Summary

إنتاج ألياف المصفوفة خارج الخلية عبر الألياف المجوفة الذبيحة غشاء الخلية والثقافة

Published: February 02, 2019
doi:

Summary

والهدف من هذا البروتوكول هو إنتاج الألياف مصفوفة كاملة من خارج الخلية المستهدفة لإصلاح الجرح التي مناسبة للتقييم السريري كجزء من زرع السقالة التجدد. هذه الألياف التي تنتجها ثقافة الليفية في أغشية الألياف الجوفاء والمستخرجة بواسطة انحلال الأغشية.

Abstract

تصميم السقالات المستمدة من المصفوفة خارج الخلية (ECM) قد مدفوعة مصلحة كبيرة في الطب لإمكاناتها في التعجيل بالجرح بالإغلاق والشفاء. استخراج المصفوفة خارج الخلية من التليف خلية الثقافات في المختبر قدرة كامنة لجيل من إدارة المحتوى في المؤسسة من خطوط الخلايا البشرية-ويحتمل أن تكون خاصة بالمريض والتقليل من الوجود [ابيتوبس] إكسينوجينيك الذي أعاق في السريرية نجاح بعض المنتجات الموجودة في إدارة المحتوى في المؤسسة. تحديا كبيرا في الإنتاج في المختبر لإدارة المحتوى في المؤسسة مناسبة لغرس أن إنتاج المحتوى بثقافة الخلية عادة ذات القوة المنخفضة نسبيا. في هذا العمل، ويرد وصف بروتوكولات لإنتاج المحتوى بالخلايا المزروعة داخل ألياف جوفاء الذبيحة غشاء السقالات. أغشية الألياف المجوفة مثقف مع خطوط الخلايا تنتجها الخلايا الليفية في وسط خلية تقليدية وحلت بعد زراعة الخلايا تسفر عن المواضيع مستمر من إدارة المحتوى في المؤسسة. الألياف الناتجة عن إدارة المحتوى في المؤسسة المنتجة بهذا الأسلوب يمكن أن يكون ديسيلولاريزيد والمجففة بالتبريد، جعلها مناسبة للتخزين وغرس.

Introduction

السقالات الجراحية القابلة للغرس تكون لاعبا أساسيا لإصلاح الجرح، مع ما يزيد على 1 مليون تنسجم البوليمر الاصطناعية مزروع في جميع أنحاء العالم كل سنة لإصلاح جدار البطن وحدها1. ومع ذلك، بعد زرع البوليمرات الاصطناعية المواد المستخدمة تقليديا في تلفيق هذه السقالات تميل إلى إثارة استجابة هيئة خارجية، أدى إلى التهاب ضارة إلى الدالة للزرع وتندب من أنسجة2 . علاوة على ذلك، كما لا يتم تشكيلها مواد مش الاصطناعية السائدة (أي، بولي بروبلين) ملحوظ من الهيئة، فتنطبق عموما على الأنسجة حيث يمكن التغاضي تندب، يحد من فائدتها السريرية تجاه المعاملة الأنسجة مع الدالة أعلى ترتيب مثل العضلات. بينما هناك العديد من المنتجات مش الجراحية التي طبقت بنجاح السريرية، الشركة المصنعة مؤخرا تشير إلى الاصطناعية الجراحية تنسجم والمضاعفات الناتجة عن عملية زرع الأنسجة فيما تبرز أهمية بلوغ الحد الأقصى لزرع توافق مع الحياة، مما دفع إدارة الأغذية والعقاقير لتشديد اللوائح المتعلقة بالعمليات الجراحية مش المصنعين3،4. غرس السقالات المستمدة من الأنسجة المرضى الخاصة يقلل من هذه الاستجابة المناعية، ولكن يمكن أن ينتج الاعتلال موقع المانحة الكبيرة5. المصفوفة خارج الخلية (ECM) السقالات أنتجت في المختبر بديل ممكن، كما يحمل ديسيلولاريزيد ECM السقالات ممتازة توافق مع الحياة، لا سيما في حالة ECM ذاتي يزرع6.

