Summary

Korrelat Ljus- och elektronmikroskopi Använda Quantum Dot Nanopartiklar

Published: August 07, 2016
doi:

Summary

A method is described whereby quantum dot (QD) nanoparticles can be used for correlative immunocytochemical studies of epoxy embedded human pathology tissue. We employ commercial antibody fragment conjugated QDs that are visualized by widefield fluorescence light microscopy and transmission electron microscopy.

Abstract

Ett förfarande beskrivs varvid kvant prick (QD) nanopartiklar kan användas för korrelativa immuncytokemiska studier av human patologi vävnad med användning av widefield fluorescens Ijusmikroskopi och transmissionselektronmikroskopi (TEM). För att demonstrera det protokoll vi har immunolabeled ultratunna epoxi snitt av human somatostatinoma tumör med användning av en primär antikropp till somatostatin, följt av en biotinylerad sekundär antikropp och visualisering med streptavidin konjugerat 585 nm kadmium-selen (CdSe) kvantprickar (QDs). Sektionerna är monterade på en TEM prov rutnät placerades därefter på ett objektglas för observation genom widefield fluorescens Ijusmikroskopi. Ljusmikroskopi avslöjar 585 nm QD märkning som ljust orange fluorescens bildar en granulär mönster inom tumörcellens cytoplasma. Vid låga till förstoring mellannivå genom ljusmikroskop märkningsmönstret kan lätt att känna igen och graden av icke-specifik eller bakgrunds märkning bedömas. Detta är ett kritisktsteg för efterföljande tolkning av immunomärkning mönstret genom TEM och utvärdering av den morfologiska sammanhang. Samma avsnitt sedan blottas torr och ses av TEM. QD prober ses att fästas till amorft material ingår i separata sekretoriska granuler. Bilderna förvärvas från samma region av intresse (ROI) ses av ljusmikroskop för korrelat analys. Motsvarande bilder från varje modalitet kan sedan blandas för att överlagra fluorescensdata på TEM ultra av den berörda regionen.

Introduction

Korrelat ljus- och elektronmikroskopi (CLEM) är en kraftfull metod för analys av transienta dynamiska händelser 1, sällsynta händelser 2, 3 och komplexa system 4. Det finns många olika tekniska varianter finns fem beroende på den fråga som ställdes dock ett vanligt krav är att samma struktur i ett enda prov 6 avbildas av flera mikroskopi metoder. Vår särskilt förhållningssätt till CLEM utvecklades för att studera arkiv mänsklig patologi vävnad och fallet används här har väl karakteriserats och tidigare publicerats 7. Syftet var dels att maximera de analytiska data från en enda biopsi eller kirurgiskt prov och för det andra att använda fluorescens ljusmikroskop för att klargöra samband med immuncytokemiska märkningsmönstret sett på ultra nivå.

Quantum prick nanokristaller (QDs) erbjuder möjligheten att en universell markörsystem able för att ses av båda, fluorescens Ijusmikroskopi och elektronmikroskopi 8, 9, 10. Deras kristallina kärnstruktur tillåter QDs av olika storlek för att generera ett brett spektrum av fluorescensemissionstoppar när den exciteras av ljus vid våglängder långt från deras emissionsspektra 11. Deras atomvikt är tillräcklig för att ge elektrontäthet som är detekterbar med hjälp av transmissionselektronmikroskopi, skanning transmissionselektronmikroskopi (STEM) eller för fältemission svepelektronmikroskopi. De är särskilt lämpade för immuncytokemiska studier även enstaka QDs kan observeras ge en ultimat känslighet en QD per målmolekyl 12. Dessutom, beroende på QD använde de kan ha en individuell elementär signatur lämplig för kartläggning.

