Summary

Usando microtiter prato Radiolabeling para múltiplo in vivo medições de Escherichia coli (p) ppGpp seguido por cromatografia em camada fina

Published: June 04, 2019
doi:

Summary

O crescimento de culturas bacterianas radiolabeled em pratos do de microtitulação facilita a amostragem elevada da taxa de transferência que permite testes técnicos e biológicos múltiplos da repetição da abundância da associação do nucleotide, incluindo aquele de (p) ppgpp. Os efeitos das transições de crescimento provocados por fontes de estresse fisiológico, bem como a recuperação do estresse podem ser monitorados.

Abstract

O nucleotídeo (p) ppGpp funciona como um regulador global em bactérias em resposta a uma variedade de estresse físico e nutricional. Tem um início rápido, em segundos, o que leva ao acúmulo de níveis que se aproximam ou excedem os de pools de GTP. Ocasiões de reversão de estresse um rápido desaparecimento de (p) ppGpp, muitas vezes com uma meia-vida de menos de um minuto. A presença de (p) ppGpp resulta em alterações da expressão gênica celular e do metabolismo que contrariam os efeitos nocivos do estresse. As bactérias Gram-negativas e Gram-positivas têm diferentes mecanismos de resposta, mas ambas dependem da (p) concentração de ppGpp. Em todo o caso, há uma necessidade de monitorar simultaneamente muitas culturas bacterianas radioolabeled em intervalos de tempo que podem variar de 10 segundos às horas durante períodos críticos da transição do esforço. Este protocolo aborda este desafio técnico. O método aproveita-se das incubadoras do prato da temperatura-e do Shaker-controlled do de microtitulação que permitem a monitoração paralela do crescimento (absorvância) e a amostragem rápida de culturas uniformemente fosfato-radiolabeled para resolver e quantificar associações do nucleotide por cromatografia em camada delgada em PEI-celulose. Pequenas quantidades de amostra são necessárias para múltiplas repetições técnicas e biológicas de análises. As transições complexas de crescimento, como o crescimento diauxico e as taxas de rotatividade rápida (p) ppGpp, podem ser avaliadas quantitativamente por esse método.

Introduction

O (p) ppgpp segundo mensageiro é um regulador global que modula a expressão de um grande número de genes, incluindo genes para sintetizar ribossomas e aminoácidos1,2. Embora inicialmente descoberto em Escherichia coli3, (p) ppgpp pode ser encontrado em bactérias gram positivas e Gram negativas, bem como em clorotipados de plantas4,5. Para e . coli e outras bactérias Gram-negativas, (p) ppgpp interage diretamente com a RNA polimerase em dois sítios diferentes6,7,8. Em gram positivos, (p) ppgpp inibe a abundância de GTP, que é detectado por CodY, uma proteína de ligação de GTP com motivos de reconhecimento de DNA específicos do gene que levam à regulação9,10. (p) o ppgpp se acumula em resposta à inanição por diferentes nutrientes e condições de estresse, resultando em crescimento lento e ajustes da expressão gênica para permitir a adaptação ao estresse11,12.

A quantidade líquida de ppgpp acumulada reflecte um equilíbrio entre as actividades da sintetase e da hidrolase. Em e. coli RelA é uma forte sintetase e mancha é bifuncional, com uma forte hidlase e uma sintetase fraca, cada uma das quais pode ser regulada de forma diferente de forma dependente do stress. A forte relação sintetase é ativada quando a disponibilidade de Codon-especificado cobrado tRNA vinculado ao ribossomal um site quando ele não consegue acompanhar as demandas de síntese protéica13,14,15. O ponto fraco (p) ppgpp sintetase é ativado enquanto a forte (p) ppgpp hidrolase é inibida em resposta a outras condições de estresse e através de outros mecanismos. algumas condições, proteínas como ACP ou RSD podem se vincular ao ponto, o que também altera o equilíbrio entre a hidrólise e a síntese16,17. Em gram positivos, a síntese e a hidrólise refletem um equilíbrio mais complexo entre uma única proteína do homólogo do ponto de RelA (RSH) com atividades fortes da síntese e da hidrólise assim como hidrolases e/ou sintetases menores12.

