Summary

Protokoll för att utveckla en lårbensosteotomimodell hos Wistar Albino-råttor

Published: August 31, 2022
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att iatrogent bryta axeln på lårbenet hos Wistar albino råttor och följa upp utvecklingen av callus. Denna osteotomimodell för lårben kan hjälpa forskare att utvärdera processen för frakturläkning och att studera hur ett läkemedel kan påverka frakturläkning.

Abstract

Frakturläkning är en fysiologisk process som resulterar i regenerering av bendefekter genom samordnad verkan av osteoblaster och osteoklaster. Osteoanabola läkemedel har potential att öka reparationen av frakturer men har begränsningar som höga kostnader eller oönskade biverkningar. Benläkningspotentialen hos ett läkemedel kan initialt bestämmas genom in vitro-studier , men in vivo-studier behövs för det slutliga beviset på konceptet. Vårt mål var att utveckla en lårben osteotomi gnagare modell som kan hjälpa forskare att förstå utvecklingen av kallusbildning efter fraktur av lårbenets axel och som kan hjälpa till att fastställa om ett potentiellt läkemedel har benläkande egenskaper. Vuxna manliga Wistar albino råttor användes efter godkännande av institutionella djurförsöksetiska kommittén. Gnagarna bedövades, och under aseptiska förhållanden skapades fullständiga tvärgående frakturer i mitten en tredjedel av lårbenens axlar med öppen osteotomi. Frakturerna reducerades och fixerades internt med hjälp av intramedullära K-trådar, och sekundär frakturläkning tilläts ske. Efter operationen gavs intraperitoneala analgetika och antibiotika i 5 dagar. Sekventiell röntgen varje vecka bedömde kallusbildning. Råttorna offrades baserat på radiologiskt förutbestämda tidpunkter, och utvecklingen av frakturkallusen analyserades radiologiskt och med hjälp av immunohistokemi.

Introduction

Ben är en tät bindväv som består av benbildande celler, osteoblasterna och benresorberande celler, osteoklasterna. Frakturläkning är en fysiologisk process som resulterar i regenerering av bendefekter genom samordnad verkan av osteoblaster och osteoklaster1. När det finns en fraktur är osteoblastisk och osteoklastisk aktivitet vid frakturstället några av de viktiga faktorer som bestämmer benläkning2. När frakturläkning avviker från sin normala kurs resulterar det i en försenad union, malunion eller nonunion. En fraktur sägs vara i icke-förening när det finns ett misslyckande av förening av frakturen i 9 månader, utan någon utveckling av reparation under de senaste 3 månaderna3. Cirka 10%-15% av alla frakturer upplever en fördröjning i reparationen som kan utvecklas till nonunion4. Nonunionfrekvensen för alla frakturer är 5% -10% och varierar beroende på benet som är involverat och platsen för fraktur5.

Den nuvarande behandlingen för behandling av frakturförening omfattar kirurgiska och / eller medicinska metoder. För närvarande kan fördröjd eller icke-förening av frakturer övervinnas genom kirurgiska strategier som bentransplantation. Bentransplantation har dock sina begränsningar och komplikationer som tillgänglighet av transplantatvävnad, smärta vid donatorplatsen, sjuklighet och infektion6. Medicinsk behandling omfattar osteoanabola läkemedel som benmorfogenetiskt protein (BMP) och teriparatid (parathormonanalog). För närvarande används osteoanabola agenter har potential att öka reparationen av frakturer men har begränsningar som orimliga kostnader eller oönskade biverkningar7. Därför finns det utrymme för att identifiera kostnadseffektiva, icke-kirurgiska alternativ för benläkning. Benläkningspotentialen hos ett läkemedel kan initialt bestämmas genom in vitro-studier , men in vivo-studier behövs för det slutliga beviset på konceptet. Ett läkemedel som är känt för att förbättra benläkning bör utvärderas in vitro och, om det visar sig lovande, kan användas för in vivo djurmodellstudier. Om läkemedlet visar sig främja benbildning och ombyggnad i in vivo-modellen kan det gå vidare till nästa steg (dvs. kliniska prövningar).

Att bedöma frakturläkning hos djur är ett logiskt steg framåt för att utvärdera ett nytt medel som introducerats för benläkning innan det genomgår mänskliga försök. För in vivo djurmodellstudier av frakturläkning har gnagare blivit en allt populärare modell8. Gnagarmodellerna har genererat ökande intresse på grund av de låga driftskostnaderna, det begränsade behovet av utrymme och mindre tid som behövs för benläkning9. Dessutom har gnagare ett brett spektrum av antikroppar och genmål, vilket möjliggör studier av de molekylära mekanismerna för benläkning och regenerering10. Ett konsensusmöte belyste omfattande olika benläkningsmodeller för smådjur och fokuserade på de olika parametrar som påverkar benläkning, samt betonade flera smådjursfrakturmodeller och implantat11.

