Wir beschreiben hier die Einrichtung und Anwendung einer Tg(Myh6-cre)1Jmk/J /Gt(ROSA)26Sortm38(CAG-GCaMP3)Hze/J (unten als αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 bezeichnet) Maus-Reporterlinie zur Beurteilung der kardialen Reprogrammierung. Neonatale kardiale Fibroblasten (NCFs), die aus dem Mausstamm isoliert wurden, werden in induzierte Kardiomyozyten (iCMs) umgewandelt, was eine bequeme und effiziente Bewertung der Reprogrammierungseffizienz und der funktionellen Reifung von iCMs über den Calcium(Ca2+)-Fluss ermöglicht.
Die kardiale Reprogrammierung ist zu einer potenziell vielversprechenden Therapie zur Reparatur eines beschädigten Herzens geworden. Durch die Einführung mehrerer Transkriptionsfaktoren, einschließlich Mef2c, Gata4, Tbx5 (MGT), können Fibroblasten in induzierte Kardiomyozyten (iCMs) umprogrammiert werden. Diese iCMs, wenn sie in situ in einem infarktierten Herzen erzeugt werden, integrieren sich elektrisch und mechanisch in das umgebende Myokard, was zu einer Verringerung der Narbengröße und einer Verbesserung der Herzfunktion führt. Aufgrund der relativ geringen Reprogrammierungseffizienz, Reinheit und Qualität der iCMs bleibt die Charakterisierung von iCMs eine Herausforderung. Die derzeit in diesem Bereich verwendeten Methoden, einschließlich Durchflusszytometrie, Immunzytochemie und qPCR, konzentrieren sich hauptsächlich auf die kardialspezifische Gen- und Proteinexpression, nicht aber auf die funktionelle Reifung von iCMs. Ausgelöst durch Aktionspotentiale führt das Öffnen spannungsgesteuerter Calciumkanäle in Kardiomyozyten zu einem schnellen Zustrom von Calcium in die Zelle. Daher ist die Quantifizierung der Rate des Kalziumeinstroms eine vielversprechende Methode zur Bewertung der Kardiomyozytenfunktion. Hier stellt das Protokoll eine Methode zur Bewertung der iCM-Funktion durch Calcium (Ca2 +) -Fluss vor. Ein αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3-Mausstamm wurde durch Kreuzung von Tg(Myh6-cre)1Jmk/J (unten als Myh6-Cre bezeichnet) mit Gt(ROSA)26Sortm38(CAG-GCaMP3)Hze/J (unten als Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 bezeichnet) Mäuse etabliert. Neonatale kardiale Fibroblasten (NCFs) von P0-P2-Neugeborenenmäusen wurden isoliert und in vitro kultiviert, und eine polycistronische Konstruktion von MGT wurde in NCFs eingeführt, was zu ihrer Reprogrammierung auf iCMs führte. Da nur erfolgreich reprogrammierte iCMs GCaMP3-Reporter exprimieren, kann die funktionelle Reifung von iCMs durch Ca2+- Fluss mit Fluoreszenzmikroskopie visuell beurteilt werden. Im Vergleich zu nicht reprogrammierten NCFs zeigten NCF-iCMs einen signifikanten transienten Kalziumfluss und eine spontane Kontraktion, ähnlich wie CMs. Dieses Protokoll beschreibt detailliert die Etablierung von Mausstämmen, die Isolierung und Selektion neonataler Mäuseherzen, die NCF-Isolierung, die Produktion von Retroviren zur kardialen Reprogrammierung, die iCM-Induktion, die Auswertung des iCM Ca2+- Flusses unter Verwendung unserer Reporterlinie sowie die damit verbundene statistische Analyse und Datenpräsentation. Es wird erwartet, dass die hier beschriebenen Methoden eine wertvolle Plattform bieten werden, um die funktionelle Reifung von iCMs für kardiale Reprogrammierungsstudien zu bewerten.
