La fibrina è responsabile della formazione di coaguli durante l’emostasi e la trombosi. I saggi di turbidità e il tromboelastograhy (TEG) possono essere utilizzati come strumenti sinergici che forniscono una valutazione complementare di un coagulo. Queste due tecniche insieme possono dare maggiori informazioni su come le condizioni di coagulazione influenzano la formazione di coaguli di fibrina.
La trombosi è una delle principali cause di morte in tutto il mondo. La fibrina (ogen) è la proteina principalmente responsabile della formazione di coaguli o trombosi. Pertanto, caratterizzare la formazione di coaguli di fibrina è utile per lo studio della trombosi. Turbidità e tromboelastografia (TEG) sono entrambi ampiamente utilizzati in vitro saggi per monitorare la formazione di coaguli. La turbidità misura dinamicamente la trasmissione della luce attraverso una struttura di coagulo di fibrina attraverso uno spettrometro ed è spesso utilizzata nei laboratori di ricerca. TEG è una tecnica viscoelastica specializzata che misura direttamente la forza del coagulo di sangue ed è utilizzata principalmente in ambienti clinici per valutare l’emostasi dei pazienti. Con l’aiuto di questi due strumenti, questo studio descrive un metodo per caratterizzare un coagulo di fibrina in vitro utilizzando un modello semplificato di coagulo di fibrinogeno/trombina. Le tendenze dei dati in entrambe le tecniche sono state confrontate in varie condizioni di coagulazione. I coaguli di fibrina umana e bovina sono stati formati fianco a fianco in questo studio, poiché i fattori di coagulazione bovina sono spesso utilizzati come sostituti di fattori di coagulazione umana in ambienti clinici e di ricerca. I risultati dimostrano che TEG e la turbidità tracciano la formazione di coaguli attraverso due metodi distinti e, se utilizzati insieme, forniscono informazioni complementari sulla resistenza del coagulo e sulla struttura delle fibre in diverse condizioni di coagulazione.
La trombosi è la formazione patologica di un coagulo di sangue nel corpo che blocca la circolazione sanguigna che porta ad alta morbilità e mortalità in tutto il mondo. Ci sono da 1 a 2 casi di tromboembolismo venoso e da 2 a 3 casi di malattie vascolari indotte dalla trombosi ogni 1000 personeall’anno 1,2. Presentato qui è un metodo che sfrutta la tromboelastografia (TEG) e la torbidità per monitorare la formazione di coaguli in varie condizioni di coagulazione. Fibrin(ogen) è la proteina primaria che è responsabile della formazione di coaguli nel corpo. Nelle fasi finali della cascata di coagulazione, i fibrinopeptidi vengono sciolti dal fibrinogeno da thrombin iniziando la polimerizzazione dei monomeri fibrin insolubili man mano che il coagulo sisviluppa 3,4. Per comprendere la formazione di coaguli nella trombosi patologica, è necessario caratterizzare la formazione di fibrina in diverse circostanze di coagulazione. Sono stati utilizzati più saggi di monitoraggio dei coaguli per studiare la formazione di coaguli di fibrina in vitro. Il tempo di prothrombina (PT/INR) e il tempo di tromboplastin parziale attivato (aPTT) sono due saggi clinici comuni che misurano l’integrità di una specifica via di coagulazione. Tuttavia, utilizzano il tempo come unica variabile che non fornisce alcuna indicazione delle proprietà fisiche del coagulo5. La microscopia elettronica consente la visualizzazione della microstruttura di un coagulo di fibrina completamente formato, ma non fornisce informazioni sul processo di formazione del coagulostesso 6. Tra tutti i saggi, i saggi di torbidità e TEG offrono la possibilità di monitorare dinamicamente le caratteristiche dei coaguli nel tempo. Queste tecniche consentono la misura di profili di coagulazione completi e, pertanto, forniscono qualche beneficio rispetto ad altri strumenti di caratterizzazione del coagulo di fibrina.
In particolare, i saggi di torbidità (o torbidimetria del coagulo) sono ampiamente utilizzati per la ricerca e le applicazioni cliniche grazie alla sua implementazione semplicistica e all’ampia accessibilità degli spettrometri nei laboratori di ricerca. Questo saggio permette una misurazione dinamica della trasmissione della luce attraverso un coagulo di formatura prendendo singole letture ripetitive a una lunghezza d’onda definita (più comunemente a una lunghezza d’onda nell’intervallo di 350 – 700 nm)7. La temperatura nella camera di lettura può anche essere regolata. Con la forma del gel fibrina, la quantità di luce che viaggia attraverso la rete proteica si riduce causando un aumento dell’assorbimento nel tempo. Allo stesso modo, l’assorbimento diminuisce quando la rete di coaguli si degrada. I saggi di turbidità possono essere facilmente multiplex utilizzando un formato di piastra multi-pozzo per consentire lo screening del campione ad alta velocità effettiva in entrambe le piastre 96 e 384-well. Diverse caratteristiche del coagulo possono essere derivate da una curva di tracciamento della torbidità (assorbimento nel tempo di misurazione) che includono: massima torbidità, tempo alla torbidità massima, tempo per l’insorgenza del coagulo e tasso di formazione dei coaguli (Vmax). Un rapporto massa/lunghezza in fibra di fibrina può anche essere derivato dai dati grezzi di torbidità per stimare lo spessore della fibra di fibrina8,9,10.
