Summary

הדמיה מיטוכונדריאלית Ca2 + ספיגה אסטרוציטים ונוירונים באמצעות אינדיקטורים Ca2+ מקודדים גנטית (GECIs)

Published: January 22, 2022
doi:

Summary

פרוקטוקול זה נועד לספק שיטה במבחנה ובהדמיה של ויוו מיטוכונדריאלי Ca2+ באסטרוציטים ונוירונים.

Abstract

Mitochondrial Ca2+ ממלא תפקיד קריטי בשליטה על אגירה ציטסולית Ca2+ , חילוף חומרים של אנרגיה, טרנסדוקציה של אותות הסלולר. עומס יתר של Ca2 + מיטוכונדריאלי תורם למצבים פתולוגיים שונים, כולל ניוון עצבי ומוות תאים אפופטוטיים במחלות נוירולוגיות. כאן אנו מציגים סוג תא ספציפי ומיטוכונדריה מיקוד גישה מולקולרית עבור הדמיה מיטוכונדריאלית Ca2 + אסטרוציטים נוירונים במבחנה ו in vivo. בנינו פלסמידים DNA קידוד מיטוכונדריה מיקוד גנטית מקודדים גנטית Ca2 + אינדיקטורים (GECIs) GCaMP5G או GCaMP6s (GCaMP5G/6s) עם אסטרוציטים- נוירון ספציפיים ליזמים gfaABC1D ו- CaMKII ורצף מיקוד mitochondria (mito-). עבור הדמיה מיטוכונדריאלית במבחנה Ca2+ , הפלסמידים הועברו לאסטרוציטים ונוירונים מתורבתים כדי לבטא GCaMP5G/6s. עבור הדמיה מיטוכונדריאלית Ca2+ ב- vivo, וקטורים ויראליים הקשורים לאדנו (AAVs) הוכנו והוזרקו למוחות העכבר כדי לבטא GCaMP5G/6s במיטוכונדריה באסטרוציטים ונוירונים. הגישה שלנו מספקת אמצעי שימושי כדי לדמיין דינמיקה מיטוכונדריאלית Ca2+ אסטרוציטים נוירונים כדי ללמוד את הקשר בין איתות ציטוטוסולי ומיטוכונדריאלי Ca2 + , כמו גם אינטראקציות אסטרוציטים-נוירונים.

Introduction

המיטוכונדריה הם אברונים תת-תאיים דינמיים ונחשבים למוקדי הכוח של התא לייצור אנרגיה. מצד שני, המיטוכונדריה יכולה לקחת את Ca2+ למטריקס בתגובה מקומי או ציטוסולי Ca2 + עולה. ספיגת ספיגת Ca2+ מיטוכונדריאלית משפיעה על תפקוד מיטוכונדריאלי, כולל תהליכים מטבוליים כגון תגובות במחזור חומצה טריקרבוקסילית (TCA) וזרחן חמצוני, ומסדירה Ca2 +חלבונים רגישים בתנאים פיזיולוגיים1,2,3,4. מיטוכונדריאלי Ca2 + עומס יתר הוא גם דטרמיננטה למוות תאים, כולל נמק ואפופטוזיס בהפרעות מוחיות שונות5,6,7. זה גורם לפתיחה של נקבוביות מעבר חדורות מיטוכונדריאליות (mPTPs) ושחרור של קופקטור caspase, אשר ליזום מוות תא אפופטוטי. לכן, חשוב ללמוד דינמיקה מיטוכונדריאלית Ca2+ וטיפול בתאים חיים כדי להבין טוב יותר את הפיזיולוגיה והפתולוגיה התאית.

המיטוכונדריה שומרת על מטריצה Ca2+ הומאוסטזיס באמצעות איזון בין ספיגת Ca2+ לשפכים. ספיגת קיקיון מיטוכונדריאלי Ca2+ מיושר בעיקר על ידי uniporters מיטוכונדריאלי2 + (MCUs), בעוד Ca2 + שפכים מיטוכונדריאליים הוא בתיווך Na+-Ca2 +– Li+ מחליפים (NCLXs) ואת H+/ Ca2 + מחליפים (mHCXs)8. האיזון יכול להיות מוטרד באמצעות גירוי של קולטנים מצמידים חלבון G (GPCRs)9. מיטוכונדריאלי Ca2 + הומאוסטזיס מושפע גם על ידי אגירה מיטוכונדריאלית על ידי היווצרות של xCaמסיס 2 +-xPO4x-xOH מתחמים8.