Myokardinfarkt (MI) ist weltweit eine schwere Erkrankung. Herz-Kreislauf-Erkrankungen (CVDs) sind weltweit die häufigste Todesursache und für rund 18,6 Millionen Todesfälle im Jahr 20191 verantwortlich,2. Die Gesamtmortalität von CVDs ist im letzten halben Jahrhundert zurückgegangen. Dieser Trend wurde jedoch in einigen unterentwickelten Ländern verlangsamt oder sogar umgekehrt1, was eine wirksamere Behandlung von Herz-Kreislauf-Erkrankungen erfordert. Als eine der tödlichen Manifestationen von CVD macht MI etwa die Hälfte aller Todesfälle aus, die auf CVDs in den Vereinigten Staaten zurückzuführen sind2. Während der Ischämie, mit der Blockierung der Koronararterien und der begrenzten Versorgung mit Nährstoffen und Sauerstoff, erleidet das Myokard schwere metabolische Veränderungen, beeinträchtigt die systolische Funktion von Kardiomyozyten (CMs) und führt zum CM-Tod3. Zahlreiche Ansätze in der Herz-Kreislauf-Forschung wurden erforscht, um Herzverletzungen zu reparieren und die Funktion des verletzten Herzens wiederherzustellen4. Die direkte kardiale Reprogrammierung hat sich als eine vielversprechende Strategie zur Reparatur des geschädigten Herzens und zur Wiederherstellung seiner Funktion herausgestellt5,6. Durch die Einführung von Mef2c, Gata4, Tbx5 (MGT) können Fibroblasten in vitro und in vivo auf iCMs umprogrammiert werden, und diese iCMs können den Narbenbereich reduzieren und die Herzfunktion verbessern7,8.
Obwohl die kardiale Reprogrammierung eine vielversprechende Strategie für die MI-Behandlung ist, gibt es noch eine Reihe von Herausforderungen. Erstens sind die Reprogrammierungseffizienz, Reinheit und Qualität nicht immer so hoch wie erwartet. Die MGT-Aufforderung kann nur 8,4% (cTnT+) oder 24,7% (αMHC-GFP+) der gesamten CFs erreichen, die in vitro7 auf iCMs umprogrammiert werden sollen7, oder bis zu 35% in vivo8, was ihre Anwendung einschränkt. Selbst mit mehr im System induzierten Faktoren wie Hand29 oder Akt1/PKB10 ist die Reprogrammierungseffizienz immer noch kaum zufriedenstellend, um in einem klinischen Umfeld eingesetzt zu werden. Daher sind in diesem Bereich weitere Studien erforderlich, die sich auf die Verbesserung der Reprogrammierungseffizienz konzentrieren. Zweitens sind die elektrische Integrität und die Kontraktionseigenschaften von iCMs wichtig für die effiziente Verbesserung der Herzfunktion, aber diese sind schwierig zu bewerten. Derzeit konzentrieren sich weit verbreitete Bewertungsmethoden auf diesem Gebiet, einschließlich Durchflusszytometrie, Immunzytochemie und qPCR der Expression einiger wichtiger CMs-Gene, alle auf die Ähnlichkeit von iCMs und CMs, aber nicht direkt mit den funktionellen Eigenschaften von iCMs. Darüber hinaus haben diese Methoden relativ komplizierte Verfahren und sind zeitaufwendig. Während Reprogrammierungsstudien in der Regel ein Screening potenzieller Reprogrammierungsfaktoren beinhalten, die die Reifung von iCMs fördern11, erfordert die kardiale Reprogrammierung eine schnelle und bequeme Methode, die auf der iCMs-Funktion basiert.
CMs öffnen die spannungsgesteuerten Calciumionenkanäle auf der Zytomembran während jedes Kontraktionszyklus, was zu einem vorübergehenden Zustrom von Calciumionen (Ca2+) aus der interzellulären Flüssigkeit in das Zytoplasma führt, um an der Myofilamentkontraktion teilzunehmen. Ein solcher Ca2+-Ein- und Abflusszyklus ist das grundlegende Merkmal der Myokardkontraktion und bildet die normale Funktion von CMs12. Daher könnte eine Methode, die den Ca2+-Zustrom erkennt, eine mögliche Möglichkeit sein, die Funktion von CMs und CM-ähnlichen Zellen, einschließlich iCMs, zu messen. Darüber hinaus bietet eine solche Methode für iCMs eine weitere Möglichkeit, die Reprogrammierungseffizienz zu bewerten.
Genetisch kodierte Kalziumindikatoren (GECIs) wurden entwickelt und weit verbreitet verwendet, um Zellaktivitäten, insbesondere Aktionspotenziale, anzuzeigen. Im Allgemeinen bestehen GECIs aus einer Ca2 +- Bindungsdomäne wie Calmodulin und einer Fluoreszenzdomäne wie GFP, und GCaMP3 ist eine mit hoher Affinität und Fluoreszenzintensität. Die Fluoreszenzdomäne von GCaMP3 wird aktiviert, wenn die lokale Calciumkonzentration geändert wird13. In diesem Artikel wird ein Mausstamm beschrieben, der speziell einen GCaMP3-Reporter in Myh6+-Zellen exprimiert. Durch die Einführung von MGT in die isolierten NCFs von Neugeborenen dieses Stammes kann die Reprogrammierung durch Fluoreszenz überwacht werden, die erfolgreich reprogrammierte iCMs aufweisen werden. Ein solcher Mausstamm und eine solche Methode wird eine wertvolle Plattform bieten, um die kardiale Reprogrammierung zu untersuchen.