Mänskliga patologi prover erbjuder betydande fördelar för translationell biomedicinsk forskning. Kirurgisk vävnads och biopsiprov rutinmässigt lämnas för biobank och med appropriate etik spelrum kan nås för forskarstudier. Mänsklig vävnad har inte frågor av betydelse eller tolkning som kan uppstå i djur eller in vitro-modeller av sjukdomen. Det är dock extraktion av patologiprover ofta inte optimalt. Det kan vara fördröjning i vävnad placeras i fixativ används olämpligt fixativ såsom formalin snarare än glutaraldehyd för TEM och olämpligt provtagning. Clem metoder har potential att optimera diagnostisk och prognostisk information från en enda mänsklig prov. Men vissa nyutvecklade korrelativa metoder såsom de som använder mini Singlet Oxygen Generator (miniSOG) är inte tillgänglig för användning i patologi på grund av behovet av taggen för att vara genetiskt kodas in i cellen av intresse 13. Av denna anledning har vi undersökt nyttan av QD märkning av rutinmässigt beredd TEM vävnad för korrelat immuncytokemiska studier. QDs tillämpas på etsad epoxi eller akryl sektioner harts från lightly aldehyd fasta biopsi och vävnadsprover erbjuder möjligheten att erhålla korrelat fluorescens ljusmikroskopi och TEM-data från ett enda prov.

Protocol

1. Vävnads Dissektion och Fixering vävnads Dissection Dissekera vävnadsbitar från en kirurgiskt opererande tumör prov eller vävnadsbiopsi. Obs: vävnad som används i denna studie var rutinmässigt fixerades i formalin, men färsk vävnad är också lämplig. Vi valt ett område bekräftas och rapporterats av en anatomisk patolog för att innehålla somatostatinoma tumör efter rutinmässig histologisk färgning och anti-somatostatin immunofärgning (ej visad). …

Representative Results

De somatostatinoma tumörprov som används för denna studie omfattade tumörceller bildar duktala strukturer blandat med kollagen stomivävnaden. Genom fluorescens ljusmikroskopi, individuella tumörceller som innehöll rikligt sekretoriska granuler visade positiv märkning för somatostatin hormon. Kärnor verkade som mörka hål med minimal icke-specifik märkning detekteras (figur 1). Vid låga förstoringar, var variabelt intensiv granulär orange fluorescens ses i …

Discussion

Denna studie har visat den potentiella nyttan av QDs som universella prober för Clem studier. De 585 nm QD nanopartiklar som används visade ljusa och stabil fluorescens när ses av Vidvinkel ljusmikroskop och var lätt observeras av TEM. En tidigare studie av en av de föreliggande författare har visat QDs också vara lämpliga för superupplösning Ijusmikroskopi 7. Deras foto var särskilt användbart för längre visningstider och långa avbildningsexponeringar. QDs kan också användas för multiplex i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors wish to acknowledge the support of Xiao Juan Wu (Immunohistochemistry Laboratory) and the Department of Anatomical Pathology, Sydney South West Pathology Service (SSWPS), NSW Health Pathology, Liverpool, New South Wales, Australia.

Materials

Sodium cacodylate Proscitech C0205 Harmful chemical
Osmium tetroxide Proscitech C010 Use only in fume hood
Uranyl acetate Univar-Ajax 569 Hazardous chemical
Ethanol 100% Fronine JJ008
Acetone 100% Fronine JJ006
ERL 4221 Proscitech C056
DER 732 Proscitech C047
NSA Proscitech C059
DMAE Proscitech C050
Sodium metaperiodate Analar BDH 10259
anti-somatostatin antibody Dako A0566
Antibody diluent Dako S3022
Qdot 585 Streptavidin Conjugate  Invitrogen Q10113MP
Biotinylated goat anti-rabbit IgG antibody Sigma B7389-1ML
Glutaraldehyde 50% EMS 16320
Normal goat serum Invitrogen PCN5000
PBS "Dulbecco A" Oxoid  BR0014G
BSAc (10%) Aurion 900.022
Parafilm Pechiney PP M
pH indicator strips (pH 2.0 – 9.0) Merck 1.09584.0001
Micromoulds Proscitech RL063
Diamond knife Diatome Ultra 45
Transmission electron microscope FEI Morgagni 268D
Fluorescence light microscope Carl Zeiss Axioscope A1
Grids 300 mesh nickel (thin bar) Agar Scientific G2740N
Ultramicrotome RMC Powertome
TEM camera control software Soft Imaging System AnalySIS Version 3.0
Image processing software Adobe Systems Incorporated Photoshop CS2

