Summary

Ein 3D Spheroid Modell für Glioblastom

Published: April 09, 2020
doi:

Summary

Hier beschreiben wir einen einfach zu bedienenden Invasionstest für Glioblastom. Dieser Test eignet sich für glioblastom-Stammzellen. Ein Fidschi-Makro zur einfachen Quantifizierung von Invasion, Migration und Proliferation wird ebenfalls beschrieben.

Abstract

Zweidimensionale (2D) Zellkulturen imitieren das In-vivo-Tumorwachstum nicht zufriedenstellend. Daher wurden dreidimensionale (3D) Kultursphäroidmodelle entwickelt. Diese Modelle können im Bereich der Neuroonkologie besonders wichtig sein. Tatsächlich haben Hirntumoren die Tendenz, in die gesunde Gehirnumgebung einzudringen. Wir beschreiben hierin einen idealen 3D-Glioblastom-Sphäroid-basierten Assay, den wir entwickelt haben, um Tumorinvasionen zu untersuchen. Wir stellen ihnen alle technischen Details und Analysewerkzeuge zur Verfügung, um diesen Test erfolgreich durchzuführen.

Introduction

In den meisten Studien mit primären oder kommerziell erhältlichen Zelllinien werden Assays an Zellen durchgeführt, die auf Kunststoffoberflächen als Monolayer-Kulturen angebaut werden. Das Verwalten der Zellkultur in 2D stellt Nachteile dar, da sie keine in vivo 3D-Zellenumgebung imitiert. In 2D-Kulturen ist die gesamte Zelloberfläche direkt mit dem Medium in Kontakt, verändert das Zellwachstum und verändert die Verfügbarkeit von Medikamenten. Darüber hinaus löst die nichtphysiologische Kunststoffoberfläche die Zelldifferenzierung1aus. Um diese Schwierigkeiten zu überwinden, wurden dreidimensionale Kulturmodelle entwickelt. Sie haben den Vorteil, die multizelluläre Architektur und Heterogenität von Tumoren2nachzuahmen, und könnten daher als relevanteres Modell für solide Tumoren betrachtet werden3. Die komplexe Morphologie von Sphäroiden trägt zur besseren Beurteilung von Medikamentendurchschlagskraft und Resistenzbei 4. Die Tumorheterogenität im Sphäroid wirkt sich auf die Diffusion von Sauerstoff und Nährstoffen und die Reaktion auf pharmakologische Wirkstoffe aus (Abbildung 1A). Die Diffusion von Sauerstoff wird verändert, wenn die Sphäroidgröße 300 m erreicht, was eine hypoxische Umgebung in der Mitte des Sphäroids induzieren diniert (Abbildung 1A,C). Metaboliten sind auch weniger durch die Zellschichten eindringen und kompensierenmetabolische Reaktionen stattfinden5. Wenn der Durchmesser des Sphäroids zunimmt, können nekrotische Kerne beobachtet werden, die weitere Imitieren von Eigenschaften bei vielen festen Krebsarten, einschließlich des aggressiven Hirntumorglioblastoms (GBM)6.

Mehrere 2D- oder 3D-Invasions-Assays für Glioblastom wurden in der Literatur7,8berichtet. Zweidimensionale Assays sind hauptsächlich für die Untersuchung der Invasion in einer horizontalen Ebene auf einer dünnen Matrixschicht oder in einem Boyden-Kammer-Assay9. Dreidimensionale Assays wurden mit 3D-Sphäroidkulturen mit klassischen Glioblastom-Zelllinien10beschrieben. Komplexere Varianten werden durch die Invasion von Hirnorganoiden durch Tumorsphäride in Konfrontationskulturendargestellt 11. Dennoch ist es wichtig, einen benutzerfreundlichen und reproduzierbaren Assay zu entwickeln, der jedem Labor zur Verfügung steht. Wir haben ein Protokoll entwickelt, um glioblastom-Stammzellen aus Patientenproben zu erzeugen. Die Quantifizierung dieser Assays ist leicht zu handhaben und erfordert nur Open-Access-Online-Software. Kurz gesagt, Tumorstücke werden in kleine Stücke geschnitten und enzymatisch verdaut. Einzelne Zellen, die aus der Verdauung gewonnen werden, werden in neurobasalen Medien kultiviert. Nach 4-7 Tagen bilden sich spontan Sphäroidstrukturen. Bei der intrakraniellen Implantation in Mäusemodellen bilden sie Tumore, die einen nekrotischen Kern aufweisen, der von Pseudo-Palisading-Zellen umgeben ist12. Dies ähnelt den Merkmalen von GBM-Patienten.

