Summary

CD4의 격리+ T-세포 및 분석의 순환 T-follicular 도우미 (cTfh) 6 컬러 Flow Cytometry 주변 혈액을 사용 하 여에서 셀 하위 집합

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

여기, 분리와 CD4의 특성에 대 한 프로토콜+ T-세포 인간 주변 혈액에서 하위 집합 설명. CD4 정화+ T-세포 cytometry T follicular 도우미 셀 하위 집합의 비율을 결정 하 여 분석 된다.

Abstract

탈 T follicular 도우미 (Tfh) 셀 활동은 자기 면역 조건에서 감지 하 고 B-세포 비-Hodgkin의 림프 종에서 림프 노드 microenvironment 분석은 그들의 존재는 임상 결과와 관련. T follicular 도우미 셀 (cTfh), 혈액에 Tfh 셀의 순환 메모리 구획 순환의 하위 집합 또한 질병에서 불안정 하 고 따라서 잠재적인 새로운 예측 생체를 나타냅니다. 주변 혈액 기반 테스트 상대적으로 비 침략 적 이며 간단한 직렬 모니터링 수 있기 때문에 유리 하다. 이 문서는 CD4 격리 하기 위한 방법을 설명 합니다+ T-세포, 인간의 혈액과 cytometry cTfh 세포와 그들의 다양 한 하위 집합의 비율을 열거 하 여 추가 분석에서 (cTfhPD-1-/ + / 안녕, cTfh1, 2, 17, cTfh1/17). 이러한 하위 수준 다음 림프 종으로 일반 과목과 환자 사이 비교 되었다. 우리는 방법을 정기적으로 수집한 환자 자료에서 신뢰할 수 있는 결과 얻기 위해 충분히 강력한 발견. 기술 분석에 대 한 설명 셀 정렬 및 RT-PCR 같은 다운스트림 응용 프로그램에 쉽게 적응 될 수 있다.

Introduction

T-follicular 도우미 셀 (Tfh)는는 CD4+ 림프 조직1에서 처음 특징은 T 세포 부분 집합. 이러한 세포 PD-1, CXCR5 표면 수용 체를 표현 하 고 IL-21 및 IL-4 분 비 녹음 방송 요인, BCL-62,3의 핵 식 표시. 그들의 이름에서 알 수 있듯이, 그들은 어린 싹 센터에서 발견 되 고 높은 친 화력 항 체 생산1에 필수적인.

Dysregulated Tfh 응답 질병 병 인, 특히 자가 면역 질환, 그들은 autoreactive B 세포4의 확장을 추진 하는 어디에 연루 되었습니다. 그들은 또한 단단한5,6 의 림프 암7종양 microenvironment에서 역할을 재생할. 반대로, Tfh 필수적인 표면 단백질의 유전자 결함 인간 면역 결핍 증후군8T-셀 costimulator (ICOS) 결과 유도할 수 있는 등 기능. CD4+ CXCR5+ 인간의 말 초 혈액에서 순환 T-follicular 도우미 셀 (cTfh) 불린다 전지와 Tfh 세포 조직9에서 메모리 구획 될 것으로 추정 된다. 여기에 설명 된 방법의 목적은 CD4 다음 cTfh 하위 집합의 분석+ 세포 주변 혈액 샘플에서 격리.

여러 cTfh 하위 집합 정의 하는 그들은 B-세포 도움을 제공 하는 효율성 다른9,10,,1112하나의 하위 집합에서 다릅니다. 대부분 눈에 띄게 면역 질환 있는 거기는 거의 항상 더 기능 PD-1에서 상대 증가 질병의 숫자에서 변경 되는 이러한 하위 집합의 상대적 비율+ 안녕 또는 cTfh2 또는 cTfh17 하위 집합 덜에 비해 기능 PD-1 또는 cTfh1 하위 집합12. 이러한 변경의 정도 자주 질병 활동과 autoantibody titers Tfh에서의 활동을 반영 될 수 있습니다 질병에서 예 후 바이오 마커로 cTfh 하위 집합 배포의 잠재적인 역할을 나타내는 등 임상 매개 변수 연관 림프 조직9,12,,1314. 또한, 참가자에 게 서 혈액 샘플을 채취는 빠르고, 안전 하 고, 허용 하며 그래서 직렬 질병의 진행 이나 치료에 응답의 분석에 대 한 모니터링

고립 된 c d 4 사용 하 여+ T-세포 전통적인 주변 혈액 단 셀 (PBMNC) 정지 이상 분석에 대 한 cTfh 셀의 상당한 수를 확보 하는 데 필요한 시간을 줄여 높은 처리량 흐름 cytometry 실험 수 있습니다. 이 흐름을 사용 하 여 희귀 cTfh 하위 집합에서 셀 정렬 셀 정렬 (FACS) 활성화 될 때 특히 도움이 됩니다. 효율성을 투입,이 정지 “일괄 처리” 교류 cytometry 실험에 사용 되는 샘플의 사용을 cryopreserved 수 있습니다. 테스트는 CD4+ 순도 cryopreservation 하지 감소 했다.