TEG è utilizzato principalmente nell’ambiente clinico per valutare l’emostasi e la lisi coagulata dei pazienti. È anche comunemente usato in applicazioni chirurgiche per determinare quando i farmaci anti-fibrinolitici o prodotti ematici emostatici devono essere somministrati11,12. La formazione di coaguli avviene all’interno di una tazza TEG con tutti i componenti di coagulazione aggiunti alla coppa prima dell’inizio del saggio. La coppa, con coagulo in evoluzione, ruota fisicamente contro un perno che viene inserito nel suo centro e un sensore di torsione elettromeccanica misura la crescente forza viscoelastica del coagulo. Questo saggio viene in genere effettuato alla temperatura fisiologica di 37 gradi centigradi; tuttavia, la temperatura può essere regolata manualmente sullo strumento. L’ampiezza massima (MA), la velocità di reazione (R), il tempo di cinetica (K), l’angolo di z (Angolo) e il tempo di ampiezza massima (TMA) vengono estratti dal software TEG dal tracciamento DINAMICO TEG. Questi valori vengono in genere confrontati con intervalli normali clinici per valutare lo stato di coagulazione di un paziente. Mentre TEG non è esattamente un viscometro, in quanto misura la forza del coagulo in unità millimetriche, fornisce importanti dati di coaguli viscoelastici e funziona come un prezioso strumento decisionale clinico per i medici per decidere di amministrare specifici prodotti sanguigni e regolare il dosaggio terapeutico13. Quando si utilizzano insieme sia i saggi TEG che i saggi di torbidità, forniscono informazioni complementari sulla caratterizzazione dei coaguli, poiché la forza del coagulo e la cinetica sono facilmente estratte dallo spessore della fibra teG e lo spessore della fibra di fibrina è accessibile mediante misurazioni ottiche della torbidità.
Poiché la fibrina è una componente critica di un coagulo di sangue, la caratterizzazione del coagulo di fibrina in diverse condizioni di formazione dei coaguli può fornire preziose informazioni su come una variabile specifica contribuisce al processo di formazione del coagulo e alle proprietà finali del coagulo. Comprendere questo può fornire indicazioni per la diagnosi di trombosi e lo sviluppo di terapie. Per ottenere una caratterizzazione del coagulo di fibrina più rappresentativa, il plasma può essere sostituito per monitorare la formazione di coaguli in quanto assomiglia più da vicino alle condizioni di coagulazione in vivo rispetto a un sistema di modelli fibrinogeni/trombini semplificato. Tuttavia, a causa dell’intricata natura della cascata di coagulazione, la formazione di coaguli utilizzando il plasma aumenta la complessità, rendendo più difficile isolare l’impatto dei singoli fattori. L’utilizzo di un modello semplificato di fibrinogeno/trombo impedisce la necessità di avviare l’intera cascata di coagulazione consentendo l’isolamento della fase finale della formazione della fibrina. Includendo due componenti di formatura di fibrina principali (fibrinogeno e trombano), questa configurazione crea una condizione di formazione del coagulo altamente controllata. È anche importante notare che, mentre qui viene utilizzato il modello di coagulo semplificato, questo protocollo può essere utilizzato anche per caratterizzare coaguli più complessi includendo ulteriori fattori di coagulazione. In questo studio, la caratterizzazione del coagulo di fibrina utilizzando torbidità e TEG viene effettuata variando concentrazioni di fibrinogeno e trombano, forza ionica, pH e concentrazione totale di proteine nella soluzione di coagulazione per imitare diverse circostanze di coagulazione in vivo14. I dettagli relativi a queste variazioni del protocollo sono stati inclusi nella Sezione 5.
Questo protocollo dimostra l’utilizzo di due distinti strumenti di caratterizzazione del coagulo che testano un modello semplificato di coagulo fibrinogen/trombo utilizzando componenti disponibili in modo commerciale. Sia TEG e turbidity saggi sono facili da condurre. Non solo forniscono esami del coagulo del punto finale come la formazione di coaguli max (TurbMax e TEGMax) e i tempi di formazione dei coaguli (Tempo diTurb e TempoTEG),ma valutano anche il processo di formazione…
The authors have nothing to disclose.
Nessuno.
96-Well Clear Flat Bottom UV-Transparent Microplate | Corning | 3635 | Non-treated acrylic copolymer, non-sterile |
Albumin from human serum | Millipore Sigma | A1653 | ≥96%, lyophilized powder |
Arium Mini Plus Ultrapure Water System | Sartorius | NA | DI water source |
Bovine serum albumin | Millipore Sigma | A2153 | ≥96%, lyophilized powder |
Disposable Cups and Pins for TEG 5000 (Clear) | Haemonetics | REF 6211 | |
Fibrinogen, Bovine Plasma | Millipore Sigma | 341573 | contains more than 95% clottable protein |
Fibrinogen, Plasmingogen-Depleted, Human Plasma | Millipore Sigma | 341578 | Contains ≥ 95% clottable proteins. |
Phosphate buffered saline | Millipore Sigma | P3813 | Powder, pH 7.4, for preparing 1 L solutions |
Potassium chloride | Millipore Sigma | 60130 | ≥99.5% purity |
Potassium phosphate monobasic | Millipore Sigma | P9791 | ≥98% purity |
SevenEasy pH Meter | Mettler Toledo | S20 | |
Sodium chloride | Millipore Sigma | 71378 | ≥99.5% purity |
Sodium phosphate dibasic | Millipore Sigma | 71636 | ≥99.5% purity |
SpectraMax M5 multi-detection microplate reader system | Molecular Devices | M5 | |
TEG 5000 Thrombelastograph Hemostasis analyzer system | Haemonetics | 07-022 | |
Thrombin, Bovine | Millipore Sigma | 605157 | |
Thrombin, Human Plasma, High Activity | Millipore Sigma | 605195 |