Summary

Isolatie van menselijke lymfatische endotheelcellen door Multi-parameter fluorescentie-geactiveerde Cell Sorting

Published: May 01, 2015
doi:

Summary

Het doel van dit protocol is om lymfatische endotheelcellen voering de menselijke lymfatische misvorming cyste-achtige schepen en voorhuiden met fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) te isoleren. Latere cel kweken en uitbreiding van deze cellen maakt een nieuw niveau van experimentele verfijning voor genetische, proteomics, functioneel en celdifferentiatie studies.

Abstract

Lymfestelsel aandoeningen zoals primaire lymfoedeem, lymfatische misvormingen en lymfatische tumoren zijn zeldzame omstandigheden die aanzienlijke morbiditeit veroorzaken, maar er is weinig bekend over hun biologie. Het isoleren van zeer zuiver menselijke lymfatische endotheelcellen (LEC's) van zieke en gezonde weefsel zou studies van het lymfatische endotheel bij genetische, moleculaire en cellulaire niveau te vergemakkelijken. Verwacht wordt dat deze onderzoeken targets kunnen openbaren nieuwe therapieën die de klinische behandeling van deze aandoeningen kunnen veranderen. Een protocol beschrijft de isolatie van menselijke voorhuid LEC's en lymfatische misvorming lymfatische endotheelcellen (LM LEC's) wordt gepresenteerd. Voor het verkrijgen van een enkele celsuspensie weefsel werd fijngehakt en enzymatisch behandeld met collagenase en dispase II II. De resulterende celsuspensie werd vervolgens gemerkt met antilichamen tegen cluster van differentiatie (CD) markers CD34, CD31, vasculaire endotheliale groeifactor-3 (VEGFR-3) en podoplanin. Stained levensvatbare cellen werden gesorteerd op een fluorescentie geactiveerde celsortering (FACS) om de CD34 Low CD31 pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos LM LEC populatie gescheiden van andere endotheliale en niet- endotheelcellen. De gesorteerde LM LEC's werden gekweekt en uitgebreid on-fibronectine gecoate flessen voor verdere experimenteel gebruik.

Introduction

Een belangrijke functie van het lymfatische vasculaire systeem te lymfe, een teveel interstitiële vloeistof bevattende lipiden, eiwitten en cellulaire bestanddelen te absorberen en dirigeren het bloed veneuze systeem. Een netwerk van lymfatische haarvaten leidt lymfe naar de lymfeknopen waar het wordt gescreend op de aanwezigheid van vreemde antigenen, een belangrijk proces in immune surveillance en invoering van witte bloedcellen om vreemde antigenen te neutraliseren.

De unidirectionele lymfatisch systeem start in weefsels, waarbij de initiële lymfatische capillair, een unieke structuur en discontinu enkele laag dunwandige vlakke endotheelcellen met gespecialiseerde cel contacten die lymfe ingang 1,2 toe. Deze haarvaten worden via verankering filamenten om vat ineenstorting in aanwezigheid van verhoogde interstitiële druk 3 voorkomen dat de omliggende bindweefsel matrix bevestigd. De initiële lymfatische haarvaten leeg in het verzamelen van lymfatische haarvatendie samenvloeien tot grotere lymfevaten of aderen. In vergelijking met lymfatische haarvaten initieel, verzamelen lymfevaten dikkere vaatwanden, gepaarde lymfe kleppen en omhuld door een discontinue basale membraan waarin een paar gladde spiercellen ingebed 4. Gecoördineerde openen en sluiten van lymfatische kleppen en contractie van gladde spiercellen vergemakkelijkt de doorstroming van lymfe 3. Bij de mens, de lymfatische aderen uit verschillende regio's van het lichaam mee te doen met lymfatische stammen die fuseren tot twee lymfevaten te vormen: de thoracale buis en de rechter lymfatische kanaal. De ductus thoracicus draineert lymfe van de linkerkant van het lichaam en vanaf de rechterzijde onder de borst, terwijl de juiste lymfevat afvoeren lymfe van de rechterarm en rechterkant van het hoofd, nek en borst. Beide leidingen voeren lymfe in de subclavia in de nek 5.

