Summary

ショウジョウバエの眼成虫ディスクに付属してグリア細胞の移行のイメージングを生きる

Published: July 09, 2009
doi:

Summary

ここでは、GFPタグ付きのグリア細胞とペアライブ顕微鏡分析を使用して開発をショウジョウバエの眼にグリア細胞の遊走を調べるためのプロトコルについて説明します。

Abstract

脊椎動物と無脊椎動物の生物の両方のグリア細胞はensheathするために、最終的な標的領域へ​​の移行と関連する神経細胞をサポートする必要があります。最近の進展は、開発途上蛹の翼(1)、の研究ではグリア細胞のライブマイグレーションを記述するためになされている一方で<em>ショウジョウバエ</em>グリア細胞の遊走は、通常、固定した組織の検査を含んでいた。運動性細胞のライブ顕微鏡分析は、速度と成長の方向の変化を決定するを含む渡り鳥プロセス、全体の細胞挙動を検査する能力を提供しています。遺伝学的ツールの使用と対に、ライブイメージングは​​、開発の過程で特定の遺伝子のためのより正確な役割を決定するために使用することができます。 Siliesで前の仕事<em>ら。</em>(2)固定組織における眼成虫原基に、眼茎、開発の目と脳を結ぶ構造に由来するグリア細胞の移行を説明しています。ここでは、中にグリア細胞のライブマイグレーションを検討するためのプロトコルの概要を説明<em>ショウジョウバエ</em>目の成虫原基。我々は、野生型および変異動物におけるグリア細胞の進行に従うことを開発するグリア細胞でGFPを発現し、ショウジョウバエのラインを活用する。

Protocol

パート1:プレ実験のセットアップ。 事前に一週間は、メイトはグリア特異的プロモーターの制御下にGFPを発現するその幼虫を生成するために飛ぶ。私たちの実験のために我々は、 逆極性(レポ)プロモーター(3,4)を用いてグリア細胞に発現し核局在配列でタグ付けされたGFPを可視化。 百分の一晩乾燥したポリ- L -リジン溶液と空気中で10分間18 mmの円形のカバースリ?…

Discussion

このプロトコルでは、ライブ顕微鏡を使用して目成虫原基にグリア細胞の遊走の観察を説明します。私たちの野生型の例(図1 AD)においては、我々は1時間かけ目のディスクにグリア細胞の動きを観察するために核GFPマーカーを使用。現在我々の研究室で研究されてグリア細胞の移行に必要な候補遺伝子の変異では、我々は、1時間の期間(図1 EH)の間に眼茎内のグリア細胞核の失速を…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

パトリックカフェルティは、カナダの多発性硬化症協会からのポスドクでサポートされています。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Poly-L-lysine Reagent Sigma P8920  
Schneider’s Insect Media Reagent Sigma S0146  
Penicillin-Streptomycin Reagent Sigma P4458  
Insulin solution from bovine pancreas Reagent Sigma I0516  
Chamlide Magnetic chamber Tool Live cell Instrument CM-R-10 35 mm dish type chamber for 18 mm coverslip
Ultra fine clipper scissors Tool Fine scientific tools 15200-00  
Dumont #5 forceps Tool Fine scientific tools 11251-20  
Fluorescent microscope Microscope Zeiss   Any fluorescent imaging system that has the necessary filters and excitation for GFP can be used.

References

  1. Aigouy, B., Lepelletier, L., Giangrande, A. Glial chain migration requires pioneer cells. J. Neurosci. 28, 11635-11641 (2008).
  2. Silies, M., Yuva, Y., Engelen, D., Aho, A., Stork, T., Klambt, C. Glial cell migration in the eye disc. J. Neurosci. 27, 13130-13139 (2007).
  3. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
  4. Sepp, K. J., Auld, V. J. Conversion of lacZ enhancer trap lines to GAL4 lines using targeted transposition in Drosophila melanogaster. 유전학. 151, 1093-1101 (1999).
  5. Gibson, M. C., Patel, A. B., Nagpal, R., Perrimon, N. The emergence of geometric order in proliferating metazoan epitheia. Nature. 442, 1038-1041 (2006).
  6. Lee, T., Luo, L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends Neurosci. 24, 251-254 (2001).
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Cite This Article
Cafferty, P., Xie, X., Browne, K., Auld, V. J. Live Imaging of Glial Cell Migration in the Drosophila Eye Imaginal Disc. J. Vis. Exp. (29), e1155, doi:10.3791/1155 (2009).

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