שינויים תאיים ומיטוכונדריאליים בריכוז Ca2+ ([Ca2+]) ניתן להעריך על ידי אינדיקטורים פלורסנט או זוהר Ca2+ . Ca2+ איגוד אינדיקטורים גורם לשינויים ספקטרליים, המאפשר הקלטה של תאים חינם [Ca2+] בזמן אמת בתאים חיים. שני סוגים של בדיקות זמינים כעת לניטור שינויים Ca2+ בתאים: אינדיקטורים כימיים אורגניים ומחווני Ca2+ מקודדים גנטית (GECIs). בדרך כלל, גרסאות שונות עם זיקות שונות של Ca2+ (בהתבסס על Kd),תכונות ספקטרליות (עירור ואורכי גל פליטה), טווחים דינמיים ורגישויות זמינים לשאלות הביולוגיות הנחקרות. למרות אינדיקטורים אורגניים סינתטיים רבים Ca2 + שימשו עבור הדמיה ציטוטוסולי Ca2 + , רק כמה ניתן לטעון באופן סלקטיבי במטריצה המיטוכונדריאלית עבור הדמיה מיטוכונדריאלית Ca2 + , עם רוד-2 להיות הנפוץ ביותר (עבור ביקורות לראות10,11). עם זאת, לרוד-2 יש חיסרון גדול של דליפה במהלך ניסויים ארוכים; בנוסף, הוא מחולק בין המיטוכונדריה, אברונים אחרים ואת cytosol, מה שהופך מדידות מוחלטות subcompartments שונים קשה. לעומת זאת, באמצעות מקדמים ספציפיים מסוג תא ורצפי פילוח תאים תת-תאיים, GECIs יכולים לבוא לידי ביטוי בסוגי תאים ותאים תת-תאיים שונים להדמיית Ca2+ ספציפי לתאים ולאדר במבחנה או ב- vivo. מדדי GCaMP Ca2+ מבוססי עוצמת פלואורסצנטיות באורך גל אחד התגלו לאחרונה כמדדי GECIs גדולים12,13,14,15,16. במאמר זה, אנו מספקים פרוטוקול עבור מיטוכונדריה-פילוח וביטוי ספציפי סוג התא של GCaMP5G ו- GCaMP6s (GCaMP5G/6s) אסטרוציטים נוירונים, הדמיה ספיגת Ca2+ מיטוכונדריאלי בסוגי תאים אלה. באמצעות פרוטוקול זה, הביטוי של GCaMP6G/6s במיטוכונדריה בודדת ניתן לגלות, ו ספיגת Ca2 + ברזולוציה מיטוכונדריאלית אחת ניתן להשיג אסטרוציטים נוירונים במבחנה ו in vivo.

Protocol

נהלים הנוגעים לבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים ושימוש (IACUC) באוניברסיטת מיזורי-קולומביה. 1. בניית פלסמידים DNA הערה: עבור דימות במבחנה ובהדמיית ויוו, נבנים פלסמידים DNA המקודדים GCaMP5G/6s עם מקדמים ספציפיים לאסטרוציטים ונוי?…

Representative Results

מטרת מחקר זה הייתה לספק מתודולוגיה לדמות אותות מיטוכונדריאליים Ca2 + באמצעות GECIs באסטרוציטים ונוירונים במבחנה וב- in vivo. תוצאות של הדמיה במבחנה ו in vivo mitochondrial Ca2+ מוצגים כאן. אין ויטרו מיטוכונדריאלי Ca2+ א…

Discussion

במאמר זה, אנו מספקים שיטה ופרוטוקול להדמיה של אותות מיטוכונדריאליים Ca2+ באסטרוציטים ונוירונים. יישמנו אסטרטגיות מיטוכונדריה-פילוח וסוג תאים כדי לבטא GECI GCaMP5G/6s. כדי למקד GCaMP5G/6s במיטוכונדריה, כללנו רצף מיטוכונדריה מיקוד ב plasmids. כדי לבטא GCaMP5G/6s אסטרוציטים נוירונים ב vivo, הכנסנו מקדם ס…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המכון הלאומי לבריאות של הפרעות נוירולוגיות ושבץ (NINDS) מעניק R01NS069726 ו R01NS094539 ל- SD. אנו מודים לאריקה דמרש על הקלטת האודיו.