Aandoeningen van het lymfestelsel zijn over het algemeen gegroepeerd in een verworvennd aangeboren (tabel 1). Voorbeelden van verworven omstandigheden lymfangitis en secundaire lymfoedeem. Lymphangitis is een ontsteking van een lymfevat gevolg van bacteriële infectie. De getroffen lymfevaten verwijden en vul met exsudaat bevatten polymorfonucleaire cellen. In skin deze lymfevaten zichtbaar rood, pijnlijke onderhuidse stroken vaak gepaard met de uitbreiding van de bijbehorende drainerende lymfeklier (lymfadenitis) 6. Secundair lymfoedeem ontstaat als gevolg van beschadiging of obstructie van het lymfevat of lymfklier obstructie. Dit leidt tot chronische progressieve zwelling door de ophoping van lymfe distaal van de beschadiging of obstructie. In ontwikkelde landen is secundaire lymfoedeem meestal geassocieerd met kanker, waar metastaserende tumoren belemmeren lymfvaten of regionale lymfeknopen, of ten gevolge van anti-kanker therapie na chirurgische verwijdering van lymfeklieren, nabestralingsonderzoek fibrose en post-inflammatoire Thromtrombose en littekens 7. In andere delen van de wereld, mogelijk secundair lymfoedeem secundaire lymfatische obstructie door parasitaire wormen zoals Wuchereria bancrofti 6.

Aandoeningen van Lymfatische Vascular System
Verworven Aangeboren
Lymphadenitis
Secundair lymfoedeem
Primair lymfoedeem 10 Sporadische Lymfatische misvormingen 13 Lymfatische misvormingen gerelateerd syndromen 13
bv
Milroy Syndrome
Meige syndroom
Eenvoudig:
Lymfatische misvormingen
bv
Klippel-Tranaunay Syndroom
Parks Weber Syndrome
Sturge-Weber-syndroom
Gecombineerd:
Capillaire-lymfatische misvormingen
Capillaire-lymfatische-veneuze misvormingen
Capillaire-lymfatische-arterioveneuze misvorming
Capillair-lymfatische veneuze-arterioveneuze misvorming

Tabel 1. Overzicht van de aandoeningen van lymfatische vasculaire systeem.

Aangeboren aandoeningen van het lymfesysteem omvatten primaire (idiopathische) lymfoedeem gedacht te worden veroorzaakt door genetische mutaties lymphangiectasia en afwijkingen van het lymfestelsel 8,9. Primair lymfoedeem kan sporadisch worden vermoedelijk veroorzaakt door de novo mutaties, of geërfd. Lymfatische aandoeningen kunnen ook worden geïsoleerd of bestaan ​​uit een deel van een meer algemene syndroom 10. In de pediatrische populatie, 97% van de lymfeoedeem is sporadisch met afwijkingen in lymfatische structuur vat dat regionale lymfedrainage 11 schaden. Ziekte Milroy is een voorbeeld van primair lymfoedeem veroorzaakt door mutatie in het VEGFR-3-gen zichtbaar bij geboorte of kort daarna 12. Hoewel vooral familiale toestand, kan de ziekte Milroy ook worden geïdentificeerd bij zuigelingen zonder familiegeschiedenis van Milroy de ziekte 32. De ernst van lymfoedeem is afhankelijk van de hoeveelheid lymfe produktie en het vermogen om lymfe terug transporteren naar veneuze circulatie 6.

Op basis van de klinische presentatie en in situ endotheelcelproliferatie, zijn afwijkingen van het lymfestelsel geclassificeerd als lymfatische tumoren of lymfatische misvormingen 13. Kaposiform lymphangiomatosis is een voorbeeld van een LEC tumor 14. Lymfatische malformaties worden verondersteld te ontstaan ​​tijdens de embryonale ontwikkeling en groeien in verhouding tot het kind 15,16. Ze regressie zelden maar kan Remain asymptomatisch tot trauma of infectie precipiteert snelle groei leidt tot klinische complicaties. De geordende structuur van lymfenetwerk en geleiding van lymfe uit het weefsel veneuze circulatie hierboven beschreven verstoord in lymfatische malformaties die bestaan ​​uit plaatselijke verzamelingen van abnormale cysteuze structuren gevuld met lymfevocht. Hoewel er geen klinisch of experimenteel bewijs dat deze cystic vaten zijn verbonden met de lymfatische circulatie of dat zij functionele lymfatische kleppen bevat, hun lymfatische identiteit bevestigd door expressie van reeks lymfatische celmarkers zoals podoplanin, CD31, lymfevat Endothelial Receptor 1 (LYVE-1), Prospero homeobox eiwit 1 (PROX-1) en VEGFR-3 15,17,18. Deze cysteuze structuren zijn zowel kleine (microcystische) of grote (macrocystic), maar de meeste lymfatische malformaties bevatten zowel microcystische en macrocystic componenten (Figuur 1) 16. Na de operatie, spuitgietenn sclerotherapie en / of radiofrequente ablatie de lymfatische misvormingen vaak terugkomen.

