Summary

De FAE au Matrigel 2: Fractionnement des CSEh MEFs sur Matrigel

Published: June 09, 2008
doi:

Summary

Cette vidéo montre comment maintenir la croissance de cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) dans le chargeur sans cellules conditions et la manière de CSEh passage en continu dans le chargeur sans cellules conditions. Confirmation de CSEh pluripotence grandi dans le chargeur sans cellules par microscopie d'immunofluorescence conditions est également démontrée.

Abstract

Cette vidéo montre comment faire pousser des cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) sur fibroblastes de souris embryonnaires (MEF) cellules nourricières, comment CSEh passage de plaques MEF pour chargeur de pile plaques sans Matrigel.

Protocol

l'entretien de la culture quotidienne de CSEh milieux de culture des CSEh doivent être changés toutes les 24 heures. De la bouteille ES stock de médias stockés à 4 ° C, sortir la quantité de solution nécessaire (~ 20ml par 6-même plaque), placer dans un tube de 50ml Falcon, et chaud à 37 ° C dans un bain d'eau. Une fois que le média est réchauffé, ajouter le bFGF conservés à 4 ° C à une concentration finale de 10ng/ml. Mettez le stock bFGF revenir à 4 ° C immédiatement après usag…

Discussion

Cette vidéo montre comment les CSEh passage de plaques MEF pour les plaques d'alimentation Matrigel sans cellule. Notez que la densité des colonies sur Matrigel est plus élevée que la densité des colonies par fractionnement d'habitude sur le FAE. Immunofluorescence et cytométrie de flux pour microscopie ou marqueurs de pluripotence des CSEh, tels que Oct-4, SSEA-4, sont nécessaires pour confirmer l'entretien des CSEh dans un état indifférencié dans les conditions de culture nourricier libre.

Acknowledgements

Embryonnaires humaines études de cellules souches dans le laboratoire Teitell sont soutenus par un California Institute for Regenerative Medicine (CIRM) Subvention de démarrage RS1-00313. Nous remercions les membres du grand centre de médecine régénérative et de recherche sur les cellules souches à l'UCLA, en particulier le Dr Clark Amander, le Dr Jerome Zack, et des membres de l'UCLA large souches Facilité Institut noyau cellulaire pour leur soutien de nos études.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Knockout Serum Replacer (KSR) Reagent Gibco 10828-028  
DMEM/F12 Reagent Gibco 11330-057  
Non-essential Amino Acids Reagent Gibco 11140-050  
GlutaMax Reagent Gibco 35050-061  
DMEM Reagent Gibco 11995-065  
FBS Reagent Clontech 631107  
L-glutamine Reagent Gibco 25030-081  
BME Reagent Fisher BP176-100  
bFGF Reagent R&D Systems 233-FB-025  
Collagenase IV Reagent Gibco 17104-019  
Dispase Reagent Stem Cell Technologies 17105-041  
Penicillin / Streptomycin Reagent Gibco 15140-122  
Gelatin Reagent Chemicon ES-006-B  
Matrigel Reagent BD Biosciences 354277  
Oct-4 antibody Reagent Santa Cruz Biotechnology SC-9081  
anti-h/mSSEA-4 Phycoerythrin Conjugated Mouse IgG3 Reagent R&D Systems FAB1435P  
FITCI-conjugated antirabbit IgG Reagent Jackson ImmunoResearch Laboratories. Inc. 715-095-152  

References

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Cite This Article
Khvorostov, I., Zhang, J., Teitell, M. From MEFs to Matrigel 2: Splitting hESCs from MEFs onto Matrigel. J. Vis. Exp. (16), e831, doi:10.3791/831 (2008).

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