Grundläggande sprickmodeller kan i stort sett delas in i öppna eller slutna modeller. Slutna frakturmodeller använder en tre- eller fyrpunkts böjkraft på benet och kräver inte ett konventionellt kirurgiskt tillvägagångssätt. De leder till sneda eller spiralfrakturer, som liknar långa benfrakturer hos människor, men bristen på standardisering av frakturplats och dimensioner kan fungera som en förvirrande faktor i dem12. Öppna frakturmodeller kräver kirurgisk åtkomst för benets osteotomi, hjälper till att uppnå ett mer konsekvent frakturmönster vid frakturstället, men är förknippade med fördröjd läkning jämfört med de slutna modellerna13. Valet av ben som används för att studera frakturläkning förblir huvudsakligen tibia och lårben på grund av deras dimensioner och tillgänglighet. Valet av platsen för fraktur är vanligtvis diafys eller metafys. Den metafysala regionen är speciellt vald i fall där frakturläkning studeras hos osteoporotiska ämnen, eftersom metafysen påverkas mer av osteoporos14. Flera implantat som intramedullära stift och externa fixatorer kan användas för att stabilisera frakturen11,15.

Målet med denna studie var att utveckla en enkel och lätt att följa gnagarmodell som kunde hjälpa forskare att inte bara förstå utvecklingen av kallus efter lårbenets fraktur utan kan hjälpa till att avgöra om ett potentiellt läkemedel har benläkande egenskaper genom att förstå mekanismen genom vilken det verkar.

Protocol

Djurförsök gjordes efter etiskt godkännande från Institutional Animal Ethics Committee (IAEC), AIIMS, New Delhi, Indien (286/IAEC-1/2021). 1. Preoperativt förfarande Hushane Wistar albino råttor 6-8 veckors ålder, väger mellan 150-200 g vardera, på en Central Animal Facility (CAF) i separata individuella burar. Detta säkerställer ingen kirurgisk / frakturskada när flera råttor delar burar. Håll råttorna vid en temperatur på 23 °C ± 2 °C i…

Representative Results

Denna studie genomfördes för att utveckla en lårben osteotomimodell i Wistar albino råttor. Denna modell kan användas för att utvärdera benläkning, liksom den osteogena effekten av ett lovande osteoanaboliskt läkemedel vid benläkning. Standard kirurgiska försiktighetsåtgärder och protokoll följdes. Sterila klänningar, draperier och kirurgisk utrustning användes för proceduren (figur 1). Utrustningen (tabell 1) steriliserades 48 timmar före operationen. Bed?…

Discussion

Denna metod beskriver tydligt de detaljer som behövs för att utveckla en fraktur osteotomi modell i Wistar albino råttor. Denna modell kan användas för att utvärdera den osteogena effekten av ett lovande osteoanaboliskt läkemedel vid frakturläkning, samt förstå komplikationerna med benläkning. Det framträdande med denna metod är att den är enkel och inte behöver för mycket tid eller sofistikerad utrustning. I denna metod valdes vuxna manliga Wistar-albinoråttor som gnagarmodell för experimenten. Enhetli…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Central Council for Research in Homoeopathy (CCRH), ministeriet för AYUSH, Indiens regering, för forskningsfinansiering. Författarna är tacksamma för hjälp och stöd från Central Animal Facility, AIIMS, New Delhi, för deras hjälp och stöd med djurförsöken och CMET, AIIMS, New Delhi, för deras hjälp och stöd inom fotografering och videografi.