Figuur 1
Figuur 1. Morfologie van menselijke lymfevaten en lymfatische misvormingen. Normale humane lymfatische (A) en misvorming lymfatische vaten (B en C) gemerkt met antilichaam tegen podoplanin (bruine label, pijl). Human lymfatische misvorming schepen worden gekenmerkt door duidelijke dilatatie en aanzienlijke variatie in lumen grootte. Deze gelokaliseerde abnormale cystische structuren kunnen zowel kleine (microcystische, *) (B) of grote (macrocystic, #) (C) zijn. De meeste lymfatische misvormingen bevatten zowel microcystische en macrocystic componenten. Klik hier om een grotere versie van de afbeelding weer te geven. </ P>

Sommige onderzoekers hebben gesuggereerd dat lymfatische misvormingen zijn een ontwikkelingsstoornis van lymfatische vasculatuur waarbij de LEC geen abnormale groeipotentieel maar hebben geen verbinding met de normale bloedsomloop 19. Wij hebben echter gevonden dat de LM LEC sneller prolifereren en zijn beter bestand tegen apoptosis dan voorhuid LEC 15 suggereert dat er een primair defect in de LM LEC's. Bij LM LEC worden geïmplanteerd in een muis xenograft model, vormen ze structuren denken aan lymfatische misvormingen 15. Dit ondersteunt de hypothese dat lymfatische misvormingen kunnen worden veroorzaakt door een of meer somatische mutaties ontstaan ​​in LM LEC tijdens de foetale ontwikkeling. Inderdaad hebben recente rapporten zo'n mutatie in het p110α katalytische subeenheid van fosfoinositide 3-kinase (PIK3CA) genen 20 geïdentificeerd.

Gezien de vorderingen in DNA sequencing technologie, relevante mutaties cOuld gemakkelijker worden geïdentificeerd in geïsoleerde LM LEC's, het begeleiden van toekomstige studies van deze voorwaarden. De isolatie van levensvatbare LEC zou vergelijkingen tussen abnormale en normale LECs in assays zoals migratie, proliferatie, buis die vermogen en overleving in respons op verminderde beschikbaarheid van voedingsstoffen of pro-apoptotische middelen 15 te vergemakkelijken. Geïsoleerde LEC zou ons in staat te stellen cel-specifieke genexpressie en proteomics studies uitgevoerd om nieuwe LEC subpopulaties bakenen en ontdekken van nieuwe farmacologische middelen die geschikt zijn voor klinische behandeling van lymfatische misvormingen.

We hebben eerder publiceerde een LEC isolatie methode gebaseerd op magnetische kraal scheiding van LEC's van neonatale voorhuid en lymfatische misvormingen 15. We meldden een strategie voor het scheiden normale en zieke LEC's van vasculaire endotheliale cellen op basis van de afwezigheid van CD34 expressie, gevolgd door het onderwerpen CD34 Neg celfractie positieve selectie van CD31.Echter, deze werkwijze belemmerd door de aanwezigheid van achtergebleven niet-endotheelcellen. Dit was onafhankelijk van de epidermis te verwijderen vóór verder bindweefsel digestie. Deze verontreinigingen algemeen prolifereerden sneller en dus uiteindelijk overgrew de endotheliale celculturen ondanks latere pogingen om LEC isolatie herhalen. Inderdaad, een eerste besmetting van niet-endotheelcellen zo laag als 2% tot 5% voldoende om de LEC populatie 15 toelaat. Dit bracht ons naar fluorescent geactiveerde celsortering methode te verkennen als een optie om LEC cel opbrengst en zuiverheid te verbeteren. Daarnaast gebruikten we multi-parameter sorteren om de specificiteit van de LEC populaties verbeteren, toevoeging van VEGFR-3 en podoplanin de selectie markers CD34 Low CD31 pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos LECs identificeren.

De rationale voor de selectie van deze merkers werd gebaseerd op de rapporten die tijdens LEC en bloed vasculaire endotheliale cells hebben veel celoppervlaktemerkers gemeen, zoals CD31, LEC's tonen fenotypische variatie in hun expressie van CD34, podoplanin en VEGFR-3 celoppervlak marker in vergelijking met bloed vasculaire endotheliale cellen 21-23. CD31 is een 130 kDa transmembraan glycoproteïne ook bekend als bloedplaatjes endothelial cell adhesion molecule 1 (PECAM-1). Het wordt beschouwd als een pan-endotheelcel merker omdat het tot expressie wordt gebracht op alle soorten bloed- en lymfevaten 21,24,25. CD34 is 110 kDa transmembraan glycoproteïne aanwezig op de meeste hematopoietische moedercellen en stamcellen, vasculaire endotheelcellen en enkele lymfevaten 26.

