Summary

Protezione delle cellule miocardiche H9c2 dallo stress ossidativo mediante Crocetina tramite la mitofagia mediata dalla via PINK1/Parkin

Published: May 26, 2023
doi:

Summary

Sulla base di esperimenti in vitro , questo studio ha rivelato il meccanismo della crocetina nel riparare il danno da stress ossidativo dei cardiomiociti influenzando la mitofagia, in cui la via di segnalazione PINK1 / Parkin svolge un ruolo importante.

Abstract

Questo studio mirava a esplorare l’effetto protettivo dello stress ossidativo della crocetina sulle cellule miocardiche H9c2 mediate da H 2 O2attraverso esperimenti in vitro e ad esplorare ulteriormente se il suo meccanismo è correlato all’impatto della mitofagia. Questo studio mirava anche a dimostrare l’effetto terapeutico dell’acido di cartamo sullo stress ossidativo nei cardiomiociti ed esplorare se il suo meccanismo è correlato all’effetto della mitofagia. Qui, è stato costruito un modello di stress ossidativo basato su H 2 O2e valutato il grado di danno da stress ossidativo dei cardiomiociti rilevando i livelli di lattato deidrogenasi (LDH), creatina chinasi (CK), malondialdeide (MDA), superossido dismutasi (SOD), catalasi (CAT) e glutatione perossidasi (GSH Px). Il colorante fluorescente DCFH-DA (delle specie reattive dell’ossigeno (ROS), il colorante JC-1 e il colorante TUNEL sono stati impiegati per valutare il danno mitocondriale e l’apoptosi. Il flusso autofagico è stato misurato trasfettando l’adenovirus Ad-mCherry-GFP-LC3B. Le proteine correlate alla mitofagia sono state quindi rilevate tramite western blotting e immunofluorescenza. Tuttavia, la crocetina (0,1-10 μM) potrebbe migliorare significativamente la vitalità cellulare e ridurre l’apoptosi e il danno da stress ossidativo causato da H 2 O2. Nelle cellule con eccessiva attivazione autofagica, la crocetina potrebbe anche ridurre il flusso autofagico e l’espressione delle proteine correlate alla mitofagia PINK1 e Parkin, e invertire il trasferimento di Parkin ai mitocondri. La crocetina potrebbe ridurre il danno da stress ossidativo mediato da H 2 O2e l’apoptosi delle cellule H9c2, e il suo meccanismo era strettamente correlato alla mitofagia.

Introduction

L’infarto miocardico acuto (IMA) è una necrosi miocardica pericolosa per la vita causata da ischemia grave e persistente e ipossia alle arterie coronarie 1,2. L’intervento coronarico percutaneo (PCI) è una delle strategie terapeutiche di prima linea per l’IMA e di solito protegge i cardiomiociti dal danno ischemico 3,4. Il miocardio distale mancherà di apporto di sangue e ossigeno se non trattato tempestivamente ed efficacemente dopo AMI, che porta a necrosi ischemica e ulteriori complicanze cardiovascolari 5,6. Promuovere il recupero dei cardiomiociti e ridurre al minimo il danno miocardico irreversibile dopo aver perso l’opportunità chirurgica PCI è stato un hotspot di ricerca. Dopo l’IMA, i cardiomiociti sono in uno stato di ischemia e ipossia, con conseguente inibizione della fosforilazione ossidativa mitocondriale, riduzione di NAD+ a NADPH e aumento della riduzione di singoli elettroni7. Di conseguenza, la reazione di riduzione incompleta dell’ossigeno genera un eccesso di specie reattive dell’ossigeno (ROS) e alla fine porta a danni da stress ossidativo ai cardiomiociti8. Un eccessivo accumulo di ROS innesca la perossidazione lipidica, interrompendo ulteriormente la struttura e la funzione delle membrane mitocondriali. Il risultato è un’apertura continua dei pori di transizione della permeabilità mitocondriale e una diminuzione del potenziale della membrana mitocondriale, inducendo apoptosi e necrosi.

