mélanine contenu. Ces méthodes sont largement utilisées dans la recherche de l’activité anti-mélanogénique. À l’aide de ces tests, nous avons identifié avec succès plusieurs compos?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par l’Institut de planification de la Corée et l’évaluation des technologies en alimentation, Agriculture et foresterie (IPET) du programme de développement de technologie Agri-bio-industrie, financé par le ministère de l’Agriculture, alimentation et affaires rurales (MAFRA ) (116159-02-2-WT011) et l’école des Sciences de la vie et la biotechnologie pendant PLUS de BK21, Université de Corée.

Materials

3,4-Dihydroxy-l-phenylalanine Sigma D9628
Ammonium hydroxide solution Sigma #320145
Arbutin Fluka #10960
DMEM HyClone SH30243.01
FBS HyClone SH30084.03
Formalin Yakuri Pure Chemicals #16223 37%
Gold chloride American MasterTech AHG0226 0.10%
HCl Samchun chemical H0255
KCl Bio basic Canada Inc. PB0440
KH2PO4 Sigma #60218
Na2HPO4 J.T.Baker #3817-01
NaCl Duksan pure chemicals #81
NaOH Sigma 655104
Nuclear fast red Merck 100121 Nuclear fast red 0.1% in 5% aluminum sulfate.
Penicillin and streptomycin solution HyClone SV30010
Silver nitrate Duksan Pure Chemicals #900
Sodium phosphate dibasic (Na2HPO4) J.T. Baker #3817-01
Sodium phosphate monobasic (Na2HPO4) Sigma S5011
Sodium thiosulfate pentahydrate Duksan Pure Chemicals #2163
Tris(hydroxymethyl)aminomethane Bio Basic Canada TB0196
Triton X-100 Union Carbide T8787
Tyrosinase from mushroom Sigma T3824 25 KU

Riferimenti

  1. Bonaventure, J., Domingues, M. J., Larue, L. Cellular and molecular mechanisms controlling the migration of melanocytes and melanoma cells. Pigment Cell & Melanoma Research. 26 (3), 316-325 (2013).
  2. Brenner, M., Hearing, V. J. The protective role of melanin against UV damage in human skin. Photochemistry and Photobiology. 84 (3), 539-549 (2008).
  3. Galvan, I., Solano, F. Melanin chemistry and the ecology of stress. Physiological and Biochemical Zoology. 88 (3), 352-355 (2015).
  4. Burger, P., Landreau, A., Azoulay, S., Michel, T., Fernandez, X. Skin whitening cosmetics: Feedback and challenges in the development of natural skin lighteners. Cosmetics. 3 (4), 36 (2016).
  5. Cooksey, C. J., et al. Evidence of the indirect formation of the catecholic intermediate substrate responsible for the autoactivation kinetics of tyrosinase. Journal of Biological Chemistry. 272 (42), 26226-26235 (1997).
  6. Ando, H., Kondoh, H., Ichihashi, M., Hearing, V. J. Approaches to identify inhibitors of melanin biosynthesis via the quality control of tyrosinase. Journal of Investigative Dermatology. 127 (4), 751-761 (2007).
  7. Gillbro, J. M., Olsson, M. J. The melanogenesis and mechanisms of skin-lightening agents – existing and new approaches. International Journal of Cosmetic Science. 33 (3), 210-221 (2011).
  8. Passeron, T., Coelho, S. G., Miyamura, Y., Takahashi, K., Hearing, V. J. Immunohistochemistry and in situ hybridization in the study of human skin melanocytes. Experimental Dermatology. 16 (3), 162-170 (2007).
  9. Lee, J. H., et al. Momilactione B inhibits protein kinase A signaling and reduces tyrosinase-related proteins 1 and 2 expression in melanocytes. Biotechnology Letters. 34 (5), 805-812 (2012).
  10. Jun, H. J., et al. Dual inhibitions of lemon balm (Melissa officinalis) ethanolic extract on melanogenesis in B16-F1 murine melanocytes: inhibition of tyrosinase activity and its gene expression. Food Science and Biotechnology. 20 (4), 1051-1059 (2011).
  11. Jun, H. J., et al. p-Coumaric acid inhibition of CREB phosphorylation reduces cellular melanogenesis. European Food Research and Technology. 235 (6), 1207-1211 (2012).
  12. Jun, H. J., et al. Dual inhibition of γ-oryzanol on cellular melanogenesis: inhibition of tyrosinase activity and reduction of melanogenic gene expression by a protein kinase a-dependent mechanism. Journal of Natural Products. 75 (10), 1706-1711 (2012).
  13. Choi, Y. M., et al. Effects of the isoflavone puerarin and its glycosides on melanogenesis in B16 melanocytes. European Food Research and Technology. 231 (1), 75-83 (2010).
  14. Cho, B. R., Jun, H. J., Thach, T. T., Wu, C., Lee, S. J. Betaine reduces cellular melanin content via suppression of microphthalmia-associated transcription factor in B16-F1 murine melanocytes. Food Science and Biotechnology. 26 (5), 1391-1397 (2017).
  15. Overwijk, W. W., Restifo, N. P. B16 as a mouse model for human melanoma. Current Protocols in Immunology. , (2001).
  16. Virador, V. M., Kobayashi, N., Matsunaga, J., Hearing, V. J. A standardized protocol for assessing regulators of pigmentation. Analytical Biochemistry. 270 (2), 207-219 (1999).
  17. D’Mello, S. A. N., Finlay, G. J., Baguley, B. C., Askarian-Amiri, M. E. Signaling pathways in melanogenesis. International Journal of Molecular Sciences. 17 (7), 1144 (2016).
  18. Hou, L., Panthier, J. J., Arnheiter, H. Signaling and transcriptional regulation in the neural crest-derived melanocyte lineage: interactions between KIT and MITF. Development. 127 (24), 5379-5389 (2000).
  19. Hedley, S. J., Gawkrodger, D. J., Weetman, A. P., MacNeil, S. α-MSH and melanogenesis in normal human adult melanocytes. Pigment Cell Research. 11 (1), 45-56 (1998).
  20. Hu, D. N. Methodology for evaluation of melanin content and production of pigment cells in vitro. Photochemistry and Photobiology. 84 (3), 645-649 (2008).
  21. Carriel, V. S., et al. A novel histochemical method for a simultaneous staining of melanin and collagen fibers. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 59 (3), 270-277 (2011).
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Citazione di questo articolo
Kim, Y., Kim, M., Kweon, D., Lim, S., Lee, S. Quantification of Hypopigmentation Activity In Vitro. J. Vis. Exp. (145), e58185, doi:10.3791/58185 (2019).

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