VEGFR-3, de receptor voor vasculaire endotheliale groeifactoren C en D, aanvankelijk aanwezig op de ontwikkelende aders in het muizenembryo, maar na lymfatische specificatie gereguleerd door de transcriptiefactoren SRY-gerelateerde HMG-box (SOX) -18, c hicken o valbumin u pstream p romoter t ranscription f actor 2 (COUPTF-II) en PROX-1, is VEGFR-3 veneuze expressie verloren en het wordt beperkt tot embryonale LECs 25,27. Podoplanin, een 38 kDa membraan mucoprotein, wordt eerst opgemerkt op de lymfevaten op ongeveer embryonale dag 11 (~ E11.0) van de muis embryonale ontwikkeling 28 en terwijl het sterk wordt uitgedrukt door microvasculaire lymfevaten, podoplanin expressie door macrocystic lymfatische endotheel in lymfatische misvormingen meer variabel 15. Flowcytometrie experimenten suggereren dat ten minste enkele CD34 Hoge CD31 Pos endotheelcellen drukken de lymfatische marker podoplanin 29. Hoewel systematische evaluatie van LYVE-1 en podoplanin kleuring in humane lymfatische malformaties gebleken dat beide effectief zijn bij het ​​kleuren lymfatisch endothelium misvorming 30, in normale weefsels, LYVE-1 werd gemeld sterk aanwezig in de initiële lymfatische zijncapillaire endotheel maar verminderd en zelfs afwezig bij het ​​verzamelen van lymfatische endotheel 31. Omdat ons doel is om te isoleren zowel de initiële en het verzamelen van lymfatische endotheelcellen we hebben ervoor gekozen niet te LYVE-1 gebruiken als onderdeel van onze mobiele strategie selectie. Tenslotte werd de beslissing om deze markers ook gebruikmaken basis van de beschikbaarheid van antilichamen die diagnostisch zijn voor lymfevaten labelen voor microscopische beeldvorming, een eigenschap die verband tussen flowcytometrie en immunofluorescentie studies zou toestaan.

Dit artikel zal het weefsel spijsvertering methode, cel kleuring en FACS instellingen die nodig zijn voor een succesvolle isolatie van CD34 Lage CD31 Pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos LEC's evenals CD34 High CD31 Pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos endotheelcellen van voorhuid en lymfatische misvorming beschrijven weefsel.

Protocol

Ethiek verklaring: ethische goedkeuring voor het verzamelen van lymfatische misvorming en voorhuid weefsel werd verkregen uit de Human Research ethische commissies in het Royal Children's Hospital, Melbourne, Australië. Ondertekend toestemming werd ontvangen van ouders van patiënten voorafgaand aan de operatie. Weefselmonsters werden verzameld van patiënten met LM ondergaan chirurgische procedures als onderdeel van hun klinische behandeling en patiënten die een electieve besnijdenis. Alle experimenten werden uit…

Representative Results

Na de eerste digestie weefsel na 24 uur in kweek van niet-gefractioneerde monsters onderscheiden endotheelcel kolonies worden waargenomen (Figuur 2A) met fibroblast-achtige cellen en gladde spiercellen. Na het sorteren en na 24 uur in celkweek, de CD34 Lage CD31 Pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos cellen hechten en laten typische geplaveide morfologie (figuur 2B en C). De FACS hierboven beschreven, zijn we in staat om cellen te zui…

Discussion

LEC's spelen een belangrijke rol bij het handhaven van homeostase fluïdum, immuunrespons tegen vreemde antigenen en opname en het transport van bepaalde nutriënten. LEC homeostase kan worden beïnvloed door ziekteprocessen zoals bacteriële infecties en tumormetastase, maar LEC ook somatische mutaties die resulteren in de vorming van disfunctionele lymfevaten en significante morbiditeit voor de getroffen patiënten. Om meer inzicht in de lymfatische misvorming etiologie te krijgen door middel van in vivo

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen graag de Baker Foundation en de Stichting 'Women in Science Fellowship' van de Royal Children's ondersteuning van Zerina Lokmić erkennen. Andrew G. Elefanty en Edouard G. Stanley zijn NHMRC Senior Research Fellows. Werk in hun laboratoria werd ondersteund door NHMRC en Stem Cells Australië.