Gli inibitori dell’enzima di conversione dell’angiotensina (ACE), i bloccanti del recettore dell’angiotensina (ARB), gli inibitori dei β-adrenocettori, gli antagonisti dell’aldosterone e altri farmaci standard nell’AMI possono aiutare a migliorare la funzione cardiaca dopo infarto miocardico e prevenire il verificarsi di eventi maligni, come aritmie e rimodellamento ventricolare sinistro9. Tuttavia, la sopravvivenza post-infarto e la prognosi sono fortemente influenzate dalle dimensioni dell’infarto e non sono stati raggiunti risultati soddisfacenti per ridurre l’apoptosi dei cardiomiociti10,11. Pertanto, lo sviluppo di farmaci per promuovere il recupero dei cardiomiociti dopo l’infarto miocardico è diventato un problema urgente.

La medicina tradizionale è stata fonte di ispirazione per la moderna ricerca farmaceutica per molti anni12,13,14,15. La medicina tradizionale cinese (MTC) ha una lunga storia nel trattamento dell’IMA e una serie di studi randomizzati di controllo negli ultimi anni hanno confermato che la MTC può effettivamente migliorare la prognosi dei pazienti16,17. Secondo la teoria TCM, l’AMI è causata dalla stasi del sangue18,19, quindi i farmaci per promuovere la circolazione sanguigna sono solitamente utilizzati per il trattamento dell’AMI nella fase acuta20. Tra questi, si ritiene che lo zafferano abbia un potente effetto sull’attivazione e sulla stasi del sangue ed è spesso usato nel trattamento acuto dell’AMI. La crocetina, un componente importante dello zafferano, può svolgere un ruolo chiave nella protezione dei cardiomiociti21.

In questo studio, le cellule miocardiche H9c2 sono state indotteda H 2 O2 per simulare l’ischemia/riperfusione miocardica, che causa una lesione cardiomiocitaria di AMI, e la crocetina è stata utilizzata come intervento per studiare il suo effetto protettivo contro il danno miocardico indotto da stress ossidativo. Il meccanismo della crocetina che protegge i cardiomiociti è stato ulteriormente esplorato attraverso la mitofagia. Ancora più importante, questo articolo fornisce un riferimento per l’approccio tecnico allo studio della mitofagia e descrive l’intera procedura sperimentale in dettaglio.

Protocol

Gli esperimenti sono stati eseguiti nel Laboratorio di Fisiologia presso l’Università di Medicina Cinese di Pechino, in Cina. Tutti i metodi di studio sono stati eseguiti in conformità con le linee guida e i regolamenti pertinenti dell’Università di Pechino. 1. Coltura cellulare Aggiungere il 10% di siero bovino fetale e l’1% di penicillina/streptomicina al terreno di base modificato Eagle medium (DMEM) di Dulbecco (con 4,5 g/L di D-glucosio, 4,g.g/L di L-glutammi…

Representative Results

Effetti della crocetina sulla vitalità cellulareLa crocetina a 0,1 μM, 0,5 μM, 1 μM, 5 μM, 10 μM, 50 μM e 100 μM ha avuto un significativo effetto proliferativo sulle cellule, mentre la crocetina a concentrazioni superiori a 200 μM ha inibito significativamente la proliferazione delle cellule H9c2 (Figura 1A). Dopo 4 ore di trattamento con 400 μM H 2 O2, la vitalità cellulare è stata ridotta considerevolmente e la crocetina ha potuto inv…

Discussion

L’esplorazione di ingredienti efficaci da composti complessi di droghe naturali attraverso tecnologie avanzate è stata un punto focale della ricerca TCM29 e può fornire prove di laboratorio per il futuro sviluppo di farmaci dopo la verifica. Il cartamo è un farmaco rappresentativo nel trattamento di “promuovere la circolazione sanguigna e ridurre al minimo la stasi del sangue” ed è ampiamente usato nel trattamento dell’infarto miocardico30,31<sup class="xref"…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo studio è stato sostenuto dalla Beijing Natural Science Foundation (n. 7202119) e dalla National Natural Science Foundation of China (n. 82274380).

