Summary

Uma combinatória célula única abordagem para caracterizar o Molecular e imunofenotípica heterogeneidade de tronco humano e populações de Progenitor

Published: October 25, 2018
doi:

Summary

Granel gene expressão medições nuvem célula individual diferenças nas populações de células heterogêneas. Aqui, descrevemos um protocolo para análise de expressão do gene como unicelular e índice classificação por Florescence ativado celular classificação (FACS) pode ser combinado para delinear a heterogeneidade e immunophenotypically caracterizam populações de células molecularmente distinta.

Abstract

Caracterização imunofenotípica e análise molecular tem sido muito utilizados para delinear a heterogeneidade e definir populações de células distintas. FACS é inerentemente um ensaio de célula única, no entanto antes da análise molecular, as células de destino são isoladas frequentemente prospectivamente a granel, perdendo assim a resolução de célula única. Análise da expressão de gene de célula única fornece um meio para compreender diferenças moleculares entre células individuais em populações de células heterogêneas. Na análise de células em massa uma sobre-representação de um tipo de células distintas resulta em preconceitos e oclusões de sinais de células raras com importância biológica. Utilizando o FACS índice classificação acoplado a análise da expressão de gene de célula única, populações podem ser investigadas sem perda de resolução de célula única enquanto células com expressão de marcador de superfície de célula intermediária também são capturadas, permitindo a avaliação de a relevância da expressão do marcador de superfície contínua. Aqui, descrevemos uma abordagem que combina célula única transcrição reversa quantitativo PCR (RT-qPCR) e FACS índice classificação para caracterizar simultaneamente o molecular e imunofenotípica heterogeneidade dentro de populações de células.

Em contraste com os métodos de sequenciamento de RNA célula única, o uso de qPCR com amplificação de destino específico permite para medições robustas de baixa abundância transcrições com menos interrupções, enquanto isso não é confundido por questões relacionadas às variações de célula para célula em leitura profundidade. Além disso, por diretamente esse método de buffer de ordenação de índice único-células em Lise, permite para a síntese do cDNA e pré-amplificação alvo específico para ser executada em uma única etapa, bem como quanto à correlação de assinaturas moleculares posteriormente derivadas com superfície celular expressão do marcador. A abordagem descrita foi desenvolvida para investigar single-células hematopoiéticas, mas também têm sido utilizados com sucesso em outros tipos de células.

Em conclusão, a abordagem aqui descrita permite medição sensível da expressão de RNAm para um painel de genes pré-selecionados com a possibilidade para desenvolver protocolos para isolamento prospectivo subsequente de subpopulações molecularmente distintas.

Introduction

Cada célula individual do sangue é acreditada para residir em uma hierarquia de celular, onde as células-tronco formam o ápice em cima de uma série de progenitores intermediários cada vez mais comprometidos que eventualmente terminal se diferenciar em células efetoras final carregando específicas funções biológicas1. Muito do conhecimento sobre como os sistemas de células-tronco são organizados foi gerado no sistema hematopoiético, em grande parte devido a capacidade de isolar prospectivamente distintas populações hematopoiéticas altamente enriquecidas para células-tronco ou progenitoras vários2 , classificando o FACS. Isto permitiu para muitas dessas populações a serem analisados funcionalmente ou molecularmente, predominantemente através da expressão do gene de perfil3,4. No entanto quando analisando a expressão gênica das diferenças individuais de em massa das populações entre as células são em média para fora e perdeu5. Assim, incapacidade para detectar variações de célula para célula dentro frações heterogêneas célula pode confundir nosso entendimento de processos biológicos críticos se pequenos subconjuntos de células esclarecem a função biológica inferida do que a população6, 7. Por outro lado, investigação das assinaturas de expressão do gene na célula única resolução oferecem uma possibilidade de delinear a heterogeneidade e contornar a sombra influências de sobre-representados subconjuntos de células8.