세포 표면 마커 슈미트 외.12, 에 의해 제안 된로 두 그룹의 통합된 체계의 사용 여기에 그들의 발견, 방법의 초기 단계에서 cTfh 셀 분류를 사용 하는 다른 실험실 다른 마커 제시 하는 동안 15 cTfh 및 단일 cytometry에 그들의 9 인식된 하위 집합의 동시 식별 수 있도록 실험.

유일한 세포 표면 마커를 사용 하는 셀 고정 또는 permeabilization, 필요 하지 않은 고 따라서 다운스트림 기능 연구에 대 한 살아으로 남아 있을 수 있습니다. 이 같은 항 체 패널 FACS를 사용 하 여 정렬 하는 세포에 의해 촉진 수 있습니다. 이 패널 교류 cytometer 사용의 제한에 대 한 허용 하는 다른 마커를 포함 하도록 확장 될 수 있습니다.

멀티 컬러 흐름 cytometry 실험의 분석 특히 때 세포 인구에에서 필요가 없습니다 분명 bi 모달 배포 마커 형광는 2 차원 점 작에 게이팅의 본질적으로 주관적인 성격 때문에 도전적 일 수 있다는 cTfh 세포와 그들의 하위 집합에 대 한 케이스입니다. 이러한 이유로, 그것은 인구의 더 나은 해상도 사용 하도록 설정 하 고 전략을 자신 있게 게이팅 설정 유물을 줄이기 위해 효과적인 컨트롤을 설정 하는 것이 필수적. 이와 같이 항 체 패널 디자인과 cytometry에 대 한 기본 컨트롤 설정 실험, 즉, 보상을 사용 하 여 및 FMO 컨트롤 단계 3.4.2와 3.4.3,respectively에 설명 되어 있습니다.

모든 cTfh 세포 CD4로 정의 된+ CXCR5+ CD45RA. 표현의 특성 Tfh 활성화 마커 PD 1의 수준 하위 집합 PD-1의 PD-1+ 또는 PD-1안녕하세요 cTfh 셀을 식별 하기 위해 다음 확인할 수 있습니다. 그런 다음, chemokine 수용 체 CXCR3 및 CCR6의 조합을 사용 하 여, 전통적인 Th1, 2 또는 17 셀, cTfh에 의해 표현 된 차동 나타낼 수 있다 cTfh1, 또는 CXCR3의 프로 파일에 의해 17-같은 2로+ CCR6, CXCR3CCR6, 및 CXCR3CCR6+, 각각.

우리의 실험실에서 사용 하는 항 체 패널은 표 1에 표시 됩니다. 사용자 자신의 로컬 교류 cytometer에서 사용할 수 있는 레이저와 빛 필터 구성에 대 한 계정에 그들의 fluorophore 선택 적응 해야 합니다.

다음 사항을 fluorophores의 영향. 가능한 경우 밝은 fluorophores를 사용 합니다. 특히, 흐릿한 (매우 보다 적게 표현된) 표식에 밝은 사용할 수 fluorophores를 사용 합니다. 주차 마커 포함 PD-1, CXCR3 및 CCR6, 그리고 조금 적게, CXCR5. 우리는 특히 BB, BV와 BUV의 최신 사용 하 여 만든 fluorophores 우수한 밝기를 제공 하 고 이렇게 세포의 고유한 인구의 쉽게 확인 가능.

Fluorophore 선택 방출 스펙트럼 스펙트럼 중복 및 따라서 요구 하는 보상의 수준을 최소화 하기 위해 가능한 한 많이 분산. 교류 cytometry 패널 설계를 지원 하기 위해 사용할 수 있는 무료 온라인 도구를 여기서 찾을 수 있습니다: http://www.bdbioscienes.com/us/s/spectrumviewer. 방출 스펙트럼에 공간을 절약 하기 위해 우리는 모두 죽은 감지 (및 제외) APC H7 (CD45RA 활용)와 겹치는 방출 파장을 가진 생존 염료를 사용 하 여 “덤프 채널”를 고용 또는 CD45RA+ 를 사용 하는 단일 탐지기입니다.