Os nucleotídeos de (p) ppgpp foram descobertos primeiramente como os pontos 32p etiquetados incomuns que apareceram em autoradiograms de cromatogramas da fino-camada (TLC) durante uma resposta estrita induzida pela inanição do ácido aminado3. Os protocolos de rotulagem mais detalhados foram revistos 18. O protocolo descrito aqui (Figura 1) é uma modificação desses protocolos que permite o monitoramento do crescimento de múltiplas amostras em placas de de microtitulação. Isso facilita múltiplas estimativas biológicas e técnicas de (p) alterações na abundância de ppGpp e foi inicialmente desenvolvida para estudos de turnos diauxínicos19. A rotulagem de (p) ppGpp com 32p e detecção por TLC também permite medições de (p) taxas de degradação de ppgpp. Métodos alternativos foram desenvolvidos para determinar os níveis de ppGpp (p) como espectrometria de massas, HPLC20, quimiosensoresfluorescentes 21,22e fusões de genes GFP a promotores afetados pelo ppgpp23, os quimiosensores 24. fluorescentes têm atualmente um uso limitado devido a deslocamentos espectrais pequenos após o ppgpp obrigatório assim como os problemas que distinguem entre ppgpp e pppgpp21. Este método é eficiente para detectar (p) ppGpp in vitro, mas não em extratos celulares. Os métodos que envolvem HPLC foram melhorados20 mas exigem o equipamento caro e não são adaptados bem ao elevado-põr. Finalmente, as fusões de GFP podem dar uma estimativa da ativação ou da inibição dependente do ppGpp, mas não medem o próprio ppGpp. Quando cada um destes métodos alternativos for valioso, exigem o equipamento caro ou o tempo hands-on substancial, ou são de outra maneira não passíveis à amostragem cinética múltipla e ao processamento subseqüente. Com o método descrito aqui, 96 amostras podem ser aplicadas a seis placas TLC em cerca de 20 min (18 amostras por placa), resolvidas pelo desenvolvimento de TLC em menos de um par de horas, com dados quantitativos obtidos após várias horas ou durante a noite, dependendo da rotulagem Intensidade.

Protocol

1. preparação de mídia Para MOPS (3-(N-morpholino) propanesulfonic ácido) Media25, use 1/10 volume de 10x Mops sais, 1/100 volume de 100x micronutrientes solução, 3 mm fosfato de sódio para culturas overnight ou 0,2 mm fosfato de sódio para a rotulagem uniforme com 32P, 0,2% de glicose e 1 μg/mL de tiamina (vitamina B1). Adicionar aminoácidos a 40 μg/mL, se necessário. Para os sais de MOPAS, use 400 mM MOPS, 40 mM Tricine, 0,1 mM FeSO<su…

Representative Results

Em cepas de E. coli K-12, a adição de valina provoca uma inanição endógena de isoleucina, o que resulta em um aumento dos níveis de ppGpp após 5 min3. As células cultivadas em MOPS contendo todos os aminoácidos, exceto para ILV, foram rotuladas com 32P conforme indicado na Figura 1. Uma vez rotulado, foram adicionados 6 μL de 10 mg/mL de L-valina (100 μg/mL de concentração final) para produzir inanição de isoleucina. As amostr…

Discussion

Conseguir a rotulagem uniforme próxima das pilhas é uma etapa crítica para este protocolo. Portanto, o uso de meios de comunicação definidos, como MOPS ou Tris, é crucial para permitir a variação das concentrações de fosfato de portador e atividade específica. A mídia tamponada por fosfato, como M9 ou mídia A, não pode ser usada. A maioria dos meios indefinidos contêm quantidades variáveis de fosfato, tais como LB, triptona e ácidos casamino. O isótopo de fosfato 33p é um emissor mais fraco …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa foi apoiada o programa de pesquisa intramural, Eunice Kennedy Shriver Instituto Nacional de saúde da criança e desenvolvimento humano, NIH.