Materials

Name of Material/Equipment Company Catalogue Number Description
DMEM Life Technologies (Gibco) 11965-092 Used to collect tissue samples from the operating theatre.
EGM-2 MV Bullet Kit Lonza CC-3202 EGM-2 MV Bullet Kit contains 500 ml of EBM-2 media and human EGF, hydrocortisone, gentamycin (GA-1000), fetal bovine serum (FBS), VEGF, human FGF-b, R3-IGF-1 and ascorbic acid.
VEGF-C R&D Systems 2179-VC-025 Complete endothelial cell media is supplemented with 50 ng/mL VEGF-C
Antibiotic-antimycotic solution (100x) Life Technologies (Gibco) 15240-062 This solution contains 10,000U/ml of penicillin, 10,000 mg/ml of streptomycin and 25 mg/ml of Fungizone antimycotic. Use at 1:100 dilution.
Fibronectin from human plasma Sigma-Aldrich F2006 Used at 10 mg/ml concentrations. It can be re-used for up to 1 month if kept at 4 degrees and maintained sterile. Use 7 mL to coat 150 cm2 flask.
StemPro Accutase Cell dissociation reagent Life Technologies (Gibco) A11105-01 StemPro®Accutase® is used at 0.05 ml per cm2 to cover the entire surface area of the flask. Using lesser volumes may result in incomplete cell detachment.
0.4% Trypan Blue dye Life Technologies (Gibco) 15250-061 Used as a viability stain.
Dispase II Roche Applied Biosciences 4942078001 Used at 0.04%
Collagenase II Worthington Lab 4176 Used at 0.25%
DNase I Roche Applied Biosciences 11284932001 Used at 0.01%
70 mm nylon cell strainers BD Falcon 352350
PE-conjugated VEGFR-3 clone 9D9F9, clone WM59 BioLegend 356204 Used at 1:50 dilution
PE-Cy7-conjugated CD34, clone 581 BioLegend 343516 Used at 1:200 dilution
APC-conjugated mouse anti human CD31, clone WM59 BioLegend 303116, Used at 1:100 dilution
Alexa 488-conjugated rat anti human PODOPLANIN, clone NC-80. BioLegend 337006 Used at 1:200 dilution
PE-conjugated mouse IgG1, k isotype, clone MOPC-21 BioLegend 400112 Used at 1:50 dilution
PE-Cy7-conjugated mouse IgG1, k isotype, clone MOPC-21 BioLegend 400126 Used at 1:200 dilution
APC-conjugated mouse IgG1, k isotype, clone MOPC-21 BioLegend 400120 Used at 1:100 dilution
Alexa 488-conjugated mouse IgG2a, k isotype, clone RATK2758 BioLegend 400525 Used at 1:200 dilution

