Summary

İmmünofloresan Tahlilleri ile Hasta Kaynaklı Yumurtalık Kanseri Organoidlerinde DNA Hasar Onarım Proteinlerinin Görselleştirilmesi

Published: February 24, 2023
doi:

Summary

Bu protokol, hasta kaynaklı yumurtalık kanseri organoidlerinde DNA hasarı onarım proteinlerini değerlendirme yöntemlerini açıklamaktadır. Burada kapsamlı kaplama ve boyama yöntemlerinin yanı sıra ayrıntılı, objektif niceleme prosedürleri de bulunmaktadır.

Abstract

İmmünofloresan, proteinlerin, glikanların ve küçük moleküllerin doğru tanımlanmasına ve lokalizasyonuna olanak sağlayan, yüksek duyarlılık ve özgüllüğe sahip hedef antijenleri görselleştirmek için en yaygın kullanılan tekniklerden biridir. Bu teknik iki boyutlu (2D) hücre kültüründe iyi kurulmuş olsa da, üç boyutlu (3D) hücre modellerinde kullanımı hakkında daha az şey bilinmektedir. Yumurtalık kanseri organoidleri, tümör hücresi klonal heterojenliğini, tümör mikroçevresini ve hücre-hücre ve hücre-matris etkileşimlerini özetleyen 3D tümör modelleridir. Bu nedenle, ilaç duyarlılığının ve fonksiyonel biyobelirteçlerin değerlendirilmesinde hücre hatlarından üstündürler. Bu nedenle, primer yumurtalık kanseri organoidlerinde immünofloresan kullanma yeteneği, bu kanserin biyolojisini anlamada son derece faydalıdır. Bu çalışmada, yüksek dereceli seröz hasta kaynaklı yumurtalık kanseri organoidlerinde (PDO’lar) DNA hasarı onarım proteinlerini tespit etmek için immünofloresan tekniği açıklanmaktadır. PDO’ları iyonlaştırıcı radyasyona maruz bıraktıktan sonra, nükleer proteinleri odak olarak değerlendirmek için sağlam organoidler üzerinde immünofloresan yapılır. Görüntüler konfokal mikroskopide z-yığın görüntüleme kullanılarak toplanır ve otomatik odak sayım yazılımı kullanılarak analiz edilir. Tarif edilen yöntemler, DNA hasar onarım proteinlerinin zamansal ve özel olarak işe alınmasının analizine ve bu proteinlerin hücre döngüsü belirteçleri ile kolokalizasyonuna izin verir.

Introduction

Yumurtalık kanseri jinekolojik maligniteye bağlı ölümlerin önde gelen nedenidir. Hastaların çoğunluğu karboplatin gibi DNA’ya zarar veren ilaçlarla tedavi edilir ve homolog rekombinasyon onarımı (HRR) eksikliği olan tümörleri olanlara poli (ADP-riboz) polimeraz (PARP) inhibitörleriverilebilir 1,2. Bununla birlikte, çoğu hasta bu tedavilere direnç geliştirir ve tanıdan sonraki 5 yıl içinde ölür. DNA hasar yanıtının (DDR) düzensizliği, yumurtalık kanseri gelişimi ve hem kemoterapi hem de PARP inhibitörü direnci ile ilişkilendirilmiştir3. Bu nedenle, DDR’nin incelenmesi, yumurtalık kanserinin patofizyolojisini, potansiyel biyobelirteçleri ve yeni hedefe yönelik tedavileri anlamada zorunludur.

DDR’yi değerlendirmek için mevcut yöntemler, DNA hasar proteinlerinin ve nükleotid analoglarının doğru tanımlanmasına ve lokalizasyonuna izin verdiği için immünofloresan (IF) kullanır. DNA’da çift sarmallı bir kırılma (DSB) olduğunda, histon proteini H2AX hızla fosforile edilir ve DNA hasarı onarım proteinlerinin4’ü bir araya getirdiği bir odak oluşturur. Bu fosforilasyon, IF kullanılarak kolayca tanımlanabilir; Aslında, ɣ-H2AX testi, bir DSB 5,6,7,8,9’un indüksiyonunu doğrulamak için yaygın olarak kullanılmıştır. Artmış DNA hasarı, DNA’ya zarar veren ajanların platin duyarlılığı ve etkinliği ile ilişkilendirilmiştir 10,11,12 ve ɣ-H2AX, diğer kanser tedavilerinde kemoterapi yanıtı ile ilişkili bir biyobelirteç olarak önerilmiştir13. Bir DSB üzerine, HRR’de yetkin bir hücre, BRCA1 ve BRCA2’nin replikasyon proteini A’nın (RPA) yerini alması ve DNA’ya bağlanması için RAD51’i işe almasına yol açan bir dizi olay gerçekleştirir. HRR onarımı, DSB’yi sadık bir şekilde onarmak için bir DNA şablonu kullanır. Bununla birlikte, tümörler HRR’de eksik olduğunda, homolog olmayan uç birleştirme (NHEJ) gibi alternatif onarım yollarına güvenirler. NHEJ’nin hataya eğilimli olduğu bilinmektedir ve hücre üzerinde yüksek mutasyonel bir yük oluşturur, bu da 53BP1’i pozitif bir düzenleyici14 olarak kullanır. Bu DNA hasarı proteinlerinin hepsi IF kullanılarak odaklar olarak doğru bir şekilde tanımlanabilir. Proteinler için boyamaya ek olarak, IF çatal korumasını ve tek sarmallı DNA boşluğu oluşumunu incelemek için kullanılabilir. Stabil çatallara sahip olma yeteneği platin yanıtı ile ilişkilendirilmiştir ve son zamanlarda, boşluk testleri PARP inhibitörlerine 6,15,16,17 yanıtını tahmin etme potansiyelini göstermiştir. Bu nedenle, genoma girdikten sonra nükleotid analogları için boyama, DDR’yi incelemenin başka bir yoludur.