Até à data têm sido desenvolvidos muitos protocolos para análise de expressão do gene de célula única; com cada abordagem tendo suas próprias limitações. O método mais antigo foi RNA fluorescente em situ hibridação (RNA-FISH), que mede um número limitado de transcrições de cada vez, mas é o único que permite a investigação de RNA localização9,11. Início métodos usando PCR e qPCR para detectar que um único ou poucos transcrições foram também desenvolvidos12. No entanto, estas ultimamente foram substituídas por métodos baseados em microfluídica que podem analisar simultaneamente a expressão de centenas de transcrições por célula em centenas de células através da qPCR e assim permitir para o uso de análise dimensional elevada heterogeneidade Pre-determinado gene painéis10,13. Recentemente tecnologias baseadas em sequenciamento de RNA tem tornar-se amplamente utilizadas para análise de célula única, como estes teoricamente podem medir a transcriptoma inteira de uma célula e, assim, adicionar uma dimensão exploratória a heterogeneidade análise10, 14. análise de qPCR multiplexados e sequenciamento de RNA de célula única têm características diferentes, assim, a justificativa para usar um dos métodos depende a pergunta, bem como o número de células na população-alvo. A alta produtividade e baixo custo por célula juntamente com características imparciais, exploratórias de sequenciamento de RNA de célula única são desejáveis quando célula desconhecida ou grandes populações são investigadas. No entanto, a sequenciação do ARN de célula única também é inclinada para sequenciamento transcrições abundantes altas mais frequentemente enquanto transcrições com baixa abundância são propensas a desistentes. Isso pode levar a dados consideravelmente complexos que coloca exigências de alta na análise de bioinformatic revelar importantes sinais moleculares que são muitas vezes sutis ou ocultas em ruído técnica15. Assim, para tecidos bem caracterizados, qPCR célula única análise usando pre-determinada painéis cartilha selecionados para funcionalmente importantes genes ou marcadores moleculares podem servir como uma abordagem sensível, simples para determinar a heterogeneidade de um população. No entanto, deve notar-se que em relação à célula única RNA-seq, o custo de cada célula é geralmente maior para métodos de célula única qPCR. Aqui, descrevemos uma abordagem que combina monocelulares RT-qPCR (modificado de J. Teles et al 16), índice de FACS classificação17 e bioinformática análise18 para simultaneamente caracterizam a heterogeneidade molecular e imunofenotípica dentro das populações.

Nesta abordagem, a população de células de interesse está manchada, e single-células são classificadas por FACS diretamente em tampão de Lise em placas de PCR de 96 poços. Simultaneamente, os níveis de expressão de um conjunto adicional de marcadores de superfície celular são registrados para cada célula única durante FACS-classificação, um método que é conhecido como índice de classificação. O material de lisados celulares é posteriormente amplificado e a expressão do gene de um conjunto selecionado de genes analisados com RT-qPCR, usando uma plataforma microfluidic. Esta estratégia permite a análise molecular da caracterização de célula única, bem como simultânea classificada de expressão do cada célula marcador da pilha-superfície. Mapeando diretamente molecularmente distintos subconjuntos de células para a expressão dos marcadores classificadas de indexado, as subpopulações podem ser vinculadas a um imunofenótipo específico que pode ser usado para seu isolamento em perspectiva. O método é descrito passo a passo na Figura 1. Um painel pre-determinado gene mais contribui para uma maior resolução da expressão do gene alvo, desde que contorna a medição dos genes abundantes irrelevantes que caso contrário pode ocluir os sinais de expressão do gene sutil. Além disso, a amplificação de destino específico, transcrição reversa de um passo e amplificação permite a medição robusta de baixas transcrições expressadas, como factores de transcrição ou RNAs não-poli-adenylated. Importante, qPCR métodos permitem a medição de mRNA de proteínas da fusão, que são importantes na investigação de determinadas doenças malignas,19. Finalmente, o foco número dos genes investigados, baixas taxas de abandono, e limitado as diferenças técnicas entre as células fazem este método facilmente analisado em comparação com métodos dimensionais mais elevados, como célula única RNA-Seq Seguindo o protocolo, pode ser realizada uma experiência inteira, de classificação células para resultados analisados, no prazo de três dias, tornando este um método simples e rápido para análise de expressão do gene de célula única sensível, elevado-throughput.

