Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç
Summary
Bu çalışmada bir basitleştirilmiş cerrahi müdahale ve kavernöz sinir stimülasyonu sinir-elektrot yalıtım ile gerçekleştirmek için teknik açıklar karmaşık silikon yapıştırıcı ve intracavernous basınç ölçüm kullanarak.
Abstract
Kavernöz sinir (CN) uyarılması ve intracavernous basınç (ICP) ölçümü kullanılan kapsamlı bir şekilde test etmek ve değerlendirmek için erektil disfonksiyon terapiler. Ancak, kullanılan yöntemleri laboratuvarlar arasında değişir ve tuzaklar hareketsiz var olmak. Bu çalışmanın amacı bir güvenilir ve tekrarlanabilir model sağlayacak bir cerrahi teknik açıklamak için oldu. İschiocavernosus kas, kural yumrunun tarihinde ekleme noktasında teşhir ederek penis crus en az diseksiyon ve yapıları erektil işlev ilgili yaralanma ile cannulated. Kaldırma ve kurutma, gerek kalmadan CN tekrarlanan uyarılması elektrot-sinir kompleksi yalıtmak için bir 125 µm manik depresif gümüş elektrot ve Biyouyumlu silikon yapıştırıcı kullanarak sağlanır. Bu yöntem germe ve sinir kurutma azaltarak neuropraxia engeller ve elektrik kaçağı inkâr ve alternatif yollar uyarılması önleme sinirin tam izolasyon sağlar.
Introduction
Vivo çalışmada deneysel hayvanlarda erektil fonksiyonunun 1863 Eckhard1öncü deneysel çalışmaları ile başladı. Elektrostimülasyon pelvik sinir köpeklerde artan ICP ikna etmek için kullanıldı. 20 yy benzer deneysel protokoller kediler ve tavşan, köpek, maymun gibi büyük hayvanlar kullanılmaya başlanmıştır. Bir sıçan erektil işlev değerlendirmek ilk Quinlan ve ark. 19892tarafından geliştirilmiştir. Yöntem beri modifiye edilmiş ve birkaç diğer gruplar34tarafından güncelleştirildi. Bugün, en yaygın kullanılan hayvan modeli patoloji erektil disfonksiyon eğitim ve gelişmekte olan tedavi seçenekleri değerlendirmek için faredir. Sistemik kan basıncı ICP bir artış ikna etmek için Şah damarı, ölçmek ICP penis crus cannulation ve CN uyarılması bir satırını kullanarak kayıt yordamı ana adımları içerir. Çeşitli araştırmacılar model iyileştirdiyseniz rağmen onun tekrarlanabilirlik bir sorun olmaya devam etmektedir ve değişken sonuçları farklı Laboratuvarları tarafından bildirilmiştir. Çeşitli tuzaklar, devam.
Önceki Makaleler5,6,7,8,9,10 penis kavernöz vücut cannulation için degloving ile tam penis pozlama kullanımını açıklar. Bu manipülasyon olarak en iyi bir yaklaşım değildir ve yıkıcı diseksiyon erektil işlev için gerekli olan yapılar için yaralanma neden olur. CN diseksiyon de açıklanan10,11oldu, ama sinir stimülasyonu deneysel sonuçları etkileyebilecek Multipl faktörler nedeniyle en uygun değil. CN stimülasyon tekniği çevreleyen doku sinir sinir konumlandırılmış, bipolar kanca elektrodu, çekerek ve her stimülasyon önce sinir kurutma tarafından kaldırma içerir. Bu sinir hasarı ve elektrik geçerli sızıntı, azalmış yanıt veya ICP alternatif yolları örneğin, Pelvik Taban kasları, mesane uyarılması yoluyla yanlış artış elde edilen ve gastrointestinal değişik derecelerde açabilir yolu12. Tüm bu faktörlerin tekrarlanabilirlik sınırlayın.
Bizim çalışma sırasında derinlik ve anestezi türünü ICP üzerinde büyük bir etkiye sahip görülmektedir. Anestezikler kullanılan sodyum Fentobarbital, ketamin/xylazine veya ketamin/midazolam enjeksiyon veya isoflurane/oksijen zehirlenmesi olabilir.
Burada biz basitleştirilmiş bir cerrahi yöntem tanımlamak ve veri deneysel protokol standardizasyon destek sağlamak.