Bugüne kadar, yumurtalık kanserinde DDR’nin değerlendirilmesi büyük ölçüde klonal heterojenliği, mikroçevreyi veya in vivo tümörlerin mimarisini özetlemeyen homojen 2D hücre hatları ile sınırlandırılmıştır18,19. Son zamanlarda yapılan araştırmalar, organoidlerin DDRmekanizmaları 6 gibi karmaşık biyolojik süreçleri incelemede 2D hücre hatlarından daha üstün olduğunu göstermektedir. Mevcut metodoloji PDO’larda RAD51, ɣ-H2AX, 53BP1, RPA ve geminin’i değerlendirmektedir. Bu yöntemler bozulmamış organoidi değerlendirir ve DDR mekanizmalarının in vivo tümör mikroçevresine daha benzer bir ortamda incelenmesine izin verir. Konfokal mikroskopi ve otomatik odak sayımı ile birlikte, bu metodoloji yumurtalık kanserinde DDR yolunun anlaşılmasına ve hastalar için tedavi planlarının kişiselleştirilmesine yardımcı olabilir.

Protocol

Tümör dokusu ve asit, St. Louis Kurumsal İnceleme Kurulu’ndaki (IRB) Washington Üniversitesi tarafından onaylanan jinekolojik onkoloji biyodeposunun bir parçası olarak hasta onayı alındıktan sonra elde edildi. İleri evre yüksek dereceli seröz over kanseri (HGSOC) olan hastalar dahil edildi. Tüm prosedürler aksi belirtilmedikçe tezgahta oda sıcaklığında gerçekleştirilmiştir. Tüm reaktifler oda sıcaklığında (aksi belirtilmedikçe) hazırlandı ve 4 ° C’de saklandı. <s…

Representative Results

Sunulan protokol, organoidlerdeki nükleer DNA hasar onarım proteinlerini başarılı bir şekilde boyayabilir, görselleştirebilir ve ölçebilir. Bu teknik, ışınlamadan önce ve sonra PDO’ları boyamak ve değerlendirmek için kullanıldı. PDO’lar 10 Gy radyasyona maruz bırakıldı ve aşağıdaki biyobelirteçler için değerlendirildi: ɣ-H2AX (Şekil 1), DNA hasarının bir belirteci; HRR için bir belirteç olan RAD51 (Şekil 2); 53BP1, NHEJ’nin bir…

Discussion

DNA hasarı yanıtı hem yumurtalık kanseri gelişiminde hem de kemoterapi direncinde ayrılmaz bir rol oynar. Bu nedenle, DNA onarım mekanizmalarının tam olarak anlaşılması zorunludur. Burada, DNA hasarı onarım proteinlerini 3D, bozulmamış organoidlerde incelemek için bir metodoloji sunulmaktadır. DNA hasarını, homolog rekombinasyonu, homolog olmayan uç birleştirmeyi ve replikasyon stresini değerlendirmek için ayırt edici antikorlar kullanılarak tekrarlanabilir, güvenilir bir protokol geliştirilmi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu protokolün oluşturulmasında Pavel Lobachevsky, PhD’nin rehberliği için minnettarız. Ayrıca, St. Louis’in Kadın Hastalıkları ve Doğum Bölümü ve Jinekolojik Onkoloji Bölümü’ndeki Washington Üniversitesi Tıp Fakültesi’ne, Washington Üniversitesi Dekan’ın Akademik Programına, Jinekolojik Onkoloji Grubu Vakfı’na ve Üreme Bilim İnsanı Geliştirme Programı’na bu projeye verdikleri destek için teşekkür ederiz.