Protocol

1. preparação das placas de Lise Usando um banco livre de RNA/DNA, prepare o suficiente do lysis para 96 poços, com 10% extra, misturando 390 água livre da nuclease µ l, 17 µ l de 10% NP-40, 2,8 µ l 10 mM dNTP, 10 µ l 0,1 M DTT e inibidor de RNAse 5,3 µ l (ver Tabela de materiais). Vórtice e spin-down. Distribuir 4 µ l de tampão de Lise para cada poço de uma placa PCR bem 96 e selar as placas com película adesiva. Spin para baixo os tubos para coletar o líquido na parte…

Representative Results

O protocolo descrito é rápida, facilmente realizada e altamente confiável. Uma visão geral sobre a montagem experimental está apresentada na Figura 1. O protocolo inteiro, desde a triagem de single-células, a amplificação de destino específico, medições de expressão de gene e análise preliminar pode ser realizado em três dias. Um exemplo dos resultados analisados sob a forma de um mapa de calor que representa dados analisados preliminares da an?…

Discussion

Nos últimos anos, a análise da expressão de gene de célula única tornou-se uma adição valiosa para definir a heterogeneidade de várias populações de nível23. O advento das tecnologias de sequenciamento de RNA teoricamente fornece a possibilidade de medir a transcriptoma inteira de uma célula, no entanto, esses métodos são complicados por variações em profundidades de sequenciamento de célula para célula e abandono. Célula única qPCR oferece uma análise sensível e robusta da e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho é apoiado por subsídios da sociedade sueca de câncer, o Conselho Sueco de pesquisa, a sociedade sueca para pesquisa médica, o sueco Childhood Cancer Foundation, a Fundação de Ragnar Söderberg e The Knut e Alice Wallenberg Foundation