In diesem Artikel beschreiben wir unser Protokoll zur Herstellung von Sphäroiden aus einer bestimmten Anzahl von Zellen, um die Reproduzierbarkeit zu gewährleisten. Dazu können zwei komplementäre Matrizen verwendet werden: Matrigel und Kollagen Typ I. Matrigel ist mit Wachstumsfaktoren angereichert und imitiert die für die Zellanhaftung und Migration erforderliche Säugetierbasalmembran. Auf der anderen Seite ist Kollagen Typ I, ein strukturelles Element von Stroma, die häufigste fibrilläre extrazelluläre Matrix und wird in Zellinvasions-Assays verwendet. Hierin veranschaulichen wir unser GBM Sphäroid-Modell, indem wir Migrations- und Proliferationstests durchführen. Die Analyse erfolgte nicht nur zu festen Zeitpunkten, sondern auch durch die Überwachung der Sphäroidexpansion und Zellbewegung durch Live-Bildgebung. Darüber hinaus wurde die Elektronenmikroskopie durchgeführt, um morphologische Details zu visualisieren.

Protocol

Von allen Patienten (vom Haukeland Hospital, Bergen, Norwegen gemäß den Vorschriften der örtlichen Ethikkommission) wurde eine schriftliche Schriftliche Zustimmung eingeholt. Unser Protokoll folgt den Richtlinien der Ethikkommission für Humanforschung unserer Institution. 1. Erzeugung von tumorsphäroiden in einheitlicher Größe HINWEIS: Stem-ähnliche Zellen werden in neurobasalen Medium speziert, ergänzt durch B27-Ergänzung, Heparin, FGF-2, Penicillin und Str…

Representative Results

Sphäroide wurden wie im Protokollabschnitt beschrieben vorbereitet und Beobachtungen in Bezug auf Migration, Invasion, Proliferation und Mikroskopie gemacht. Zur Messung der Hypoxie in verschiedenen Bereichen der sphärischen Struktur wurde zur Bestimmung der hypoxischen Aktivität die karboxische Anhydrase IX-Färbung verwendet (Abbildung 1A-C). Weitere CAIX-positive Zellen wurden im Sphäroidzentrum beobachtet (Abbildu…

Discussion

Tumor-Sphäroid-Assays sind gut geeignet, um Tumoreigenschaften wie Proliferation, Invasion und Migration sowie Zelltod und Medikamentenreaktion zu untersuchen. Krebszellen dringen in die 3D-Matrix ein und bilden einen invasiven Mikrotumor, wie in Abbildung 4B,Czu sehen ist. Während des invasiven Prozesses können Matrix-Metalloproteinasen (MMP) Matrizen, die Tumorzellen13umgeben, und MMP-Inhibitoren (z. B. GM6001 oder Rebimastat) die Zellinvasion be…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde unterstützt von Transcan 2017, ARC 2017, Ligue Contre le Cancer (Comité de la Gironde et de la Charente-Maritime). Joris Guyon ist Stipendiat des Universitätsklinikums Toulouse (CHU Toulouse).

Materials

96 well round-bottom plate Falcon 08-772-212
Accutase Gibco A11105-01 Stored at 4 °C, sphere dissociation enzyme
B27 Gibco 12587 Stored at -20 °C, defrost before use
Basic Fibroblast Growth Factor Peprotech 100-18B Stored at -20 °C, defrost before use
Countess Cell Counting Chamber Slides Invitrogen C10283
DPBS 10X Pan Biotech P04-53-500 Stored at 4 °C
Fiji software ImageJ Used to analyze pictures
Flask 75 cm2 Falcon 10497302
Matrigel Corning 354230 Stored at -20 °C, diluted to a final concentration of 0.2 mg/mL in cold NBM
Methylcellulose Sigma M0512 Diluted in NBM for a 2% final concentration
NBM Gibco 21103-049 Stored at 4 °C
Neurobasal medium Gibco 21103049 Stored at 4 °C
Penicillin – Streptomycin Gibco 15140-122 Stored at 4 °C
Trypan blue 0.4% ThermoFisher T10282 Used to cell counting
Type I Collagen Corning 354236 Stored at 4 °C

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Guyon, J., Andrique, L., Pujol, N., Røsland, G. V., Recher, G., Bikfalvi, A., Daubon, T. A 3D Spheroid Model for Glioblastoma. J. Vis. Exp. (158), e60998, doi:10.3791/60998 (2020).

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