Materials

1x phosphate buffered saline with calcium and magnesium (PBS++) Sigma 14-040-133
1x phosphate buffered saline without calcium and magnesium (PBS) Fisher Scientific  ICN1860454
Ant-53BP1 Antibody  BD Biosciences 612522 diluted to 1:500 in staining buffer
Ant-Geminin Antibody  Abcam ab104306 diluted to 1:200 in staining buffer
Anti-Geminin Antibody  ProteinTech 10802-1-AP diluted to 1:400 in staining buffer
Anti-RAD51 Antibody  Abcam ab133534 diluted to 1:1000 in staining buffer
Anti-yH2AX Antibody  Millipore-Sigma 05-636 diluted to 1:500 in staining buffer
Ant-phospho-RPA32 (S4/S8) Antibody Bethyl Laboratories  A300-245A-M diluted to 1:200 in staining buffer
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific  BP1605 100
Centrifuge; Sorvall St 16R Centrifuge Thermo Scientific  75004240
Confocal Microscope, Leica SP5 confocal system DMI4000 Leica  389584
Conical Tubes, 15 mL Corning  14-959-53A
Countess 3 FL Automated Cell Counter (Cell Counting Machine)  Thermo Scientific  AMQAF2000
Countess Cell Counting Chamber Slides Thermo Scientific  C10228
Cover Slip LA Colors Any clear nail polish will suffice
Cultrex RGF Basement Membrane Extract, Type 2  R&D Systems  3533-010-02 Could probably use Matrigel or other BME Matrix 
DAPI  Thermo Scientific   R37606 NucBlue Fixed Cell ReadyProbes Reagent, Diluted in 1x PBS 
Glycine  Fisher Scientific  NC0756056
JCountPro JCountPro For access to the software, Email: jcountpro@gmail.com 
Microcentrifuge Tubes  Fisher Scientific  07-000-243
Nail Polish  StatLab SL102450
Parafomraldehyde (PFA), 2%  Electron Microscopy Sciences  157-4 Dilute to 4% PFA in PBS++ to obtain 2% PFA
Permeabilization Buffer Made in Lab 0.2% X-100 Triton in PBS++ 
Pipette Rainin 17014382
Pipette Tips  Rainin  17014967
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo Scientific   P36930
Staining Buffer  Made in Lab 0.5% BSA, 0.15% Glycine, 0.1% X-100 Triton in PBS++ 
Thermo Scientific Nunc Lab-Tek II Chamber Slide System  Thermo Scientific  12-565-8
Triton X-100 Sigma-Alderich  11332481001
Trypan Blue Solution, 0.4% Thermo Scientific  15250061
TrypLE Express Invitrogen 12604013 animal origin-free, recombinant enzyme
X-RAD 320 Biological Irradiator  Precision X-Ray Irradiation  X-RAD320