Materials

Artificial tears ointment Rugby NDC-0536-6550-91 83% white petrolatum
Cyanoacrylate glue World Precision Instruments 3M Vetbond Adhesive
Dissecting stereomicroscope Nikon SMZ 2B Surgery
Dumont forceps with fine tip Fine Science Tools 11255-20 for removal of dura
Glass cover slips, 0.13-0.17 mm thick Fisher Scientific 12-542A for cranial window cover
High speed micro drill Fine Science Tools 18000-17 with bone polishing drill bit
Injection syringe Hamilton 2.5 ml for viral injection
Ketamine VEDCO NDC-50989-996-06 100 mg/kg body weight
Low melting point agarose Sigma-Aldrich A9793 reducing movement artifacts
Metal frame Custom-made see Fig 1 for brain attachment to microscope stage
MicroSyringe Pump Controller World Precision Instruments UMP3 Injection speed controller
Mouse stereotaxic device Stoelting 51725 for holding mice
Perfusion chamber Warner Instruments 64-0284
Persfusion system ALA Scientific Instruments ALA-VM8
Self-regulating heating pad Fine Science Tools 21061 to prevent hypothermia of mice
Sulforhodamine 101 Invitrogen S-359 red fluorescent dye to label astrocytes
Surgical scissors, 12 cm Fine Science Tools 14002-12 for dissection
Trephine Fine Science Tools 18004-23 for clearing of material
Xylazine VEDCO NDC-50989-234-11 10 mg/kg body weight