Materials

(NH4)6(MO7)24 Fisher Scientifics A-674
Autoradiography film Denville scientific inc. E3218
CaCl2 J.T.Baker 1-1309
Chloramphenicol RPI C61000-25.0
CoCl2 Fisher Scientifics C-371
CuSO4 J.T.Baker 1843
FeSO4 Fisher Scientifics I-146
Formic acid Fisher Biotech BP1215-500
Glucose Macron 4912-12
H3BO4 Macron 2549-04
H3PO4 J.T.Baker 0260-02
K2SO4 Sigma P9458-250G
KH2PO4 Fisher Biotech BP362-500
L-Valine Sigma V-6504
MgCl2 Fisher Scientifics FL-06-0303
Microplate reader Synergy HT Biotek Synergy HT
MnCl2 Sigma M-9522
MOPS Sigma M1254-1KG
Na2HPO4 Mallinckrodt 7892
NaCl J.T.Baker 3624-01
NaH2PO4 Mallinckrodt 7917
NH4Cl Sigma A0171-500G
P-32 radionuclide, orthophosphoric acid in 1 mL water (5 mCi) Perkin Elmer NEX053005MC
Storage phosphor screen Kodak So230
Thermomixer Eppendorf 5382000015
Thiamine Sigma T-4625
TLC PEI Cellulose F Merk-Millipore 1.05579.0001
Tricine RPI T2400-500.0
Typhoon 9400 imager GE Healthcare
ZnSO4 Fisher Scientifics Z-68