Materials

Alcohol Raman & Weil Pvt. Ltd, Mumbai, Maharashtra, India MFG/MD/2019/000189 Sterillium hand disinfectant
Artery forceps  Nebula surgical, Gujarat, India G.105.05S 5", straight
Bard-Parker handle  Nebula surgical, Gujarat, India G.103.03 Size number 3
Betadine solution Win-medicare New Delhi, India UP14250000001 10% w/v Povidone iodine solution
Cat's-paw skin retractor  Nebula surgical, Gujarat, India 908.S Small
EDTA Sisco research laboratories Pvt. Ltd, Maharashtra, India 43272 Disodium salt
Eosin Sigma Aldrich, Merck Life Sciences Pvt Ltd, Mumbai, Maharashtra, India 115935 For preparing the staining solution 
Forceps (plain) Nebula surgical, Gujarat, India 115.06 6", plain
Forceps (toothed) Nebula surgical, Gujarat, India 117.06 6", toothed
Formaldehyde Sisco research laboratories Pvt. Ltd, Maharashtra, India 84439 For preparing the neutral buffered formalin 
Haematoxylin Sigma Aldrich, Merck Life Sciences Pvt Ltd, Mumbai, Maharashtra, India 104302 For preparing the staining solution 
Hammer Nebula surgical, Gujarat, India 401.M
Injection Cefuroxime Akumentis Healthcare Ltd, Thane, Maharashtra, India 48/UA/SC/P-2013 Cefuroxime sodium IP, 1.5 g/vial 
Injection Ketamine Baxter Pharmaceuticals India Private Limited, Gujarat, India G/28-B/6 Ketamine hydrochloride IP, 50 mg/mL 
Injection Xylazine Indian Immunologicals Limited, Hyderabad, Telangana, India 28/RR/AP/2009/F/G Xylazine hydrochloride USP, 20 mg/mL
Injection Lignocaine Jackson laboratories Pvt Limited, Punjab, India  1308-B 2% Lignocaine Hydrochloride IP, 21.3 mg/mL
Injection Tramadol  Intas Pharmaceuticals Limited, Ahmedabad, Gujarat, India MB/07/500 Tramadol hydrochloride IP, 50 mg/mL
K-wire  Nebula surgical, Gujarat, India 166 (1mm) 12", double ended
Mechanical drill for inserting K-wire ‎Bosch, Germany  06019F70K4 GSR 120-LI Professional
Metzenbaum cutting scissors  Nebula surgical, Gujarat, India G.121.06S 6", straight
Needle holder Nebula surgical, Gujarat, India G.108.06 6", straight
Ophthalmic ointment  GlaxoSmithKline Pharmaceutical Limited, Bengaluru, Karnataka, India KTK/28a/467/2001 Neomycin, Polymixin B sulfate and Bacitracin zinc ophthalmic ointment USP
Osteotome (chisel) Nebula surgical, Gujarat, India 1001.S.10 10 mm, straight
Periosteal elevator  Nebula surgical, Gujarat, India 918.10.S 10 mm, straight
Pliers cum wire cutter Nebula surgical, Gujarat, India 604.65
Reynold’s scissors Nebula surgical, Gujarat, India G.110.06S 6", straight
Standard semi-synthetic diet  Ashirvad Industries, Chandigarh, India No catalog number available Detailed composition provided in materials used
Steel cup for keeping betadine for application Local purchase No catalog number available
Steel tray with lid for autoclaving instruments Local purchase No catalog number available
Sterile gauze Ideal Healthcare Industries, Delhi, India  E(0047)/14/MNB/7951 Sterile, 5cmx5cm, 12 ply
Sterile marble block for support Local purchase No catalog number available Locally fabricated; autoclavable
Syringe and needle (1 mL)  Becton Dickinson India Pvt. Ltd., Haryana, India REF 303060 1 mL sterile Syringe with 26 G x 1/2 (0.45 mm x 13 mm) needle
Syringe and needle (2 mL)  Becton Dickinson India Pvt. Ltd., Haryana, India REF 307749 2 mL sterile syringe with 24 G x 1'' (0.55 mm x 25 mm) needle
Syringe and needle (10 mL)  Hindustan Syringes & Medical Devices Ltd. Faridabad, India  334-B(H) 10 mL sterile syringe with 21 G x1.5" (0.80 mm x 38 mm) needle
Surgical blades (size no.15) Paramount Surgimed Ltd, New Delhi, India for Medline Industries Inc, IL, USA REF MDS15115E Sterile, Single use
Surgical blades (size no.24) Paramount Surgimed Ltd, New Delhi, India for Medline Industries Inc, IL, USA REF MDS15124E Sterile, Single use
Sutures Healthium Medtech Pvt Ltd, Bangalore, Karnataka, India SN 3318 4-0, 16 mm, 3/8 circle cutting needle, monofilament polyamide suture 
Wax block in aluminium tray  Locally fabricated No catalog number available 30 cm x 30 cm x 4 cm aluminium tray containing wax (to prevent animal from slipping)
X-ray machine Philips India Ltd, Gurugram, Haryana SN19861013 Model: Philips Digital Diagnost R 4.2 

