Summary

细胞侵袭和迁移过程的评价: 视频 Microscope-based 刮伤法与博伊登室法的比较

Published: November 17, 2017
doi:

Summary

本研究报告了两种不同的细胞浸润和迁移分析方法: 博伊登室法和体外视频 microscope-based 伤口愈合试验。对这两种实验的协议进行了描述, 并对它们的优缺点进行了比较。

Abstract

肿瘤细胞的侵袭和迁移能力是癌症进展和复发的主要因素。许多研究探索了迁移和入侵的能力, 以了解癌症细胞传播, 目的是制定新的治疗策略。分析这些能力的细胞和分子基础, 导致细胞的移动性和理化性质的骨架和细胞微环境的表征。多年来, 博伊登室法和刮伤法是研究细胞侵袭和迁移的标准技术。然而, 这两种技术有局限性。博伊登室法检测困难, 费时, 刮伤法重现性低。现代技术的发展, 特别是在显微镜下, 增加了刮伤试验的重现性。利用强大的分析系统, “孵化器” 的视频显微镜可以提供自动和 real-time 的细胞迁移和入侵分析。本论文的目的是报告和比较两种方法用于研究细胞侵袭和迁移: 博伊登室法和优化的体外视频 microscope-based 刮伤法。

Introduction

细胞侵袭和迁移参与癌细胞的传播, 这是抵抗治疗的主要原因1 , 并可导致癌症治疗后的局部或转移复发2。上皮-间充质过渡 (急诊) 是细胞浸润-移行的初始过程, 癌细胞从上皮细胞转变为间质表型。e-钙黏蛋白是上皮表型的胞外标记物3, 增加的 n-钙黏蛋白和波形的表达是骨髓间质表型的特征4。迁移还取决于癌细胞的内在能力, 通过矩阵蛋白酶5的作用侵入细胞外基质 (ECM)。

这种 invasion–migration 机制已经被描述为癌症在许多地方, 特别是头颈部癌症6。许多研究人员把重点放在迁移和入侵过程上, 以便更好地理解癌细胞的传播, 希望这些知识能导致新的治疗策略。这是至关重要的, 这些研究是使用可靠和重现性的化验。

体外对细胞运动的分析可能具有挑战性。多年前, 博伊登室检测被认为是 invasion–migration 分析的标准7。然而, 它是费时, 往往是不准确的。第二个测试是伤口愈合试验8, 它涉及在细胞单层培养上进行划痕, 并在固定时间间隔捕获细胞入侵和迁移的图像。由于连续两次试验的结果相差很大, 这一技术受到了广泛的批评。然而, 现代技术的应用, 特别是在显微镜下, 提高了刮伤试验的重现性。视频显微镜可以很容易地在孵化器中引入, 并能产生细胞迁移的 real-time 图像。这些装置记录了显微镜数据, 并提供了一段时间内缠绕细胞汇流的自动分析。本文的目的是描述博伊登室法和优化的刮伤法, 并讨论每种方法的优缺点。

Protocol

注: 不含 ecm 的博伊登室和划痕分析被称为迁移试验, 与 ecm 相同的化验被称为入侵检测。 1. 博伊登室试验 注: 本协议适用于 SQ20B 细胞系, 这是从复发头颈部鳞状细胞癌 (HNSCC) 喉癌, 并获得从约翰小 (波士顿, 马萨诸塞州, 美国)。 1天 细胞播种 种子 2 106 SQ20B 细胞在12毫升培养基中 (cm) 在175…

Representative Results

我们在这里报告两种不同的方法来分析细胞入侵和迁移。图 1显示了博伊登室实验。插入物被放置在具有趋化介质的伴板中, 细胞在 CM 中播种。该膜可以被涂覆 (迁移化验) 或涂层 (入侵检测)。细胞在 s CM 中被播种入上部房间。下部腔内填充 CM 作为趋化因子。细胞在加倍的时间之前被固定。 <strong class="xfig…

Discussion

我们在这里报告两种不同的模式来研究细胞入侵和迁移过程。对这一过程的分析对于了解转移复发的因素是很重要的, 这可能是由于癌细胞亚群的增加运动而解释为肿瘤干细胞10,11

