Højhastigheds videomikroskopianalyse er en relativt let at udføre, hurtig, omkostningseffektiv og i erfarne hænder et betydeligt pålideligt værktøj til førstelinjediagnostik af primær ciliær dyskinesi, som bør være tilgængelig i alle centre, der er involveret i diagnostik og behandling af alvorlige lungesygdomme.
Primær ciliær dyskinesi (PCD) er en medfødt lidelse, der overvejende er arvet i et autosomalt recessivt træk. Lidelsen forårsager forstyrrelse i bevægelsen af cilier, hvilket fører til alvorlig svækkelse af mucociliær clearance (MCC). Hvis udiagnosticeret eller diagnosticeret for sent, fører tilstanden til udvikling af bronchiectasis og alvorlig skade på lungerne senere i livet. De fleste af metoderne til diagnosticering af PCD er tidskrævende og kræver omfattende økonomiske ressourcer for at etablere dem. Højhastigheds videomikroskopianalyse (HSVMA) er det eneste diagnostiske værktøj til at visualisere og analysere levende åndedrætsceller med slående cilier in vitro. Det er hurtigt, omkostningseffektivt og i erfarne hænder meget pålideligt som et diagnostisk værktøj til PCD. Derudover er klassiske diagnostiske foranstaltninger såsom transmissionselektronmikroskopi (TEM) ikke anvendelige for nogle mutationer, da morfologiske ændringer er fraværende.
Dette papir beskriver processen med at indsamle respiratoriske epitelceller, den videre forberedelse af prøven og processen med HSVMA. Vi beskriver også, hvordan børstede celler med succes kan holdes uskadte og slå ved at opbevare dem i et nærende medium til opbevaring og transport til undersøgelsesstedet i tilfælde, hvor en klinik ikke har udstyret til at udføre HSVMA. Der vises også videoer med patologiske slagmønstre fra patienter med en mutation i dyneinarmens tunge kæde 11-gen (DNAH11), som ikke kan diagnosticeres med TEM; resultatet af en ufattelig HSVMA på grund af infektion i de øvre luftveje samt en mislykket børstning med overlejring af røde blodlegemer. Med denne artikel vil vi gerne opfordre alle enheder, der beskæftiger sig med pulmonologiske patienter og sjældne lungesygdomme, til at udføre HSVMA som en del af deres daglige rutinediagnostik for PCD eller sende prøverne over til et center med speciale i at udføre HSVMA.
Primær ciliær dyskinesi (PCD) er en sjælden, arvelig genetisk lidelse, som forårsager forstyrrelser i bevægelsen af at slå cilier. Hvis det ikke diagnosticeres, fører det til alvorlig lungeskade senere i livet på grund af alvorlig svækkelse af MCC. Tidligere er dens udbredelse blevet anslået til at ligge i intervallet 1: 4.000 til 50.000. På grund af støt forbedret diagnostik og en voksende bevidsthed om tilstanden tyder opdateringer om forekomsten af PCD på, at det kan være meget mere almindeligt og sandsynligvis i intervallet 1: 4.000 til 20.000 i stedet 1,2. Patienter med PCD er dog stadig underdiagnosticeret eller diagnosticeret for sent 1,3. Derfor bør spædbørn med enten medfødt situs inversus og/eller heterotaksi eller perinatal rhinoré, neonatal åndedrætsbesvær, en blokeret næse og fodringsvanskeligheder mistænkes for PCD. Senere i livet er kronisk otitis, tilbagevendende lungebetændelse, rhinosinusitis og en kronisk, typisk våd hoste på grund af nedsat MCC de kendetegnende symptomer på PCD, som i kombination med bronkiektase og nedsat lungefunktion fortsætter ind i voksenalderen2.