Materials

0.25% trypsin Gibco 2323363
1% Penicillin-streptomycin Sigma V900929
5x protein loading buffer Beijing Pulilai Gene Technology B1030-5
Ad-mCherry GFP-LC3B adenovirus Beyotime C3011
Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L)  Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd. ZF-0514
Alexa Fluor 594-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd. ZF-0513
Animal-free blocking solution CST 15019s
Anti-Parkin antibody Santa Cruz sc-32282
Anti-PINK1 antibody ABclonal A11435
Anti-TOM20 antibody ABclonal A19403
Anti-β-actin  antibody ABclonal AC026
BCA protein assay kit KeyGEN Biotech KGP902
Blood cell counting plate Servicebio WG607
CAT assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A007-1-1
Chemiluminescence detection system Shanghai Qinxiang Scientific Instrument Factory ChemiScope 6100
CK assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A032-1-1
Coenzyme Q10 (CoQ 10) Macklin C6129
Crocetin Chengdu Ruifensi Biotechnology Co., Ltd. RFS-Z01802006012
DAPI-containing antifluorescence quenching tablets Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd. ZLI-9557
DCFH-DA Beyotime S0033S
DMSO Solarbio D8371
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Gibco 8122091
Enhanced Chemiluminescence (ECL) solution NCM Biotech P10100
Fetal bovine serum (FBS) Corning-Cellgro 35-081-CV
GraphPad Prism 7.0  https://www.graphpad.com/
GSH-Px assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A005-1-2
H9c2 myocardial cells Beijing Dingguochangsheng Biotech Co., Ltd. CS0062
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugated goat anti-goat IgG (H+L)  Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd. ZB-2305
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L)  Zhongshan Golden Bridge Biotechnology Co., Ltd. ZB-2301
JC-1 mitochondrial membrane potential assay kit LABLEAD J22202
LDH assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A020-2-2
MDA assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A003-2-2
Methanol Aladdin A2114057
MTS assay Promega G3581
Perhydrol G-clone CS7730
Phosphatase inhibitor CWBIO CW2383
Polybrene Beyotime C0351
Polyvinylidene difluoride (PVDF) membranes Millipore ISEQ00010
Radioimmunoprecipitation assay (RIPA) lysis buffer Solarbio R0010
SDS-PAGE gels Shanghai Epizyme Biomedical Technology PG112
SDS-PAGE running buffer powder Servicebio G2018-1L
SDS-PAGE transfer buffer powder Servicebio G2017-1L
SOD assay kits Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute A001-2-2
Tris-buffered saline powder Servicebio G0001-2L
Triton X-100 Sigma SLCC9172
TUNEL apoptosis assay kit Beyotime C1086
Tween-20 Solarbio T8220