Materials

CD14 PECY5 eBioscience 15-0149-42 Clone: 61D3
CD16 PECY5 Biolegend 302010 Clone: 3G8
CD56 PECY5 Biolegend 304608 Clone: MEM-188
CD19 PECY5 Biolegend 302210 Clone: HIB19
CD2 PECY5 Biolegend 300210 Clone: RPA-2.10
CD3 PECY5 Biolegend 300310 Clone: HIT3a
CD123 PECY5 Biolegend 306008 Clone: 6H6
CD235A PECY5 BD Pharma 559944 Clone GAR2
CD34 FITC Biolegend 343604 Clone: 561
CD38 APC Biolegend 303510 Clone: Hit2
CD90 PE Biolegend 328110 Clone: 5E10
CD45RA BV421 BD bioscience 560362 Clone: HI100
CD49f Pecy7 eBioscience 25-0495-82 Clone: eBioGOH3
FBS HyClone SV30160.3
PBS HyClone SH30028.02
96-well u-bottom Plate VWR 10861-564
SFEM Stem cell technologies 9650
Penicillin streptomycin HyClone SV30010
TPO Peprotech 300-18
SCF Peprotech 300-07
FLT3L Peprotech 300-19
Falcon Tube 15 mL Sarstedt 62.554.502
Eppendorph tube Sarstedt 72.690.001
CST beads BD 642412
Accudrop Beads BD 345249 6-µm particles 
Adhesive film Clear Thermo scientific  AB-1170
Adhesive film Foil Thermo scientific  AB-0626
96 well PCR plate Axygen PCR-96M2-HS-C
PCR 1.5 mL tube Axygen MCT-150-L-C
T100 PCR cycler BioRad 186-1096
10% NP40 Thermo scientific  85124
10mM dNTP Takara 4030
0.1M DTT Invitrogen P2325
RNAsout Invitrogen 10777-019 RNAse inhibitor
CellsDirect One-Step qRT-PCR Kit Invitrogen 11753-100
Neuclease free water Invitrogen 11753-100 from CellsDirect kit
2X Reaction Mix Invitrogen 11753-100 from CellsDirect kit
SuperScript III RT/Platinum Taq Mix Invitrogen 11753-100 from CellsDirect kit
Platinum Taq DNA Polymerase Invitrogen 10966026
TaqMan Cells-to-CT Control Kit Invitrogen 4386995
Xeno RNA Control Invitrogen 4386995 From TaqMan Cells-to-CT Control Kit
20X Xeno RNA Control Taqman Gene Expression Assay Invitrogen 4386995 From TaqMan Cells-to-CT Control Kit
96.96 Sample/Loading Kit—10 IFCs Fluidigm BMK-M10-96.96
2X Assay Loading Reagent Fluidigm From 96.96 Sample/Loading Kit
20X GE Sample Loading Reagent Fluidigm From 96.96 Sample/Loading Kit
Control line fluid  Fluidigm From 96.96 Sample/Loading Kit
TaqMan Gene Expression Master Mix Applied Biosystems 4369016
BioMark HD Fluidigm BMKHD-BMKHD
96.96 Dynamic Array IFC Fluidigm BMK-M10-96.96GT
Excel Microsoft Microsoft
FlowJo V10 TreeStar TreeStar
Fluidigm real time PCR analysis Fluidigm Fluidigm
CD179a.VPREB1 Thermofisher scientific Hs00356766_g1
ACE Thermofisher scientific Hs00174179_m1
AHR Thermofisher scientific Hs00169233_m1
BCR_ABL.52 Thermofisher scientific Hs03043652_ft
BCR_ABL41 Thermofisher scientific Hs03024541_ft
BMI1 Thermofisher scientific Hs00995536_m1
CCNA2 Thermofisher scientific Hs00996788_m1
CCNB1 Thermofisher scientific Hs01030099_m1
CCNB2 Thermofisher scientific Hs01084593_g1
CCNC Thermofisher scientific Hs01029304_m1
CCNE1 Thermofisher scientific Hs01026535_g1
CCNF Thermofisher scientific Hs00171049_m1
CCR9 Thermofisher scientific Hs01890924_s1
CD10.MME Thermofisher scientific Hs00153510_m1
CD11a Thermofisher scientific Hs00158218_m1
CD11c.ITAX Thermofisher scientific Hs00174217_m1
CD123.IL3RA Thermofisher scientific Hs00608141_m1
CD133.PROM1 Thermofisher scientific Hs01009250_m1
CD151 Thermofisher scientific Hs00911635_g1
CD220.INSR Thermofisher scientific Hs00961554_m1
CD24.HSA Thermofisher scientific Hs03044178_g1