References

  1. Kukulski, W., Schorb, M., Welsch, S., Picco, A., Kaksonen, M., Briggs, J. A. Correlated fluorescence and 3D electron microscopy with high sensitivity and spatial precision. J Cell Biol. 192 (1), 111-119 (2011).
  2. Müller-Reichert, T., Verkade, P. Introduction to correlative light and electron microscopy. Methods Cell Biol. , (2012).
  3. De Boer, P., Hoogenboom, J. P., Giepmans, B. N. Correlated light and electron microscopy: ultrastructure lights up!. Nat Methods. 12 (6), 503-513 (2015).
  4. Faas, F. G., et al. Localization of fluorescently labeled structures in frozen-hydrated samples using integrated light electron microscopy. J Struct Biol. 181 (3), 283-290 (2013).
  5. Redemann, S., Müller-Reichert, T. Correlative light and electron microscopy for the analysis of cell division. J Microsc. 251 (2), 109-112 (2013).
  6. Spiegelhalter, C., et al. From dynamic live cell imaging to 3D ultrastructure: novel integrated methods for high pressure freezing and correlative light-electron microscopy. PLoS One. 5 (2), e9014 (2010).
  7. Killingsworth, M. C., Lai, K., Wu, X., Yong, J. L., Lee, C. S. Quantum dot immunocytochemical localization of somatostatin in somatostatinoma by widefield epifluorescence, super-resolution light, and immunoelectron microscopy. J Histochem Cytochem. 60 (11), 832-843 (2012).
  8. Nisman, R., Dellaire, G., Ren, Y., Li, R., Bazett-Jones, D. P. Application of quantum dots as probes for correlative fluorescence, conventional, and energy-filtered transmission electron microscopy. J Histochem Cytochem. 52 (1), 13-18 (2004).
  9. Giepmans, B. N., Deerinck, T. J., Smarr, B. L., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Correlated light and electron microscopic imaging of multiple endogenous proteins using quantum dots. Nat Methods. 2 (10), 743-749 (2005).
  10. Kuipers, J., de Boer, P., Giepmans, B. N. Scanning EM of non-heavy metal stained biosamples: Large-field of view, high contrast and highly efficient immunolabeling. Exp Cell Res. 337 (2), 202-207 (2015).
  11. Barroso, M. M. Quantum dots in cell biology. J Histochem Cytochem. 59 (3), 237-251 (2011).
  12. Michalet, X., et al. Quantum dots for live cells, in vivo imaging, and diagnostics. Science. 5, 538-544 (2005).
  13. Shu, X., et al. A genetically encoded tag for correlated light and electron microscopy of intact cells, tissues and organisms. PLoS Biol. 9 (4), e1001041 (2011).
  14. Thomas, J. M., Midgley, P. A. High-resolution transmission electron microscopy: the ultimate nanoanalytical technique. Chem Commun. , 1253-1267 (2004).
  15. Loussert Fonta, C., Humbel, B. M. Correlative microscopy. Arch Biochem Biophys. 581, 98-110 (2015).
  16. Marc, R. E., Liu, W. Fundamental GABAergic amacrine cell circuitries in the retina: nested feedback, concatenated inhibition, and axosomatic synapses. J Comp Neurol. 425 (4), 560-582 (2000).
  17. Studer, D., Humbel, B. M., Chiquet, M. Electron microscopy of high pressure frozen samples: bridging the gap between cellular ultrastructure and atomic resolution. Histochem Cell Biol. 130 (5), 877-889 (2008).
  18. Tokuyasu, K. T. Immunochemistry on ultrathin frozen sections. Histochem J. 12 (4), 381-403 (1980).
  19. Loussert Fonta, C., et al. Analysis of acute brain slices by electron microscopy: a correlative light-electron microscopy workflow based on Tokuyasu cryo-sectioning. J Struct Biol. 189 (1), 53-61 (2015).
check_url/kr/54307?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Killingsworth, M. C., Bobryshev, Y. V. Correlative Light- and Electron Microscopy Using Quantum Dot Nanoparticles. J. Vis. Exp. (114), e54307, doi:10.3791/54307 (2016).

View Video