博伊登室实验是研究细胞侵袭和迁移的最常用技术之一。这种方法的一个优点是它的重现性, 虽然这项技术是高度依赖于实验者的专长。细胞计数是手动…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这些技术是在 LabEx 素数 (ANR-11-LABX-0063) 的支持下开发的, 合同计划-地区 (CPER) 在星辰广场 (CPER 2009-2013) 的科学框架内, 以及抒情格补助金 INCa-DGOS-4664。

Materials

Fetal Calf Serum Gold GE Healthcare A15-151
Hydrocortisone water soluble Sigma-Aldrich H0396-100MG
Penicillin/Streptomycin 100 X Dominique Dutscher L0022-100
DMEM Gibco 61965-026
F12 Nut Mix (1X) + GlutaMAX-I Gibco 31765-027
EGF Promega G5021 The solution must be prepared just before use because it is very unstable
Z1 coulter particle Beckman Coulter 6605698
Optical microscope Olympus  CKX31
SQ20B cell line Gift from the John Little’s Laboratory
Wound Maker Essen Bioscience 4494 Store in safe and dry place
96-well ImageLock Plate Essen Bioscience 4379
CoolBox 96F System with CoolSink 96F Essen Bioscience 1500-0078-A00
CoolBox with M30 System Essen Bioscience 1500-0078-A00
Boyden Insert Dominique Dutcher 353097
Boyden Coated Insert Dominique Dutcher 354483 Store at -20 °C
Companion 24-well Plate Dominique Dutcher 353504
BD Matrigel standard BD BioScience BD 354234 Store at -20°C. 
RAL 555 Staining Kit RAL Diagnostics  361550 Store in safe and dry place
Microcentrifuge tubes Eppendorf 33511

References

  1. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
  2. Moncharmont, C., et al. Radiation-enhanced cell migration/invasion process: A review. Crit Rev Oncol Hematol. , (2014).
  3. Burdsal, C. A., Damsky, C. H., Pedersen, R. A. The role of E-cadherin and integrins in mesoderm differentiation and migration at the mammalian primitive streak. Development. 118 (3), 829-844 (1993).
  4. Chen, C., Zimmermann, M., Tinhofer, I., Kaufmann, A. M., Albers, A. E. Epithelial-to-mesenchymal transition and cancer stem(-like) cells in head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Lett. 338 (1), 47-56 (2013).
  5. Nelson, A. R., Fingleton, B., Rothenberg, M. L., Matrisian, L. M. Matrix metalloproteinases: biologic activity and clinical implications. J Clin Oncol. 18 (5), 1135-1149 (2000).
  6. Smith, A., Teknos, T. N., Pan, Q. Epithelial to mesenchymal transition in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol. 49 (4), 287-292 (2013).
  7. Chen, H. -. C. Boyden chamber assay. Meth Mol Biol. 294, 15-22 (2005).
  8. Rodriguez, L. G., Wu, X., Guan, J. -. L. Wound-healing assay. Meth Mol Biol. 294, 23-29 (2005).
  9. Piaton, E., et al. Technical recommendations and best practice guidelines for May-Grünwald-Giemsa staining: literature review and insights from the quality assurance. Ann Path. 35 (4), 294-305 (2015).
  10. Moncharmont, C., et al. Targeting a cornerstone of radiation resistance: cancer stem cell. Cancer lett. 322 (2), 139-147 (2012).
  11. Moncharmont, C., et al. Carbon ion irradiation withstands cancer stem cells’ migration/invasion process in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma (HNSCC). Oncotarget. 7 (30), 47738-47749 (2016).
  12. Gilormini, M., Wozny, A. -. S., Battiston-Montagne, P., Ardail, D., Alphonse, G., Rodriguez-Lafrasse, C. Isolation and Characterization of a Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Subpopulation Having Stem Cell Characteristics. J Vis Exp: JoVE. (111), (2016).
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Cite This Article
Guy, J., Espenel, S., Vallard, A., Battiston-Montagne, P., Wozny, A., Ardail, D., Alphonse, G., Rancoule, C., Rodriguez-Lafrasse, C., Magne, N. Evaluation of the Cell Invasion and Migration Process: A Comparison of the Video Microscope-based Scratch Wound Assay and the Boyden Chamber Assay. J. Vis. Exp. (129), e56337, doi:10.3791/56337 (2017).

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