References

  1. Lheureux, S., Gourley, C., Vergote, I., Oza, A. M. Epithelial ovarian cancer. Lancet Oncology. 393 (10177), 1240-1253 (2019).
  2. Tew, W. P., et al. PARP inhibitors in the management of ovarian cancer: ASCO guideline. Journal of Clinical Oncology. 38 (30), 3468-3493 (2020).
  3. Tomasova, K., et al. DNA repair and ovarian carcinogenesis: impact on risk, prognosis and therapy outcome. Cancers. 12 (7), 1713 (2020).
  4. Mukhopadhyay, A., et al. Development of a functional assay for homologous recombination status in primary cultures of epithelial ovarian tumor and correlation with sensitivity to poly(ADP-Ribose) polymerase inhibitors. Clinical Cancer Research. 16 (8), 2344-2351 (2010).
  5. Graeser, M., et al. A marker of homologous recombination predicts pathologic complete response to neoadjuvant chemotherapy in primary breast cancer. Clinical Cancer Research. 16 (24), 6159-6168 (2010).
  6. Hill, S. J., et al. Prediction of DNA repair inhibitor response in short-term patient-derived ovarian cancer organoids. Cancer Discovery. 8 (11), 1404-1421 (2018).
  7. Naipal, K. A. T., et al. Functional ex vivo assay to select homologous recombination-deficient breast tumors for PARP inhibitor treatment. Clinical Cancer Research. 20 (18), 4816-4826 (2014).
  8. Tumiati, M., et al. A functional homologous recombination assay predicts primary chemotherapy response and long-term survival in ovarian cancer patients. Clinical Cancer Research. 24 (18), 4482-4493 (2018).
  9. Mukhopadhyay, A., et al. Clinicopathological features of homologous recombination-deficient epithelial ovarian cancers: sensitivity to PARP inhibitors, platinum, and survival. 암 연구학. 72 (22), 5675-5682 (2012).
  10. Johnson, S. W., Laub, P. B., Beesley, J. S., Ozols, R. F., Hamilton, T. C. Increased platinum-DNA damage tolerance is associated with cisplatin resistance and cross-resistance to various chemotherapeutic agents in unrelated human ovarian cancer cell lines. 암 연구학. 57 (5), 850-856 (1997).
  11. Stefanou, D. T., et al. Aberrant DNA damage response pathways may predict the outcome of platinum chemotherapy in ovarian cancer. PLoS One. 10 (2), 0117654 (2015).
  12. Helleday, T., Petermann, E., Lundin, C., Hodgson, B., Sharma, R. A. DNA repair pathways as targets for cancer therapy. Nature Reviews Cancer. 8 (3), 193-204 (2008).
  13. Ivashkevich, A., Redon, C. E., Nakamura, A. J., Martin, R. F., Martin, O. A. Use of the γ-H2AX assay to monitor DNA damage and repair in translational cancer research. Cancer Letters. 327 (1-2), 123-133 (2012).
  14. Fuh, K., et al. Homologous recombination deficiency real-time clinical assays, ready or not. Gynecologic Oncology. 159 (3), 877-886 (2020).
  15. Cong, K., et al. Replication gaps are a key determinant of PARP inhibitor synthetic lethality with BRCA deficiency. Molecular Cell. 81 (15), 3128-3144 (2021).
  16. Lee, E. K., Matulonis, U. A. PARP inhibitor resistance mechanisms and implications for post-progression combination therapies. Cancers. 12 (8), 2054 (2020).
  17. Panzarino, N. J., et al. Replication gaps underlie BRCA deficiency and therapy response. 암 연구학. 81 (5), 1388-1397 (2021).
  18. Yee, C., Dickson, K. A., Muntasir, M. N., Ma, Y., Marsh, D. J. Three-dimensional modelling of ovarian cancer: from cell lines to organoids for discovery and personalized medicine. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 10, 836984 (2022).
  19. Regan, J. L. Immunofluorescence staining of colorectal cancer patient-derived organoids. Methods Cell Biology. 171, 163-171 (2022).
  20. Graham, O., et al. Generation and culturing of high-grade serous ovarian cancer patient derived organoids. Journal of Visualized Experiments. (191), (2023).
  21. Jakl, L., et al. Validation of JCountPro software for efficient assessment of ionizing radiation-induced foci in human lymphocytes. International Journal of Radiation Biology. 92 (12), 766-773 (2016).
  22. Mullen, M. M., et al. GAS6/AXL inhibition enhances ovarian cancer sensitivity to chemotherapy and PARP inhibition through increased DNA damage and enhanced replication stress. Molecular Cancer Research. 20 (2), 265-279 (2022).
  23. van Ineveld, R. L., Ariese, H. C. R., Wehrens, E. J., Dekkers, J. F., Rios, A. C. Single-cell resolution three-dimensional imaging of intact organoids. Journal of Visualized Experiments. (160), e60709 (2020).
  24. Dekkers, J. F., et al. High-resolution 3D imaging of fixed and cleared organoids. Nature Protocols. 14 (6), 1756-1771 (2019).
  25. O’Rourke, K. P., Dow, L. E., Lowe, S. W. Immunofluorescent staining of mouse intestinal stem cells. Bio Protocols. 6 (4), 1732 (2016).
  26. Nwani, N. G., Sima, L. E., Nieves-Neira, W., Matei, D. Targeting the microenvironment in high grade serous ovarian cancer. Cancers. 10 (8), 266 (2018).
  27. Ghoneum, A., et al. Exploring the clinical value of tumor microenvironment in platinum-resistant ovarian cancer. Seminars in Cancer Biology. 77, 83-98 (2021).
  28. Yang, Y., Yang, Y., Yang, J., Zhao, X., Wei, X. Tumor microenvironment in ovarian cancer: function and therapeutic strategy. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 758 (2020).
  29. van de Wetering, M., et al. Prospective derivation of a living organoid biobank of colorectal cancer patients. Cell. 161 (4), 933-945 (2015).
  30. Broutier, L., et al. Human primary liver cancer-derived organoid cultures for disease modeling and drug screening. Nature Medicine. 23 (12), 1424-1435 (2017).
  31. Drost, J., Clevers, H. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18 (7), 407-418 (2018).
  32. Cybulla, E., Vindigni, A. Leveraging the replication stress response to optimize cancer therapy. Nature Reviews. , (2022).
check_url/kr/64881?article_type=t

Play Video

Cite This Article
van Biljon, L., Fashemi, B., Rodriguez, J., Graham, O., Compadre, A., Fuh, K., Khabele, D., Mullen, M. Visualizing DNA Damage Repair Proteins in Patient-Derived Ovarian Cancer Organoids via Immunofluorescence Assays. J. Vis. Exp. (192), e64881, doi:10.3791/64881 (2023).

View Video