References

  1. Anderson, J. L., Morrow, D. A. Acute myocardial infarction. The New England Journal of Medicine. 376 (21), 2053-2064 (2017).
  2. Samsky, M. D., et al. Cardiogenic shock after acute myocardial infarction: a review. JAMA. 326 (18), 1840-1850 (2021).
  3. Abbate, A., et al. Survival and cardiac remodeling benefits in patients undergoing late percutaneous coronary intervention of the infarct-related artery: evidence from a meta-analysis of randomized controlled trials. Journal of the American College of Cardiology. 51 (9), 956-964 (2008).
  4. Santoro, G. M., Carrabba, N., Migliorini, A., Parodi, G., Valenti, R. Acute heart failure in patients with acute myocardial infarction treated with primary percutaneous coronary intervention. European Journal of Heart Failure. 10 (8), 780-785 (2008).
  5. Dhruva, S. S., et al. Association of use of an intravascular microaxial left ventricular assist device vs intra-aortic balloon pump with in-hospital mortality and major bleeding among patients with acute myocardial infarction complicated by cardiogenic shock. JAMA. 323 (8), 734-745 (2020).
  6. Wang, Y., et al. Risk factors associated with major cardiovascular events 1 year after acute myocardial infarction. JAMA Network Open. 1 (4), e181079 (2018).
  7. Jou, M. J., et al. Melatonin protects against common deletion of mitochondrial DNA-augmented mitochondrial oxidative stress and apoptosis. Journal of Pineal Research. 43 (4), 389-403 (2007).
  8. La Piana, G., Fransvea, E., Marzulli, D., Lofrumento, N. E. Mitochondrial membrane potential supported by exogenous cytochrome c oxidation mimics the early stages of apoptosis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 246 (2), 556-561 (1998).
  9. De Filippo, O., et al. Impact of secondary prevention medical therapies on outcomes of patients suffering from Myocardial Infarction with NonObstructive Coronary Artery disease (MINOCA): A meta-analysis. International Journal of Cardiology. 368, 1-9 (2022).
  10. Davidson, S. M., et al. Multitarget strategies to reduce myocardial ischemia/reperfusion injury: JACC review topic of the week. Journal of the American College of Cardiology. 73 (1), 89-99 (2019).
  11. Caricati-Neto, A., Errante, P. R., Menezes-Rodrigues, F. S. Recent advances in pharmacological and non-pharmacological strategies of cardioprotection. International Journal of Molecular Sciences. 20 (16), 4002 (2019).
  12. Chen, G. Y., et al. Network pharmacology analysis and experimental validation to investigate the mechanism of total flavonoids of rhizoma drynariae in treating rheumatoid arthritis. Drug Design, Development, and Therapy. 16, 1743-1766 (2022).
  13. Wei, Z., et al. Traditional Chinese medicine has great potential as candidate drugs for lung cancer: A review. Journal of Ethnopharmacology. 300, 115748 (2023).
  14. Zhi, W., Liu, Y., Wang, X., Zhang, H. Recent advances of traditional Chinese medicine for the prevention and treatment of atherosclerosis. Journal of Ethnopharmacology. 301, 115749 (2023).
  15. Liu, M., et al. Hypertensive heart disease and myocardial fibrosis: How traditional Chinese medicine can help addressing unmet therapeutical needs. Pharmacological Research. 185, 106515 (2022).
  16. Zhang, X. X., et al. Traditional Chinese medicine intervenes ventricular remodeling following acute myocardial infarction: evidence from 40 random controlled trials with 3,659 subjects. Frontiers in Pharmacology. 12, 707394 (2021).
  17. Hao, P., et al. Traditional Chinese medicine for cardiovascular disease: evidence and potential mechanisms. Journal of the American College of Cardiology. 69 (24), 2952-2966 (2017).
  18. Delgado-Montero, A., et al. Blood stasis imaging predicts cerebral microembolism during acute myocardial infarction. Journal of the American Society of Echocardiography. 33 (3), 389-398 (2020).
  19. Lu, C. Y., Lu, P. C., Chen, P. C. Utilization trends in traditional Chinese medicine for acute myocardial infarction. Journal of Ethnopharmacology. 241, 112010 (2019).