بسبب محدودية توافر أنسجة المريض الحصاد لزرع ذاتي وخطر إعاقة وظيفة في موقع الجهات المانحة، القدرة على إنتاج المحتوى السقالات في المختبر من ثقافة خطوط الخلايا البشرية، أو إذا كان ذلك ممكناً، مريض الخلايا الخاصة بديل جذاب. التحديات الرئيسية في صنع كميات كبيرة من إدارة المحتوى في المؤسسة في المختبر هو عزل هذه الجزيئات صعبة الالتقاط. وقد أثبتنا في الأعمال السابقة، أن إدارة المحتوى في المؤسسة يمكن أن تنتج من استزراع الخلايا الليفية إفراز ECM في الرغاوي البوليمرية الذبيحة التي يتم حله بعد فترة الثقافة إلى ECM الغلة التي يمكن ديسيلولاريزيد لغرس7، 89،،10. كما أصدرت إدارة المحتوى في المؤسسة في الرغاوي تميل إلى اعتماد البنية الداخلية الرغاوي، استكشفت أغشية الألياف المجوفة (هفمس) سقالة الذبيحة لإنتاج مؤشرات الترابط لإدارة المحتوى في المؤسسة. المبينة في هذا التقرير أساليب مهمة لقياس معمل تصنيع أغشية الخلية ثقافة نوعية الألياف الجوفاء واستخراج الألياف المصفوفة خارج الخلية الجزء الأكبر من نفسه بعد فترة من الثقافة تنتجها الخلايا الليفية. هذا النهج ثقافة ثابتة سهولة تبني المختبرات تحتوي على معدات الثقافة خلية الثدييات القياسية. يمكن تطبيق إدارة المحتوى في المؤسسة التي تنتجها هذه النهج تجاه مجموعة متنوعة من التطبيقات السريرية.

Protocol

1-إنتاج مصفوفة خارج الخلية باستخدام أغشية الألياف المجوفة قرباني تنبيه: N-الميثيل-2-بولي هو مذيب مزعجة وأنها سامة للإنجاب. قد يسبب التعرض لكرت تهيج الجلد والعينين، والأنف والحنجرة. وينبغي استخدام المقاوم للمذيبات من معدات الوقاية الشخصية عند التعامل مع كرت. ينبغي أن يجري استخ…

Representative Results

النجاح في إنتاج المصفوفة خارج الخلية من السقالات الذبيحة مرهون بتلفيق سقالة ملائمة وخلية ثقافة وإجراءات الشطف المذيبات. تصنيع الأغشية الألياف الجوفاء التي تتم باستخدام نظام الغزل الرطب الجاف-جت تجميعها من المكونات المتوفرة تجارياً (الشكل 1) الذي يستخدم …

Discussion

تمكين العمليات الوارد وصفها إنتاج السائبة ECM الحيوية في المختبر باستخدام أغشية الألياف المجوفة يلقي بغزل رطب الجاف-جت نظام يسمح بإنتاج كميات كبيرة غير مكلفة الأغشية، فضلا عن معدات الثقافة خلية قياسية. بينما يعتزم استخدامها في خلية ثقافة الأغشية ملفقة في هذا البروتوكول، كما يمكن تكي?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيده البحث عنها في هذا المنشور بالمعهد الوطني لالتهاب المفاصل وموسكولوسكيليتال وأمراض الجلد من “المعاهد الوطنية للصحة” تحت رقم R15AR064481، جائزة “مؤسسة العلوم الوطنية” (CMMI-1404716)، فضلا عن معهد العلوم البيولوجية ولاية أركنسو.

Materials

1/32 inch thick silicone rubber Grainger B01LXJULOM
20 mL Scintillation Vials, Borosilicate glass, Disposable – VWR VWR 66022-004 With attached white urea cap and cork foil liner
3 inch by 1 inch microscopy slides VWR 75799-268
4C refrigerator Thermo Fisher Scientific FRGG2304D Any commercial 4C refrigerator will suffice.
50 mL tubes VWR 21008-178
6-well cell culture plates VWR 10062-892 Alternative brands may be used
Acetone VWR E646 Alternative brands may be used
Bore vessel McMaster-Carr 89785K867 6 ft 316 steel tubing
Bovine Plasma Fibronectin Thermo Fisher Scientific 33010018 Comes as 1 mg of lyophilized protein
CaCl2 VWR/Amresco 97062-590
Cell Culture Incubator w/ CO2 Any appropriate CO2-supplied mammalian cell incubator will suffice.
Disposable Serological Pipets, Glass – Kimble Chase VWR 14673-208 Alternative brands may be used
DMEM/F-12, HEPES Thermo Fisher Scientific 11330032 Warm in water bath at 37°C for 30 minutes prior to use
DNase I Sigma-Aldrich DN25-10MG
Dope vessel McMaster-Carr 89785K867 6 ft 316 steel tubing
Ethanol VWR BDH1160 Dilute to 70% for sterilization
Fetal Bovine Serum, qualified, US origin – Gibco Thermo Fisher Scientific 26140079 Mix with growth media at 10% concentration (50mL in 500mL media)
Four 1/4-inch to 1" reducing unions Swagelok SS-1610-6-4 One reducing union for each inlet and outlet of each vessel
Freeze-dryer/lyophilizer Labconco 117 (A65312906) Any lyophilizer will suffice.
Hexagonal Antistatic Polystyrene Weighing Dishes – VWR VWR 89106-752 Any weigh boat will suffice
Hollow fiber membrane immersion bath 34L polypropylene tubs may be used or large bath containers can be fabricated from welded steel sheets
Hollow Fiber Membrane Spinneret AEI http://www.aei-spinnerets.com/specifications.html Made to order. Inner diameter = 0.8 mm, outer diameter = 1.6 mm
Hot plate/stirrer VWR 97042-634
Human TGF-β1 PeproTech 100-21
L-Ascorbic acid Sigma-Aldrich A4544-25G
L-Ascorbic acid 2-phosphate Sigma-Aldrich A8960-5G
L-glutamine (200 mM) – Gibco Thermo Fisher Scientific 25030081 Mix with growth media at 1% concentration (5mL in 500mL media)
MgCl2 VWR/Alfa Aesar AA12315-A1
Minus 80 Freezer Thermo Fisher Scientific UXF40086A Any commercial -80C freezer will suffice.
N2 gas cylinders (two)
NIH/3T3 cells ATCC CRL-1658 Alternative fibrogenic cell lines may be used.
N-methyl-2-pyrrolidone VWR BDH1141 Alternative brands may be used
Penicillin/Streptomycin Solution – Gibco Thermo Fisher Scientific 15140122 Mix with growth media at 0.1% concentration (0.5 mL in 500mL media)
Polysulfone Sigma-Aldrich 428302 Any polysulfone with an average Mw of 35,000 daltons may be used
Portable Pipet-Aid Pipetting Device – Drummond VWR 53498-103 Alternative brands may be used
PTFE tubing (1/4-inch inner diameter) McMaster-Carr 52315K24 Alternative brands may be used.
Rat skeletal muscle fibroblasts Independently isolated from rat skeletal muscle. Alternative fibrogenic cell lines may be used.
RNase A Sigma-Aldrich R4642
Silicone sheet McMaster-Carr 1460N28
Take-up motor Greartisan B071GTTSV3 200 RPM DC Motor
Tris HCl VWR/Amresco 97063-756
Two needle valves Swagelok SS-1RS4