References

  1. Baluk, P., et al. Functionally specialized junctions between endothelial cells of lymphatic vessels. J Exp Med. 204 (10), 2349-2362 (2007).
  2. Yao, L. C., Baluk, P., Srinivasan, R. S., Oliver, G., McDonald, D. M. Plasticity of button-like junctions in the endothelium of airway lymphatics in development and inflammation. Am J Pathol. 180 (6), 2561-2575 (2012).
  3. Zawieja, D. C. Contractile physiology of lymphatics. Lymphat Res Biol. 7 (2), 87-96 (2009).
  4. Witte, M. H., et al. Structure function relationships in the lymphatic system and implications for cancer biology. Cancer Metastasis Rev. 25 (2), 159-184 (2006).
  5. Andrade, M., Jacomo, A. Anatomy of the human lymphatic system. Cancer Treat Res. 135, 55-77 (2007).
  6. Kumar, V., Abbas, A. K., Aster, J. C., Ch Fausto, N. . Cotran Pathologic Basis of Disease. 43-78. 2, (2009).
  7. Shayan, R., Achen, M. G., Stacker, S. A. Lymphatic vessels in cancer metastasis: bridging the gaps. Carcinogenesis. 27 (9), 1729-1738 (2006).
  8. . . Mulliken & Young’s Vascular Anomalies Hemangiomas and. , 1059-1076 (2013).
  9. . . Mulliken & Young’s Vascular Anomalies Hemangiomas. 14, 562-594 (2013).
  10. Bellini, C., Hennekam, R. C. Clinical disorders of primary malfunctioning of the lymphatic system. Adv Anat Embryol Cell Biol. 214, 187-204 (2014).
  11. Schook, C. C., et al. Primary lymphedema: clinical features and management in 138 pediatric patients. Plast Reconstr Surg. 127 (6), 2419-2431 (2011).
  12. Brouillard, P., Boon, L., Vikkula, M. Genetics of lymphatic anomalies. J Clin Invest. 124 (3), 898-904 (2014).
  13. . for the Study of Vascular Anomalies (ISSVA) classification. Available from: http://www.issva.org/classification.com. , (2014).
  14. Croteau, S. E., et al. Kaposiform lymphangiomatosis: a distinct aggressive lymphatic anomaly. J Pediatr. 164 (2), 383-388 (2014).
  15. Lokmic, Z., et al. Isolation of human lymphatic malformation endothelial cells, their in vitro characterization and in vivo survival in a mouse xenograft model. Angiogenesis. 17 (1), 1-15 (2014).
  16. Smith, R. J. Lymphatic malformations. Lymphat Res Biol. 2 (1), 25-31 (2004).
  17. Chen, E. Y., et al. Similar histologic features and immunohistochemical staining in microcystic and macrocystic lymphatic malformations. Lymphat Res Biol. 7 (2), 75-80 (2009).
  18. Norgall, S., et al. Elevated expression of VEGFR-3 in lymphatic endothelial cells from lymphangiomas. BMC cancer. 7 (2), 75-80 (2007).
  19. Garzon, M. C., Huang, J. T., Enjolras, O., Frieden, I. J. Vascular malformations. Part I. J Am Acad Dermatol. 56 (3), 353-370 (2007).
  20. Osborn, A., Dickie, P., Adams, D., Dickie, B. . 20th International workshop on Vascular Anomalies. ISSVA. , (2014).
  21. Baluk, P., McDonald, D. M. Markers for microscopic imaging of lymphangiogenesis and angiogenesis. Ann N Y Acad Sci. 1131, 1-12 (2008).
  22. Lokmic, Z., Mitchell, G. M. Engineering the microcirculation. Tissue engineering. Part B, Reviews. 14 (1), 87-103 (2008).
  23. Lokmic, Z., Mitchell, G. M. Visualisation and stereological assessment of blood and lymphatic vessels. Histol Histopathol. 26 (6), 781-796 (2011).
  24. Hagerling, R., et al. A novel multistep mechanism for initial lymphangiogenesis in mouse embryos based on ultramicroscopy. EMBO J. 32 (5), 629-644 (2013).
  25. Pollmann, C., Hagerling, R., Kiefer, F. Visualization of lymphatic vessel development, growth, and function. Adv Anat Embryol Cell Biol. 214, 167-186 (2014).
  26. Breiteneder-Geleff, S., et al. Angiosarcomas express mixed endothelial phenotypes of blood and lymphatic capillaries: podoplanin as a specific marker for lymphatic endothelium. Am J Pathol. 154 (2), 385-394 (1999).
  27. Kaipainen, A., et al. Expression of the fms-like tyrosine kinase 4 gene becomes restricted to lymphatic endothelium during development. Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (8), 3566-3570 (1995).
  28. Schacht, V., et al. T1alpha/podoplanin deficiency disrupts normal lymphatic vasculature formation and causes lymphedema. EMBO J. 22 (14), 3546-3556 (2003).
  29. Kriehuber, E., et al. Isolation and characterization of dermal lymphatic and blood endothelial cells reveal stable and functionally specialized cell lineages. J Exp Med. 194 (6), 797-808 (2001).
  30. Florez-Vargas, A., et al. Comparative analysis of D2-40 and LYVE-1 immunostaiing in lymphatic malformations. Lymphology. 41 (3), 103-110 (2008).
  31. Makinen, T., et al. PDZ interaction site in ephrinB2 is required for the remodeling of lymphatic vasculature. Genes Dev. 19 (3), 397-410 (2005).
  32. Connell, F. C., et al. Analysis of coding regions of VEGFR3 and VEGFRC in Milroy disese and other primary lymphoedemas. Hum Genet. 124 (6), 625-631 (2009).
check_url/kr/52691?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lokmic, Z., Ng, E. S., Burton, M., Stanley, E. G., Penington, A. J., Elefanty, A. G. Isolation of Human Lymphatic Endothelial Cells by Multi-parameter Fluorescence-activated Cell Sorting. J. Vis. Exp. (99), e52691, doi:10.3791/52691 (2015).

View Video