References

  1. Griffiths, E. J., Rutter, G. A. Mitochondrial calcium as a key regulator of mitochondrial ATP production in mammalian cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Bioenergetics. 1787 (11), 1324-1333 (2009).
  2. Pizzo, P., Drago, I., Filadi, R., Pozzan, T. Mitochondrial Ca2+ homeostasis: mechanism, role, and tissue specificities. Pflugers Archiv – European Journal of Physiology. 464 (1), 3-17 (2012).
  3. Llorente-Folch, I., et al. Calcium-regulation of mitochondrial respiration maintains ATP homeostasis and requires ARALAR/AGC1-malate aspartate shuttle in intact cortical neurons. The Journal of Neuroscience. 33 (35), 13957-13971 (2013).
  4. Burkeen, J. F., Womac, A. D., Earnest, D. J., Zoran, M. J. Mitochondrial calcium signaling mediates rhythmic extracellular ATP accumulation in suprachiasmatic nucleus astrocytes. The Journal of Neuroscience. 31 (23), 8432-8440 (2011).
  5. Duchen, M. Mitochondria, calcium-dependent neuronal death and neurodegenerative disease. Pflugers Archiv – European Journal of Physiology. 464 (1), 111-121 (2012).
  6. Gouriou, Y., Demaurex, N., Bijlenga, P., De Marchi, U. Mitochondrial calcium handling during ischemia-induced cell death in neurons. Biochimie. 93 (12), 2060-2067 (2011).
  7. Qiu, J., et al. Mitochondrial calcium uniporter Mcu controls excitotoxicity and is transcriptionally repressed by neuroprotective nuclear calcium signals. Nature Communications. 4, 2034 (2013).
  8. Filadi, R., Greotti, E. The yin and yang of mitochondrial Ca2+ signaling in cell physiology and pathology. Cell Calcium. 93, 102321 (2021).
  9. Finkel, T., et al. The ins and outs of mitochondrial calcium. Circulation Research. 116 (11), 1810-1819 (2015).
  10. Paredes, R. M., Etzler, J. C., Watts, L. T., Zheng, W., Lechleiter, J. D. Chemical calcium indicators. Methods. 46 (3), 143-151 (2008).
  11. Contreras, L., Drago, I., Zampese, E., Pozzan, T. Mitochondria: The calcium connection. Biochimica et Biophysica Acta (BBA. 1797 (6-7), 607-618 (2010).
  12. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nature Methods. 6 (12), 875-881 (2009).
  13. Yamada, Y., et al. Quantitative comparison of genetically encoded Ca2+ indicators in cortical pyramidal cells and cerebellar Purkinje cells. Frontiers in Cellular Neuroscience. 5, 18 (2011).
  14. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP Calcium Indicator for Neural Activity Imaging. The Journal of Neuroscience. 32 (40), 13819-13840 (2012).
  15. Chen, T. W., et al. Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity. Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).
  16. Dana, H., et al. High-performance calcium sensors for imaging activity in neuronal populations and microcompartments. Nature Methods. 16 (7), 649-657 (2019).
  17. Rizzuto, R., Brini, M., Pizzo, P., Murgia, M., Pozzan, T. Chimeric green fluorescent protein as a tool for visualizing subcellular organelles in living cells. Current Biology: CB. 5 (6), 635-642 (1995).
  18. Xie, Y., Wang, T., Sun, G. Y., Ding, S. Specific disruption of astrocytic Ca2+ signaling pathway in vivo by adeno-associated viral transduction. 신경과학. 170 (4), 992-1003 (2010).
  19. Lee, Y., et al. GFAP promoter elements required for region-specific and astrocyte-specific expression. Glia. 56 (5), 481-493 (2008).
  20. Li, H., et al. Imaging of mitochondrial Ca2+ dynamics in astrocytes using cell-specific mitochondria-targeted GCaMP5G/6s: Mitochondrial Ca2+ uptake and cytosolic Ca2+ availability via the endoplasmic reticulum store. Cell Calcium. 56 (6), 457-466 (2014).
  21. Zhang, N., Ding, S. Imaging of mitochondrial and cytosolic Ca2+ signals in cultured astrocytes. Current Protocols in Neuroscience. 82, 1-11 (2018).
  22. Bi, J., Li, H., Ye, S. Q., Ding, S. Pre-B-cell colony-enhancing factor exerts a neuronal protection through its enzymatic activity and the reduction of mitochondrial dysfunction in in vitro ischemic models. Journal of Neurochemistry. 120 (2), 334-346 (2012).
  23. Wang, X., Li, H., Ding, S. Pre-B-cell colony-enhancing factor protects against apoptotic neuronal death and mitochondrial damage in ischemia. Scientific Reports. 6, 32416 (2016).
  24. Wang, X., et al. Subcellular NAMPT-mediated NAD+ salvage pathways and their roles in bioenergetics and neuronal protection after ischemic injury. Journal of Neurochemistry. 151 (6), 732-748 (2019).
  25. Xie, Y., Chen, S., Wu, Y., Murphy, T. H. Prolonged deficits in parvalbumin neuron stimulation-evoked network activity despite recovery of dendritic structure and excitability in the somatosensory cortex following global ischemia in mice. The Journal of Neuroscience. 34 (45), 14890-14900 (2014).
  26. Ding, S., Milner, R. . In vivo imaging of Ca2+ signaling in astrocytes using two-photon laser scanning fluorescent microscopy in Astrocytes. , 545-554 (2012).
  27. Li, H., et al. Disruption of IP3R2-mediated Ca2+ signaling pathway in astrocytes ameliorates neuronal death and brain damage while reducing behavioral deficits after focal ischemic stroke. Cell Calcium. 58 (6), 565-576 (2015).
  28. Ding, S., et al. Photothrombosis ischemia stimulates a sustained astrocytic Ca2+ signaling in vivo. Glia. 57 (7), 767-776 (2009).
  29. Ding, S., et al. Enhanced astrocytic Ca2+ signals contribute to neuronal excitotoxicity after status epilepticus. The Journal of Neuroscience. 27 (40), 10674-10684 (2007).
  30. Gobel, J., et al. Mitochondria-endoplasmic reticulum contacts in reactive astrocytes promote vascular remodeling. Cell Metabolism. 31 (4), 791-808 (2020).
  31. Diaz-Garcia, C. M., et al. The distinct roles of calcium in rapid control of neuronal glycolysis and the tricarboxylic acid cycle. eLife. 10, 64821 (2021).
check_url/kr/62917?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, N., Zhang, Z., Ozden, I., Ding, S. Imaging Mitochondrial Ca2+ Uptake in Astrocytes and Neurons using Genetically Encoded Ca2+ Indicators (GECIs). J. Vis. Exp. (179), e62917, doi:10.3791/62917 (2022).

View Video