References

  1. Cobb, W. S., Kercher, K. W., Heniford, B. T. The argument for lightweight polypropylene mesh in hernia repair. Surgical Innovation. 12 (1), 63-69 (2005).
  2. Morais, J. M., Papadimitrakopoulos, F., Burgess, D. J. Biomaterials/Tissue Interactions: Possible Solutions to Overcome Foreign Body Response. The AAPS Journal. 12 (2), 188-196 (2010).
  3. Simon, P., et al. Early failure of the tissue engineered porcine heart valve SYNERGRAFT® in pediatric patients. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 23 (6), 1002-1006 (2003).
  4. . . FDA strengthens requirements for surgical mesh for the transvaginal repair of pelvic organ prolapse to address safety risks. , (2016).
  5. Kartus, J., Movin, T., Karlsson, J. Donor-site morbidity and anterior knee problems after anterior cruciate ligament reconstruction using autografts. Arthroscopy: The Journal of Arthroscopic & Related Surgery. 17 (9), 971-980 (2001).
  6. Lu, H., Hoshiba, T., Kawazoe, N., Chen, G. Autologous extracellular matrix scaffolds for tissue engineering. Biomaterials. 32 (10), 2489-2499 (2011).
  7. Wolchok, J. C., Tresco, P. A. The isolation of cell derived extracellular matrix constructs using sacrificial open-cell foams. Biomaterials. 31 (36), 9595-9603 (2010).
  8. Roberts, K., Schluns, J., Walker, A., Jones, J. D., Quinn, K. P., Hestekin, J., Wolchok, J. C. Cell derived extracellular matrix fibers synthesized using sacrificial hollow fiber membranes. Biomedical Materials. 13 (1), (2017).
  9. Hurd, S. A., Bhatti, N. M., Walker, A. M., Kasukonis, B. M., Wolchok, J. C. Development of a biological scaffold engineered using the extracellular matrix secreted by skeletal muscle cells. Biomaterials. 49, 9-17 (2015).
  10. Kasukonis, B. M., Kim, J. T., Washington, T. A., Wolchok, J. C. Development of an infusion bioreactor for the accelerated preparation of decellularized skeletal muscle scaffolds. Biotechnology Progress. 32 (3), 745-755 (2016).
  11. Murad, S., et al. Regulation of collagen synthesis by ascorbic acid. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 78 (5), 2879-2882 (1981).
  12. Zhang, Y., et al. Tissue-specific extracellular matrix coatings for the promotion of cell proliferation and maintenance of cell phenotype. Biomaterials. 30 (23-24), 4021-4028 (2009).
  13. Feng, C. Y., Khulbe, K. C., Matsuura, T., Ismail, A. F. Recent progresses in polymeric hollow fiber membrane preparation, characterization and applications. Separation and Purification Technology. 111, 43-71 (2013).
  14. Domb, A. J., Kost, J., Wiseman, D. . Handbook of Biodegradable Polymers. , (1998).
check_url/58791?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Roberts, K., Kim, J. T., White, S., Hestekin, J., Wolchok, J. C. Production of Extracellular Matrix Fibers via Sacrificial Hollow Fiber Membrane Cell Culture. J. Vis. Exp. (144), e58791, doi:10.3791/58791 (2019).

View Video