여기, 프로토콜 cytometry 다르고 최근 설명 순환 하위 집합의 비율을 결정 하 여 말 초 혈액 CD4의 절연은+ T-세포 및 그들의 연속적인 분석을 위해 제공 됩니다.

Protocol

혈액 샘플은 일반 과목 (NS)에서 가져온 (n = 12) 한계 영역 림프 종 (MZL) 환자 뿐만 아니라 (n = 7) B-세포 비-Hodgkin의 림프 종 (BNHL) (6 층 환자, 2 lymphoplasmacytic 림프 종 환자와 1 학년 B-세포의 비-Hodgkin의 림프 종 하지 않으면 지정 환자). 환자는 후 부여 하는 데, 장소에서 모든 연구에 대 한 윤리적인 승인을 서 면된 동의 레스터 로얄 실에서 혈액학 클리닉에서 채용 했다. 레스터, 노스 햄프셔와 러 틀 랜?…

Representative Results

높은 CD4+ 순도 c d 4를 사용 하 여 달성 되었다+ 회사에 의해 했다 모든 혈액 샘플에서 신뢰할 수 있는 격리 프로토콜 테스트 (의미: 96.6%, SD: 2.38, n = 31) (그림 3). CTfh의 식별 (CD4+ CXCR5+ 세포) 대표 정상적인 주제에(그림 4)제공 됩니다. CD4 내?…

Discussion

이 프로토콜 분석 주변 혈액 cTfh 셀, 지금까지 문학에서 확인 된 모든 관련 하위 집합의 검색을 활성화 하 간단 하 고 효율적인 방법을 나타냅니다. 혈액 샘플 얻어질 수 있다 쉽고 효율적으로 표준 외래 환자 진료소와 직렬 샘플의 일부 임상 데이터와 동시에 수집 될 수 있습니다. 차례 차례로, 질병의 진행 이나 치료에 대 한 생체로 cTfh 하위 집합을 평가 하는 예비 연구 수 있습니다. 이러한 연구?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

작업 전송 블록 끝을 MJA 백혈병 영국에서에서 교부 금에 의해 지원 되었다.

Materials

RosetteSep Human CD4+ T Cell Enrichment Cocktail STEMCELL TECHNOLOGIES 15062
Ficoll-Paque PLUS GE Healthcare Life Sciences 17144003
BUV395 Mouse Anti-Human CD183 Clone 1C6/CXCR3 BD Horizon 565223
BV711 Mouse Anti-Human CD196 (CCR6) Clone 11A9 BD Horizon 563923
BV421 Rat Anti-Human CXCR5 (CD185) Clone RF8B2 BD Horizon 562747
BB515 Mouse Anti-Human CD4 Clone  RPA-T4 BD Horizon 564419
PE Mouse Anti-Human CD279 Clone MIH4 BD Pharmingen 557946
APC-H7 Mouse Anti-Human CD45RA Clone  HI100 BD Pharmingen 560674
LIVE/DEAD Fixable Far Red Dead Cell Stain Kit, for 633 or 635 nm excitation ThermoFisher Scientific L34973
Brilliant Stain Buffer BD Horizon 563794
Anti-Mouse Ig, κ/Negative Control Compensation Particles Set BD CompBead 552843
FACS Aria II Flow Cytometer BD Biosciences 644832
FACSDiva 6.1.3 BD Biosciences 643629 Flow Cytometer Acquisition Software
FlowJo 10.2 Treestar Inc. Flow Cytometry Data Analysis Software
Anti-CXCR3 antibody BD Horizon  565223
Anti-CCR6 antibody BD Horizon  563923
Anti-CXCR5 antibody BD Horizon  562747
Anti-CD4 antibody BD Horizon  564419
Anti-PD-1 antibody BD Pharmingen  557946
Anti-CD45RA antibody BD Pharmingen  560674
Viability Marker ThermoFisher Scientific  L34973

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Byford, E., Carr, M., Piñon, L., Ahearne, M. J., Wagner, S. D. Isolation of CD4+ T-cells and Analysis of Circulating T-follicular Helper (cTfh) Cell Subsets from Peripheral Blood Using 6-color Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (143), e58431, doi:10.3791/58431 (2019).

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