Summary

יצירת עוברים דג הזברה chimeric על ידי השתלה

Published: July 17, 2009
doi:

Summary

מדריך צעד אחר צעד כדי ליצור ממוקד עוברי דג הזברה chimeric על ידי השתלת בשלב blastula או gastrula.

Abstract

אחד הכלים החזקים ביותר בשימוש כדי לקבל תובנה תהליכים התפתחותיים מורכבים היא ניתוח של עוברים chimeric. הכימרה מוגדר אורגניזם המכיל תאים מבעל חיים אחד או יותר; פסיפסים הם סוג אחד של הכימרה, שבו תאים גנוטיפ יותר מעורבים, בדרך כלל wild-type ו מוטציה. בשנת דג הזברה, מפלצות יכול להתבצע בקלות על ידי השתלה של תאים מעובר לעובר התורם מארח בשלב העוברי המתאים. תאים התורם תווית מופקים על ידי הזרקת סמן השושלת, כגון פלורסנט לצבוע, לעובר אחד תא הבמה. תאים התורם תווית יוסרו מעוברים התורם הוכנס עוברים לארח ללא תווית באמצעות נפט שבשליטת פיפטה זכוכית רכוב על תרכובת מיקרוסקופ או לנתח. תאים התורם יכול במקרים מסוימים להיות ממוקד לאזור ספציפי או רקמות של העובר המתפתח blastula או gastrula מארח שלב על ידי בחירת האתר השתלת העובר מארח מבוסס על ומבוססת מפות גורל.

Protocol

מדריך צעד אחר צעד כדי ליצור ממוקד עוברי דג הזברה chimeric על ידי השתלת בשלב blastula או gastrula. אחד הכלים החזקים ביותר בשימוש כדי לקבל תובנה תהליכים התפתחותיים מורכבים היא ניתוח של עוברים chimeric. הכימרה מוגדר אורגניזם המכיל תאים מבעל חיים אח?…

Discussion

הקלות שבה השתלה ניתן להשתמש כדי לייצר מפלצות ממוקד היא אחת המעצמות הגדולות של דג הזברה כמודל החולייתנים. שינוי של פרוטוקול זה לא שתואר לעיל מאפשר ניתוח של תפקוד הגן האימהי עבור הגנים עם תפקידים חיוניים להתפתחות zygotic. מאחר דגים מוטנטים לא יכולים לשרוד עד לבגרות, יש צור…

Acknowledgements

תודה לחברי במעבדה Moens עבור קלט מועיל במהלך כתיבת מאמר זה. HK הוא פוסט דוקטורט נתמך על ידי NIH / NICHD מענק # 5R01HD037909-08. CBM הוא חוקר עם הווארד יוז רפואי במכון.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Injection rig   Applied Scientific Instrumentation MPPI-3 Foot pedal can be ordered separately
Pronase   Sigma P5147 “protease type XIV”
Pen-Strep   Sigma P4458 100x stock
Methyl cellulose   Sigma M-0387  
Fluorescent dextrans   Molecular Probes/ Invitrogen various Eg. lysine-fixable rhodamine dextran (D7162)
Injection pipettes (1.2mmx0.94mmx10cm)   Sutter BF120-94-10  
Transplant pipette option 1   World Precision Instruments TW100-4  
Transplant pipette option 2   VWR #53508-400  
micromanipulator   Narishige UMJ-3FC (?)  
Micromanipulator magnetic stand   Narishige GJ-1  
Transplant apparatus   Sutter Instrument Co. MI-10010  
Fine micromanipulator   Narishige MMO-203  
Depression slides   Fisher 12560A  
Agar molds for injection and transplants   AL-AN Mfg, Inc.    

Reagents: Recipes for many of the reagents used for these procedures are found in The Zebrafish Book, which is available in full online at http://zfin.org/zf_info/zfbook/zfbk.html. Recipes are provided there for preparation of Fish Water, Embryo Medium with and without antibiotics, pronase for dechorionating, fluorescent dextrans, and methyl cellulose.

Referências

  1. Westerfield, M. . The Zebrafish Book. , (2000).
  2. Kimmel, C. B., Warga, R. M. Cell lineage and developmental potential of cells in the zebrafish embryo. Trends Genet. 4, 68-74 (1988).
  3. Kimmel, C. B., Warga, R. M., Schilling, T. F. Origin and organization of the zebrafish fate map. Development. 108, 581-594 (1990).
  4. Woo, K., Fraser, S. E. Order and coherence in the fate map of the zebrafish nervous system. Development. 121, 2595-2609 (1995).
  5. Raz, E. Primordial germ-cell development: the zebrafish perspective. Nat Rev Genet. 4, 690-700 (2003).
  6. Yoon, C., Kawakami, K., Hopkins, N. Zebrafish vasa homologue RNA is localized to the cleavage planes of 2- and 4-cell-stage embryos and is expressed in the primordial germ cells. Development. 124, 3157-3165 (1997).
  7. Koprunner, M., Thisse, C., Thisse, B., Raz, E. A zebrafish nanos-related gene is essential for the development of primordial germ cells. Genes Dev. 15 (21), 2877-2885 (2001).
  8. Weidinger, G., Wolke, U., Koprunner, M., Klinger, M., Raz, E. Identification of tissues and patterning events required for distinct steps in early migration of zebrafish primordial germ cells. Development. 126 (23), 5295-5307 (1999).
  9. Weidinger, G. Regulation of zebrafish primordial germ cell migration by attraction towards an intermediate target. Development. 129 (1), 25-36 (2002).
  10. Ciruna, B. Production of maternal-zygotic mutant zebrafish by germ-line replacement. Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 14919-14924 (2002).
  11. Waskiewicz, A. J., Rikhof, H. A., Moens, C. B. Eliminating zebrafish pbx proteins reveals a hindbrain ground state. Dev Cell. 3, 723-733 (2002).
  12. Weidinger, G. dead end, a novel vertebrate germ plasm component, is required for zebrafish primordial germ cell migration and survival. Curr Biol. 13, 1429-1434 (2003).
  13. Blaser, H. Transition from non-motile behaviour to directed migration during early PGC development in zebrafish. J Cell Sci. 118, 4027-4038 (2005).
check_url/pt/1394?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Kemp, H. A., Carmany-Rampey, A., Moens, C. Generating Chimeric Zebrafish Embryos by Transplantation. J. Vis. Exp. (29), e1394, doi:10.3791/1394 (2009).

View Video