References

  1. Wang, T., Zhang, X., Bikle, D. D. Osteogenic differentiation of periosteal cells during fracture healing. Journal of Cellular Physiology. 232 (5), 913-921 (2017).
  2. Fakhry, M., Hamade, E., Badran, B., Buchet, R., Magne, D. Molecular mechanisms of mesenchymal stem cell differentiation towards osteoblasts. World Journal of Stem Cells. 5 (4), 136-148 (2013).
  3. Bishop, J. A., Palanca, A. A., Bellino, M. J., Lowenberg, D. W. Assessment of compromised fracture healing. JAAOS – Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 20 (5), 273-282 (2012).
  4. Fong, K., et al. Predictors of nonunion and reoperation in patients with fractures of the tibia: an observational study. BMC Musculoskeletal Disorders. 14 (1), 103 (2013).
  5. Ramoutar, D. N., Rodrigues, J., Quah, C., Boulton, C., Moran, C. G. Judet decortication and compression plate fixation of long bone nonunion: Is bone graft necessary. Injury. 42 (12), 1430-1434 (2011).
  6. Goulet, J. A., Senunas, L. E., DeSilva, G. L., Greenfield, M. L. V. H. Autogenous iliac crest bone graft: Complications and functional assessment. Clinical Orthopaedics and Related Research. 339, 76-81 (1997).
  7. Stevenson, M., et al. A systematic review and economic evaluation of alendronate, etidronate, risedronate, raloxifene and teriparatide for the prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. Health Technology Assessment. 9 (22), 1 (2005).
  8. Haffner-Luntzer, M., Kovtun, A., Rapp, A. E., Ignatius, A. Mouse models in bone fracture healing research. Current Molecular Biology Reports. 2 (2), 101-111 (2016).
  9. Mills, L. A., Simpson, A. H. R. W. In vivo models of bone repair. The Journal of Bone and Joint Surgery. British Volume. 94 (7), 865-874 (2012).
  10. Houdebine, L. -. M., Sioud, M. Transgenic Animal Models in Biomedical Research. Target Discovery and Validation Reviews and Protocols: Volume 1, Emerging Strategies for Targets and Biomarker Discovery. , (2007).
  11. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: Standards, tips and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  12. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  13. Klein, M., et al. Comparison of healing process in open osteotomy model and open fracture model: delayed healing of osteotomies after intramedullary screw fixation. Journal of Orthopaedic Research. 33 (7), 971-978 (2015).
  14. Kolios, L., et al. Do estrogen and alendronate improve metaphyseal fracture healing when applied as osteoporosis prophylaxis. Calcified Tissue International. 86 (1), 23-32 (2010).
  15. Holstein, J. H., et al. Advances in the establishment of defined mouse models for the study of fracture healing and bone regeneration. Journal of Orthopaedic Trauma. 23, 31-38 (2009).
  16. Umiatin, U., Dilogo, I. H., Sari, P., Wijaya, S. K. Histological analysis of bone callus in delayed union model fracture healing stimulated with pulsed electromagnetic fields (PEMF). Scientifica. 2021, 4791172 (2021).
  17. Han, W., et al. The osteogenic potential of human bone callus. Scientific Reports. 6, 36330 (2016).
  18. Haffner-Luntzer, M., et al. A novel mouse model to study fracture healing of the proximal femur. Journal of Orthopaedic Research. 38 (10), 2131-2138 (2020).
  19. Aurégan, J. C., et al. The rat model of femur fracture for bone and mineral research: An improved description of expected comminution, quantity of soft callus and incidence of complications. Bone & Joint Research. 2 (8), 149-154 (2013).
  20. Li, Z., Helms, J. A. Drill hole models to investigate bone repair. Methods in Molecular Biology. 2221, 193-204 (2021).
  21. Handool, K. O., et al. Optimization of a closed rat tibial fracture model. Journal of Experimental Orthopaedics. 5 (1), 13 (2018).
  22. Kobata, S. I., et al. Prevention of bone infection after open fracture using a chitosan with ciprofloxacin implant in animal model. Acta Cirurgica Brasileira. 35 (8), 202000803 (2020).
check_url/63712?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aryal, A., Pagaku, P. K., Dey, D., Tyagi, S., Shrivastava, V., Bhattacharya, A., Rani, S., Nayak, D., Khurana, A., Khanna, P., Goyal, A., Mridha, A. R., Garg, B., Sen, S. Protocol for Developing a Femur Osteotomy Model in Wistar Albino Rats. J. Vis. Exp. (186), e63712, doi:10.3791/63712 (2022).

View Video