  20. Gao, Z. Y., Xu, H., Shi, D. Z., Wen, C., Liu, B. Y. Analysis on outcome of 5284 patients with coronary artery disease: the role of integrative medicine. Journal of Ethnopharmacology. 141 (2), 578-583 (2012).
  21. Huang, Z., et al. Crocetin ester improves myocardial ischemia via Rho/ROCK/NF-kappaB pathway. International Immunopharmacology. 38, 186-193 (2016).
  22. Green, M. R., Sambrook, J. Estimation of cell number by hemocytometry counting. Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (11), (2019).
  23. Zeng, Q., et al. Assessing the potential value and mechanism of Kaji-Ichigoside F1 on arsenite-induced skin cell senescence. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022, 9574473 (2022).
  24. Chazotte, B. Labeling mitochondria with JC-1. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (9), (2011).
  25. Kyrylkova, K., Kyryachenko, S., Leid, M., Kioussi, C. Detection of apoptosis by TUNEL assay. Methods in Molecular Biology. 887, 41-47 (2012).
  26. Yuan, Y., et al. Palmitate impairs the autophagic flux to induce p62-dependent apoptosis through the upregulation of CYLD in NRCMs. Toxicology. 465, 153032 (2022).
  27. Kurien, B. T., Scofield, R. H. Western blotting. Methods. 38 (4), 283-293 (2006).
  28. Chen, G. Y., et al. Total flavonoids of rhizoma drynariae restore the MMP/TIMP balance in models of osteoarthritis by inhibiting the activation of the NF-κB and PI3K/AKT pathways. Evidence-Based Complementary and Alternative. 2021, 6634837 (2021).
  29. Amin, A., Hamza, A. A., Bajbouj, K., Ashraf, S. S., Daoud, S. Saffron: a potential candidate for a novel anticancer drug against hepatocellular carcinoma. Hepatology. 54 (3), 857-867 (2011).
  30. Kamalipour, M., Akhondzadeh, S. Cardiovascular effects of saffron: an evidence-based review. The Journal of Tehran Heart Center. 6 (2), 59-61 (2011).
  31. Mani, V., Lee, S. K., Yeo, Y., Hahn, B. S. A metabolic perspective and opportunities in pharmacologically important safflower. Metabolites. 10 (6), 253 (2020).
  32. Broadhead, G. K., Chang, A., Grigg, J., McCluskey, P. Efficacy and safety of saffron supplementation: current clinical findings. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 56 (16), 2767-2776 (2016).
  33. Gao, H., et al. Insight into the protective effect of salidroside against H2O2-induced injury in H9C2 cells. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021, 1060271 (2021).
  34. Chen, G. Y., et al. Prediction of rhizoma drynariae targets in the treatment of osteoarthritis based on network pharmacology and experimental verification. Evidence-Based Complementary and Alternative. 2021, 5233462 (2021).
  35. Reers, M., et al. Mitochondrial membrane potential monitored by JC-1 dye. Methods in Enzymology. 260, 406-417 (1995).
  36. Radovits, T., et al. Poly(ADP-ribose) polymerase inhibition improves endothelial dysfunction induced by reactive oxidant hydrogen peroxide in vitro. European Journal of Pharmacology. 564 (1-3), 158-166 (2007).
  37. Song, M., et al. Interdependence of parkin-mediated mitophagy and mitochondrial fission in adult mouse hearts. Circulation Research. 117 (4), 346-351 (2015).
  38. Gan, Z. Y., et al. Activation mechanism of PINK1. Nature. 602 (7896), 328-335 (2022).
  39. Nguyen, T. N., Padman, B. S., Lazarou, M. Deciphering the molecular signals of PINK1/Parkin mitophagy. Trends in Cell Biology. 26 (10), 733-744 (2016).
  40. Yamada, T., Dawson, T. M., Yanagawa, T., Iijima, M., Sesaki, H. SQSTM1/p62 promotes mitochondrial ubiquitination independently of PINK1 and PRKN/parkin in mitophagy. Autophagy. 15 (11), 2012-2018 (2019).
  41. Klionsky, D. J., et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (4th edition). Autophagy. 17 (1), 1 (2021).
check_url/kr/65105?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chen, J., Li, Y., Zhang, Y., Du, T., Lu, Y., Li, X., Guo, S. Protection of H9c2 Myocardial Cells from Oxidative Stress by Crocetin via PINK1/Parkin Pathway-Mediated Mitophagy. J. Vis. Exp. (195), e65105, doi:10.3791/65105 (2023).

View Video