NCOR1 Thermofisher scientific Hs01094540_m1
CD26.DPP4 Thermofisher scientific Hs00175210_m1
CD274 Thermofisher scientific Hs01125301_m1
CD276 Thermofisher scientific Hs00987207_m1
CD32.FCGR2B Thermofisher scientific Hs01634996_s1
CD33 Thermofisher scientific Hs01076281_m1
CD34 Thermofisher scientific Hs00990732_m1
CD344.FZD4 Thermofisher scientific Hs00201853_m1
CD352.SLAMF6 Thermofisher scientific Hs01559920_m1
CD38 Thermofisher scientific Hs01120071_m1
CD4 Thermofisher scientific Hs01058407_m1
CD41.ITGA2B Thermofisher scientific Hs01116228_m1
CD49f.ITGA6 Thermofisher scientific Hs01041011_m1
CD56.NCAM1 Thermofisher scientific Hs00941830_m1
CD9 Thermofisher scientific Hs00233521_m1
CD97 Thermofisher scientific Hs00173542_m1
CD99 Thermofisher scientific Hs00908458_m1
CDK6 Thermofisher scientific Hs01026371_m1
CDKN1A Thermofisher scientific Hs00355782_m1
CDKN1B Thermofisher scientific Hs01597588_m1
CDKN1C Thermofisher scientific Hs00175938_m1
CEBPa Thermofisher scientific Hs00269972_s1
CSF1r Thermofisher scientific Hs00911250_m1
CSF2RA Thermofisher scientific Hs00531296_g1
CSF3RA Thermofisher scientific Hs01114427_m1
E2A.TCF3 Thermofisher scientific Hs00413032_m1
EBF1 Thermofisher scientific Hs01092694_m1
ENG Thermofisher scientific Hs00923996_m1
EPOR Thermofisher scientific Hs00959427_m1
ERG Thermofisher scientific Hs01554629_m1
FLI1 Thermofisher scientific Hs00956711_m1
FLT3 Thermofisher scientific Hs00174690_m1
FOXO1 Thermofisher scientific Hs01054576_m1
GAPDH Thermofisher scientific Hs02758991_g1
GATA1 Thermofisher scientific Hs00231112_m1
GATA2 Thermofisher scientific Hs00231119_m1
GATA3 Thermofisher scientific Hs00231122_m1
GFI1 Thermofisher scientific Hs00382207_m1
HES1 Thermofisher scientific Hs01118947_g1
HLF Thermofisher scientific Hs00171406_m1
HMGA2 Thermofisher scientific Hs00171569_m1
HOXA5 Thermofisher scientific Hs00430330_m1
HOXB4 Thermofisher scientific Hs00256884_m1
ID2 Thermofisher scientific Hs04187239_m1
IGF2BP1 Thermofisher scientific Hs00198023_m1
IGF2BP2 Thermofisher scientific Hs01118009_m1
IKZF1 Thermofisher scientific Hs00172991_m1
IL1RAP Thermofisher scientific Hs00895050_m1
IL2RG Thermofisher scientific Hs00953624_m1
IRF8 Thermofisher scientific Hs00175238_m1
ITGB7 Thermofisher scientific Hs01565750_m1
KIT Thermofisher scientific Hs00174029_m1
Lin28B Thermofisher scientific Hs01013729_m1
LMO2 Thermofisher scientific Hs00153473_m1
LYL1 Thermofisher scientific Hs01089802_g1
Meis1 Thermofisher scientific Hs01017441_m1
mKi67 Thermofisher scientific Hs01032443_m1
MPL Thermofisher scientific Hs00180489_m1
MPO Thermofisher scientific Hs00924296_m1
NFIB Thermofisher scientific Hs01029175_m1
Notch1 Thermofisher scientific Hs01062011_m1
Pten Thermofisher scientific Hs02621230_s1
RAG2 Thermofisher scientific Hs01851142_s1
RPS18 Thermofisher scientific Hs01375212_g1
RUNX1 Thermofisher scientific Hs00231079_m1
Shisa2 Thermofisher scientific Hs01590823_m1
Spi1 Thermofisher scientific Hs02786711_m1
Sterile.IgH Thermofisher scientific Hs00378435_m1
TAL1 Thermofisher scientific Hs01097987_m1
THY1 Thermofisher scientific Hs00264235_s1
Tim.3.HAVCR2 Thermofisher scientific Hs00958618_m1
VWF Thermofisher scientific Hs00169795_m1