Riferimenti

  1. Cashel, M., Gentry, D., Hernandez, V., Vinella, D. The stringent Response. Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology. , 1458-1489 (1996).
  2. Magnusson, L. U., Farewell, A., Nyström, T. ppGpp: a global regulator in Escherichia coli. Trends in Microbiology. 13 (5), 236-242 (2005).
  3. Cashel, M., Gallant, J. Two Compounds implicated in the Function of the RC Gene of Escherichia coli. Nature. 221 (5183), 838-841 (1969).
  4. Braeken, K., Moris, M., Daniels, R., Vanderleyden, J., Michiels, J. New horizons for (p)ppGpp in bacterial and plant physiology. Trends in Microbiology. 14 (1), 45-54 (2006).
  5. Atkinson, G. C., Tenson, T., Hauryliuk, V. The RelA/SpoT homolog (RSH) superfamily: distribution and functional evolution of ppGpp synthetases and hydrolases across the tree of life. PloS One. 6 (8), e23479 (2011).
  6. Mechold, U., Potrykus, K., Murphy, H., Murakami, K. S., Cashel, M. Differential regulation by ppGpp versus pppGpp in Escherichia coli. Nucleic Acids Research. 41 (12), 6175-6189 (2013).
  7. Molodtsov, V., et al. Allosteric Effector ppGpp Potentiates the Inhibition of Transcript Initiation by DksA. Molecular Cell. 69 (5), 828-839 (2018).
  8. Ross, W., Sanchez-Vazquez, P., Chen, A. Y. Y., Lee, J. -. H. H., Burgos, H. L. L., Gourse, R. L. L. ppGpp Binding to a Site at the RNAP-DksA Interface Accounts for Its Dramatic Effects on Transcription Initiation during the Stringent Response. Molecular Cell. 62 (6), 811-823 (2016).
  9. Kriel, A., et al. Direct Regulation of GTP Homeostasis by (p)ppGpp: A Critical Component of Viability and Stress Resistance. Molecular Cell. 48 (2), 231-241 (2012).
  10. Kriel, A., et al. GTP dysregulation in Bacillus subtilis cells lacking (p)ppGpp results in phenotypic amino acid auxotrophy and failure to adapt to nutrient downshift and regulate biosynthesis genes. Journal of Bacteriology. 196 (1), 189-201 (2014).
  11. Potrykus, K., Cashel, M. p)ppGpp: still magical. Annual Review of Microbiology. 62, 35-51 (2008).
  12. Hauryliuk, V., Atkinson, G. C., Murakami, K. S., Tenson, T., Gerdes, K. Recent functional insights into the role of (p)ppGpp in bacterial physiology. Nature Reviews Microbiology. 13 (5), 298-309 (2015).
  13. Arenz, S., et al. The stringent factor RelA adopts an open conformation on the ribosome to stimulate ppGpp synthesis. Nucleic Acids Research. 44 (13), 6471-6481 (2016).
  14. Loveland, A. B., et al. Ribosome•RelA structures reveal the mechanism of stringent response activation. eLife. 5, e17029 (2016).
  15. Brown, A., Fernández, I. S., Gordiyenko, Y., Ramakrishnan, V. Ribosome-dependent activation of stringent control. Nature. 534 (7606), 277-280 (2016).
  16. Battesti, A., Bouveret, E. Acyl carrier protein/SpoT interaction, the switch linking SpoT-dependent stress response to fatty acid metabolism. Molecular Microbiology. 62 (4), 1048-1063 (2006).
  17. Lee, J. -. W., Park, Y. -. H., Seok, Y. -. J. Rsd balances (p)ppGpp level by stimulating the hydrolase activity of SpoT during carbon source downshift in Escherichia coli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (29), E6845-E6854 (2018).
  18. Cashel, M. Detection of (p)ppGpp Accumulation Patterns in Escherichia coli mutants. Molecular Microbiology Techniques. 3, 341-356 (1994).
  19. Fernández-Coll, L., Cashel, M. Contributions of SpoT Hydrolase, SpoT Synthetase, and RelA Synthetase to Carbon Source Diauxic Growth Transitions in Escherichia coli. Frontiers in Microbiology. , (2018).
  20. Varik, V., Oliveira, S. R. A., Hauryliuk, V., Tenson, T. HPLC-based quantification of bacterial housekeeping nucleotides and alarmone messengers ppGpp and pppGpp. Scientific Reports. 7 (1), 11022 (2017).
  21. Rhee, H. -. W., et al. Selective Fluorescent Chemosensor for the Bacterial Alarmone (p)ppGpp. J. Am. Chem. Soc. 130 (3), 784-785 (2008).
  22. Wang, J., Chen, W., Liu, X., Wesdemiotis, C., Pang, Y. A Mononuclear Zinc Complex for Selective Detection of Diphosphate via Fluorescence ESIPT Turn-On. Journal of Materials Chemistry B. 2 (21), 3349-3354 (2014).
  23. Pokhilko, A. Monitoring of nutrient limitation in growing E. coli: a mathematical model of a ppGpp-based biosensor. BMC Systems Biology. 11 (1), 106 (2017).
  24. Funabashi, H., Mie, M., Yanagida, Y., Kobatake, E., Aizawa, M. Fluorescent monitoring of cellular physiological status depending on the accumulation of ppGpp. Biotechnology Letters. 24 (4), 269-273 (2002).
  25. Neidhardt, F. C., Bloch, P. L., Smith, D. F. Culture medium for enterobacteria. Journal of Bacteriology. 119 (3), 736-747 (1974).
  26. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  27. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  28. Peselis, A., Serganov, A. ykkC riboswitches employ an add-on helix to adjust specificity for polyanionic ligands. Nature Chemical Biology. 14 (9), 887-894 (2018).
  29. Oki, T., Yoshimoto, A., Sato, S., Takamatsu, A. Purine nucleotide pyrophosphotransferase from Streptomyces morookaensis, capable of synthesizing pppApp and pppGpp. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Enzymology. 410 (2), 262-272 (1975).
  30. Travers, A. A. ppApp alters transcriptional selectivity of Escherichia coli RNA polymerase. FEBS Letters. 94 (2), 345-348 (1978).
  31. Bruhn-Olszewska, B., et al. Structure-function comparisons of (p)ppApp vs (p)ppGpp for Escherichia coli RNA polymerase binding sites and for rrnB P1 promoter regulatory responses in vitro. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Gene Regulatory Mechanisms. 1861 (8), 731-742 (2018).
check_url/it/59595?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Fernández-Coll, L., Cashel, M. Using Microtiter Dish Radiolabeling for Multiple In Vivo Measurements Of Escherichia coli (p)ppGpp Followed by Thin Layer Chromatography. J. Vis. Exp. (148), e59595, doi:10.3791/59595 (2019).

View Video