Patienter, der mistænkes for at have PCD, kan diagnosticeres ved hjælp af forskellige diagnostiske værktøjer. TEM er tidligere blevet betragtet som guldstandarden for førstelinjediagnostik. Imidlertid viser op til 30% af PCD-tilfælde ikke unormal ultrastruktur 1,3,4,5,6, hvilket kræver en anden diagnostisk tilgang. Derfor foreslår et stigende antal centre og retningslinjerne fra European Respiratory Society (ERS) en kombination af nasal nitrogenoxid (nNO) og HSVMA som førstelinjediagnostik 1,7,9,10. HSVMA og nNO er også de mest omkostningseffektive muligheder for at identificere en patient med PCD11. Men selv hvis genetisk testning var inkluderet i diagnosen, skal det huskes, at der i øjeblikket ikke er nogen selvstændig test eller kombination af tests, der kan udelukke PCD med 100% sikkerhed 8,9,10.
Ud af de tilgængelige diagnostiske muligheder er HSVMA den eneste test, der fokuserer på levende, ciliabelagte åndedrætsceller og evaluerer ciliary beat pattern (CBP) og ciliary beat frequency (CBF). I modsætning til TEM er resultaterne af HSVMA hurtigt tilgængelige, normalt på testdagen, mens resultaterne af TEM kan ankomme måneder efter, at prøven er taget. HSVMA kan anvendes til alle aldersgrupper, mens nNO kræver en høj grad af overholdelse; forsøg på at bruge det under 5 år er normalt mislykket10. I erfarne hænder har HSVMA fremragende følsomhed og specificitet til at diagnosticere PCD ved henholdsvis 100% og 96%12.
Dette papir beskriver den trinvise procedure til udførelse af HSVMA, herunder høst af ciliabelagte åndedrætsceller fra næsens ringere turbinat, bevarelse af høstede celler i et cellenærende medium til transport til undersøgelsesstedet og processen med mikroskopisk videoanalyse til bestemmelse af CBF og CBP. Derudover vises nogle videoklip fra patienter, der sammenligner normale CBP’er og CBF’er med unormal ciliafunktion (Video 3, Video 4, Video 5, Video 6, Video 7 og Video 8).
Her beskrives og diskuteres den diagnostiske proces for PCD ved hjælp af HSVMA i lyset af førstelinjediagnostik. På trods af at det er relativt let at etablere,omkostningseffektivt 11 og en pålidelig metode i erfarne hænder12, er HSVMA ikke en diagnostisk foranstaltning uden faldgruber. Unormal CBF og CBP kan skyldes sekundær infektion, hvilket fører til betændelse i broncho-respiratorisk epitel15, og af samme grund kan rygende individer have…
The authors have nothing to disclose.
Vi vil gerne udtrykke en særlig tak til den pædiatriske sygeplejerske fru Johanna Juvankoski for hendes fremragende hjælp med børstningerne. Vi vil også gerne udtrykke særlig taknemmelighed til professor Heymut Omran (University Clinic Münster, UKM) for at have givet tilladelse til at bruge det skematiske tal for normal ciliary motion fra deres hjemmeside. Endelig vil vi gerne takke Alan Brown BA (Hons), PGCE, for korrekturlæsning af manuskriptet.
Amoxiciline-clavulanic acid | Orion Oyj | 40 mg/kg divided in 2 doses/day, for adults 875/125 mg 1 tablet x2/day | |
Camera Software | Hamamatsu | HCI Image | |
Cold pack | any | for preservation and transport | |
Differential interference microscope | Carl Zeiss | Inverted, cell observer microscope | |
Digitial High Speed Video Camera | Hamamatsu | Orca Flash 4.0, digital camera type C11440 | |
Dulbecco´s Modified Eagle Medium | Thermo Fisher | 10565018 | basal cell culture medium |
Eppendorf tube | Eppendorf | 30120086 | 1.5 mL tube |
Glass-bottom microwell dish | MatTek | P35G-1.5-14-C | cuvette for microscopy |
Heating Unit | Carl Zeiss/PeCon | 810-450001 | Carl Zeiss incubation elements with PeCon TempModule S1 temperature control |
Interdental brush 0.6 mm | Doft | 872267 | Interdental brush on a long wire with a reusable handle and cap in zipbag |
Objective | Carl Zeiss | 100x/1.46, α Plan-Apochromat DIC objective | |
Small polystyrene box with lid | any | for transport |