Protocol
Representative Results
Discussion
Penis crus cannulation ICP kayıt için basitleştirilmiş bir cerrahi teknik ve yalıtım CN elektrostimülasyon için açıklamak için bu çalışmanın asıl hedefi oldu. Biz ameliyat basitleştirmek ve CN stimülasyon ile tekrarlanabilir kayıtları ICP artış sağlamak kavernöz vücut diseksiyon değişiklikler tanıttı. 1 cm dikey cilt kesi ile aşikar kural yumrunun kılavuz kullanarak penis tabanına yanal ischiocavernosus kas ve tunica albuginea iyi bir pozlama elde. Bu yordamı daha hızlıdır (küçük 15…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Yazarlar hiçbir katkıda bulunanlar var.
Materials
| Adson forceps | Fine Science Tool | 11006-12 | |
| Dumont #7 forceps | Fine Science Tool | 11271-30 | |
| Dumont #5 forceps | Fine Science Tool | 11273-20 | |
| ToughCut Mayo scissor | Fine Science Tool | 14110-15 | |
| Miniature Vannas Spring scissor | Fine Science Tool | 15006-09 | |
| Ultra Fine Hemostat | Fine Science Tool | 13020-12 | |
| Crile Hemostat | Fine Science Tool | 13004-14 | |
| Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL | |
| Teflon coated silver wire 0.125 mm | World Precision Instruments | AGT0510 | |
| Elastic wire retractors | Custom made | ||
| Scalpel blade | Fine Science Tool | 10023-00 | |
| PE-50 tubing | Warner Instruments | 64-0753 | |
| 23 G Needle | Kruuse | 121272 | |
| SD-9 Square Pulse Stimulator | Somatco | 1077/183 | |
| Blood pressure transducer and cable | World Precision Instruments | BLPR2 | |
| Raucotupf Cotton-tipped Applicators | Lohmann-Raucher | 11966 | |
| Pro-ophta Ocular Sticks | Lohmann-Raucher | 16515 | |
| NaCl 0,9 % 100 mL | Local pharmacy | ||
| Heparin | Local pharmacy | ||
| 25 mL Syringe | Odense University Hospital | ||
| Vet eye ointment – Viscotears | Local pharmacy | ||
| silver wires | Science Products GmbH, Heidelberg, Germany | ||
| Silicon Glue | Kwik-Sil, World Precision Instruments, Sarasota, FL, USA | ||
References
- Eckhard, C. . Untersuchungen über die Erektion des Hundes In: Beiträge zur Anatomie und Physiologie. , 123-166 (1863).
- Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W., Mostwin, J. L., Walsh, P. C. The rat as a model for the study of penile erection. J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).
- Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model. J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).
- Martinez-Pineiro, L., et al. Rat model for the study of penile erection: pharmacologic and electrical-stimulation parameters. Eur Urol. 25 (1), 62-70 (1994).
- Hayashi, N., et al. The effect of FK1706 on erectile function following bilateral cavernous nerve crush injury in a rat model. J Urol. 176 (2), 824-829 (2006).
- Burnett, A. L., Becker, R. E. Immunophilin ligands promote penile neurogenesis and erection recovery after cavernous nerve injury. J Urol. 171 (1), 495-500 (2004).
- Yamashita, S., et al. Nerve injury-related erectile dysfunction following nerve-sparing radical prostatectomy: a novel experimental dissection model. Int J Urol. 16 (11), 905-911 (2009).
- Burnett, A. L., et al. GGF2 is neuroprotective in a rat model of cavernous nerve injury-induced erectile dysfunction. J Sex Med. 12 (4), 897-905 (2015).
- Lin, H., et al. Nanoparticle Improved Stem Cell Therapy for Erectile Dysfunction in a Rat Model of Cavernous Nerve Injury. J Urol. 195 (3), 788-795 (2016).
- Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K., Choudhary, R., Bodakhe, S. H. Animal models of erectile dysfunction. J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).
- Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research. J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).
- Cellek, S., Bivalacqua, T. J., Burnett, A. L., Chitaley, K., Lin, C. S. Common pitfalls in some of the experimental studies in erectile function and dysfunction: a consensus article. J Sex Med. 9 (11), 2770-2784 (2012).
- Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models. J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).
- Mullerad, M., Donohue, J. F., Li, P. S., Scardino, P. T., Mulhall, J. P. Functional sequelae of cavernous nerve injury in the rat: is there model dependency. J Sex Med. 3 (1), 77-83 (2006).
- Albersen, M., et al. Injections of adipose tissue-derived stem cells and stem cell lysate improve recovery of erectile function in a rat model of cavernous nerve injury. J Sex Med. 7 (10), 3331-3340 (2010).