Die Bewertung der iCMs-Funktion ist für das Kardiale Reprogrammierungsfeld notwendig. In diesem Manuskript beschreibt das Protokoll einen Tg(Myh6-cre)1Jmk/J /Gt(ROSA)26Sortm38(CAG-GCaMP3)Hze/J Mausstamm, der etabliert wurde, wie die ncFs, die von den neonatalen Mäusen in diesem Stamm isoliert wurden, für die Reprogrammierung auf iCMs und die Bewertung der iCMs-Funktion durch Ca2+- Fluss verwendet werden. Dies ist eine De-novo-Methode zur Bewertung der funktionellen Reifung von iCMs.
…The authors have nothing to disclose.
Wir schätzen die Bemühungen von Leo Gnatovskiy bei der Bearbeitung des englischen Textes dieses Manuskripts. Abbildung 1 wurde mit BioRender.com erstellt. Diese Studie wurde durch das Stipendium der National Institutes of Health (NIH) der Vereinigten Staaten (1R01HL109054) an Dr. Wang unterstützt.
15 mL Conical Centrifuge Tubes | Thermo Fisher Scientific | 14-959-70C | |
50mL Conical Centrifuge Tubes | Thermo Fisher Scientific | 14-959-49A | |
6 Well Cell Culture Plates | Alkali Scientific | TP9006 | |
A83-01 | Stemgent | 04–0014 | |
All-in-One Fluorescence Microscope | Keyence | BZ-X800E | Inverted fluorescence microscope |
B-27 Supplement (50X), serum free | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
Blasticidin S HCl (10 mg/mL) | Thermo Fisher Scientific | A1113903 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) DNase- and Protease-free Powder | Thermo Fisher Scientific | BP9706100 | |
CD90.2 MicroBeads, mouse | Miltenyi Biotec | 130-049-101 | Thy1.2 microbeads |
Collagenase, Type 2 | Thermo Fisher Scientific | NC9693955 | |
Counting Chamber | Thermo Fisher Scientific | 02-671-51B | Hemocytometer |
DMEM, high glucose, no glutamine | Thermo Fisher Scientific | 11960069 | |
DPBS, calcium, magnesium | Thermo Fisher Scientific | 14-040-133 | |
Ethanol, 200 proof (100%) | Thermo Fisher Scientific | 04-355-451 | |
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (Certified ACS) | Thermo Fisher Scientific | E478-500 | |
Fetal Bovine Serum | Corning | 35-010-CV | |
HBSS, calcium, magnesium, no phenol red | Thermo Fisher Scientific | 14025092 | |
IMDM media | Thermo Fisher Scientific | 12440053 | |
IX73 Inverted Microscope | Olympus | IX73P2F | Inverted fluorescence microscope |
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent | Thermo Fisher Scientific | 11-668-019 | |
LS Columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
Medium 199, Earle's Salts | Thermo Fisher Scientific | 11150059 | |
MidiMACS Separator and Starting Kits | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | |
Millex-HV Syringe Filter Unit, 0.45 µm, PVDF, 33 mm, gamma sterilized | Millipore Sigma | SLHV033RB | |
MM589 | Obtained from Dr. Shaomeng Wang’s lab in University of Michigan | ||
Opti-MEM I Reduced Serum Medium | Thermo Fisher Scientific | 31-985-070 | |
PBS, pH 7.4 | Thermo Fisher Scientific | 10-010-049 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
Platinum-E (Plat-E) Retroviral Packaging Cell Line | Cell Biolabs | RV-101 | |
pMx-puro-MGT | Addgene | 111809 | |
Poly(ethylene glycol) | Millipore Sigma | P5413-1KG | PEG8000 |
Polybrene Infection / Transfection Reagent | Millipore Sigma | TR-1003-G | |
PTC-209 | Sigma | SML1143–5MG | |
Puromycin Dihydrochloride | Thermo Fisher Scientific | A1113803 | |
Recombinant Human IGF-I | Peprotech | 100-11 | |
RPMI 1640 Medium | Thermo Fisher Scientific | 11875093 | |
ST 16 Centrifuge Series | Thermo Fisher Scientific | 75-004-381 | |
Sterile Cell Strainers | Thermo Fisher Scientific | 22-363-547 | 40 µm strainer |
Surface Treated Tissue Culture Dishes | Thermo Fisher Scientific | FB012921 | |
TE Buffer | Thermo Fisher Scientific | 12090015 | |
Trypan Blue solution | Millipore Sigma | T8154 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Thermo Fisher Scientific | 25300054 | |
Vortex Mixer | Thermo Fisher Scientific | 02215365 |