References

  1. Seita, J., Weissman, I. L. Hematopoietic stem cell: Self-renewal versus differentiation. Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med. 2 (6), 640-653 (2010).
  2. Orkin, S. H., Zon, L. I. Hematopoiesis: An evolving paradigm for stem cell biology. Cell. 132 (4), 631-644 (2008).
  3. Ye, F., Huang, W., Guo, G. Studying hematopoiesis using single-cell technologies. Journal of Hematology & Oncology. 10, 27 (2017).
  4. Hoppe, P. S., Coutu, D. L., Schroeder, T. Single-cell technologies sharpen up mammalian stem cell research. Nature Cell Biology. 16 (10), 919-927 (2014).
  5. Wills, Q. F., et al. Single-cell gene expression analysis reveals genetic associations masked in whole-tissue experiments. Nature Biotechnol. 31 (8), 748-752 (2013).
  6. Velten, L., et al. Human haematopoietic stem cell lineage commitment is a continuous process. Nat Cell Biol. 19 (4), 271-281 (2017).
  7. Wilson, N. K., Nicola, K., et al. Combined single-cell functional and gene expression analysis resolves heterogeneity within stem cell populations. Cell Stem Cell. 16 (6), 712-724 (2015).
  8. Saliba, A. E., Westermann, A. J., Gorski, S. A., Vogel, J. Single-cell RNA-seq: Advances and future challenges. Nucleic Acids Research. 42 (14), 8845-8860 (2014).
  9. Femino, A. M., Fay, F. S., Fogarty, K., Singer, R. H. Visualization of Single RNA Transcripts in Situ. Science. 280 (5363), 585-590 (1998).
  10. Kalisky, T., et al. A brief review of single-cell transcriptomic technologies. Briefings in Functional Genomics. , elx019 (2017).
  11. Crosetto, N., Bienko, M., van Oudenaarden, A. Spatially resolved transcriptomics and beyond. Nature Reviews Genetics. 16, 57 (2014).
  12. Bengtsson, M., Ståhlberg, A., Rorsman, P., Kubista, M. Gene expression profiling in single cells from the pancreatic islets of Langerhans reveals lognormal distribution of mRNA levels. Genome Research. 15 (10), 1388-1392 (2005).
  13. Bengtsson, M., Hemberg, M., Rorsman, P., Ståhlberg, A. Quantification of mRNA in single cells and modelling of RT-qPCR induced noise. BMC Molecular Biology. 9 (1), 63 (2008).
  14. Picelli, S., et al. Smart-seq2 for sensitive full-length transcriptome profiling in single cells. Nature Methods. 10, 1096 (2013).
  15. Tung, P. -. Y., et al. Batch effects and the effective design of single-cell gene expression studies. Scientific Reports. 7, 39921 (2017).
  16. Teles, J., Enver, T., Pina, C. Single-cell PCR profiling of gene expression in hematopoiesis. Methods in Molecular Biology. , 21-42 (2014).
  17. Hayashi, T., et al. Single-cell gene profiling of planarian stem cells using fluorescent activated cell sorting and its "index sorting" function for stem cell research. Development, Growth, & Differentiation. 52 (1), 131-144 (2010).
  18. Lang, S., et al. SCExV: A webtool for the analysis and visualisation of single cell qRT-PCR data. BMC Bioinformatics. 16 (1), 320 (2015).
  19. de Klein, A., et al. A cellular oncogene is translocated to the Philadelphia chromosome in chronic myelocytic leukaemia. Nature. 300 (5894), 765-767 (1982).
  20. . indexed-sorting Available from: https://github.com/FlowJo-LLC/indexed-sorting (2016)
  21. Warfvinge, R., et al. Single-cell molecular analysis defines therapy response and immunophenotype of stem cell subpopulations in CML. Blood. 129 (17), 2384-2394 (2017).
  22. Nestorowa, S., et al. A single-cell resolution map of mouse hematopoietic stem and progenitor cell differentiation. Blood. 128 (8), e20-e31 (2016).
  23. Breton, G., et al. Human dendritic cells (DCs) are derived from distinct circulating precursors that are precommitted to become CD1c+ or CD141+ DCs. The Journal of Experimental Medicine. 213 (13), 2861-2870 (2016).
  24. Alberti-Servera, L., et al. Single-cell RNA sequencing reveals developmental heterogeneity among early lymphoid progenitors. The EMBO Journal. 36 (24), 3619-3633 (2017).
  25. Giustacchini, A., et al. Single-cell transcriptomics uncovers distinct molecular signatures of stem cells in chronic myeloid leukemia. Nature Medicine. 23, 692 (2017).
  26. Hansmann, L., Han, A., Penter, L., Liedtke, M., Davis, M. M. Clonal expansion and interrelatedness of distinct B-lineage compartments in multiple myeloma bone marrow. Cancer Immunology Research. 5 (9), 744-754 (2017).
  27. Psaila, B., et al. Single-cell profiling of human megakaryocyte-erythroid progenitors identifies distinct megakaryocyte and erythroid differentiation pathways. Genome Biology. 17 (1), 83 (2016).
  28. Schulte, R., et al. Index sorting resolves heterogeneous murine hematopoietic stem cell populations. Experimental Hematology. 43 (9), 803-811 (2015).
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Sommarin, M. N., Warfvinge, R., Safi, F., Karlsson, G. A Combinatorial Single-cell Approach to Characterize the Molecular and Immunophenotypic Heterogeneity of Human Stem and Progenitor Populations. J. Vis. Exp. (140), e57831, doi:10.3791/57831 (2018).

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