Summary

Клеточная терапия для сердечной недостаточности у крыс: Двухместный Торакотомия для инфаркта миокарда и эпикарда Имплантация клеток и Biomatrix

Published: September 22, 2014
doi:

Summary

Имплантация biograft для лечения инфаркта миокарда, вызванную ЛАД перевязки в грызунах уже традиционно требуется два открытых операций на сердце. В целях снижения смертности и обеспечить оптимальные условия для фиксации твердых желатиновых biomatrices и связанных с клетками, минимально инвазивные процедуры были разработаны.

Abstract

Сердечная терапия клеток получил повышение заинтересованности и имплантации биоматериалов, связанных с клетками стало серьезной проблемой для оптимизации доставки клеток миокарда. Грызунов модель инфаркта миокарда (ИМ), состоящий из передней нисходящей артерии (LAD) перевязка имеет обычно были выполнены с помощью торакотомии; второй операции на открытом сердце с помощью стернотомию традиционно выполняется для эпикарда применения при лечении. Поскольку описание ЛАД лигирования модели, смертность после операции снизилась с 35-13%, однако вторая операция осталась критическая. В целях улучшения восстановления после операции и уменьшить боль и инфекции, малоинвазивные хирургические процедуры представлены. Два торакотомии проводились, первоначальный один для ЛАД перевязки, а второе для лечения эпикардиальной администрации. Biografts, состоящие из клеток, связанных с твердой или гелеобразной матрицы типа наносили на инфаркта АРеа. ЛАД перевязки привело к потере функции сердца, что подтверждается с помощью эхокардиографии, выполняемой через 2 и 6 недель. Голднер трихромом окрашивание выполняется на участках сердца подтвердили образование трансмурального рубца. Первый и второй операции в результате меньше, чем 10% послеоперационной смертности.

Introduction

С конца 19-го века, сердечно-сосудистые заболевания по-прежнему номер один серийный убийца в промышленно развитых странах. Среди них, ишемическая болезнь сердца представляет собой основную этиологию. Острая фаза приводит к инфаркта миокарда (ИМ) и следуют неадекватные ремоделирования, что постепенно развивается в сторону хронической фазе и тяжелой сердечной недостаточности. Несмотря на недавние значительных технологических и терапевтических достижений, заболеваемость и смертность в связи с прогрессированием сердечной недостаточности по-прежнему растет 1. В этом контексте, клеточная терапия получила все больший интерес в качестве нового метода терапии, чтобы остановить прогрессирование болезни к сердечной недостаточности и стимулировать недавно идентифицированный регенеративные способности миокарда. Экспериментальные и клинические исследования предоставили убедительные доказательства благотворного влияния, полученных после трансплантации сердца в различных типах клеток. Основные исходы включали улучшенное CardiФункция переменного сократительная, снизился ремоделирования левого желудочка, уменьшается размер инфаркта, и повышение сосудистой плотности в зоне инфаркта. Тем не менее, сохранение низкого количества клеток после инъекции клеток остается важным недостатком. Ассоциация клеток с биоматрицы улучшения доставки клеток 2 недавно способствовали исследователь и клинические интересы.

Лигирование левой передней нисходящей коронарной артерии (LAD) является эталонным методом для ИМ в небольшой животной модели, что приводит к трансмурального инфаркта и зрелого рубца. Сотовый терапии, примененной в хронической фазе инфаркта миокарда требует второго хирургического вмешательства. Средний стернотомия обычно выполняется, чтобы интрамиокардиальной инъекцию клеток или эпикардиальной имплантации biografts. Такие инвазивные хирургические процедуры увеличения смертности, послеоперационной время восстановления, боль и риск инфицирования. Малоинвазивная подход, представленный здесь не только предотвращает такую ​​предвзятость, но и предоставляет оptimal доступность сердце, предназначенная для обработки. MI и эпикардиальная имплантация клеток, связанных с типа гель биоматрицы выполняются на работающем сердце с помощью левых межреберных торакотомии.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Льюис самцов и самок крыс, 200-220 г были в стандартных лабораторных условиях (12 ч света и темноты, вволю воды и пищи, IVC клетка). Все животные были обработаны в соответствии с рекомендациями FELASA и швейцарского Закона о защите животных. 1 Приготовление клеток: м?…

Representative Results

Все животные восстанавливается в течение 1 часа после торакотомии. Заживление ран было быстрым. Не наблюдалось инфекция или отек. Двойной левый торакотомия разрешено оптимальный доступ к сердцу (Рисунок 1). Боль и послеоперационной смертности был низким. Животн…

Discussion

Постоянный перевязка ЛАД вызывает необратимые повреждения миокарда. Первая модель животное было описано в 1960 году 4. С тех пор она была рассмотрена в качестве стандартного и подходящей модели для хронического ИМ. Его стабильность и воспроизводимость разрешено экспериментальная…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят проф Хендрик Tevaearai и Департамент сердечно-сосудистой хирургии для финансовой поддержки начальной части исследования.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
POLYSORB 3-0 suture COVIDIEN UL 204
POLYSORB 5-0 suture COVIDIEN UL 202
SURGIPRO II 7-0 Suture COVIDIEN VP904X
CATHETER INSYTE 14G BD 381267
INSPIRA ADVANCED VOLUME CONTROLLED VENTILATOR HARVARD APPARATUS 557058
DUMONT #7 Forceps FST Germany 11274-20
Fibrin sealant BAXTER 1501441 TISSEEL Glue, Frozen -20°C
CASTROVIEJO EYE SPECULA HARVARD APPARATUS 72-8925 use as retractor for the ribs
IMDM Glutamax Gibco 31980
Pen/Strep Gibco 15140
FBS PAA Clone       A15-101
bone scissors Fine Science Tols 16044-10
Red Blood Cell Lysis Solution Gentra Systems D-50k1
Accutase cell detachment solution Stem cell technology 7920

Referências

  1. Gjesdal, O., Bluemke, D. A., Lima, J. A. Cardiac remodeling at the population level–risk factors, screening, and outcomes. Nat. Rev. Cardiol. 8, 673-685 (2011).
  2. Alcon, A., Cagavi Bozkulak, E., Qyang, Y. Regenerating functional heart tissue for myocardial repair. Cell Mol. Life Sci. 69, 2635-2656 (2012).
  3. Guex, A. G., Fortunato, G., Hegemann, D., Tevaearai, H. T., Giraud, M. N. General Protocol for the Culture of Cells on Plasma-Coated Electrospun Scaffolds. Methods Mol. Biol. 1058, 119-131 (2013).
  4. Selye, H., Bajusz, E., Grasso, S., Mendell, P. Simple techniques for the surgical occlusion of coronary vessels in the rat. Angiology. 11, 398-407 (1960).
  5. Gomes, A. C., Falcao-Pires, I., Pires, A. L., Bras-Silva, C., Leite-Moreira, A. F. Rodent models of heart failure: an updated review. Heart Fail. Rev. 18, 219-249 (2013).
  6. Horstick, G., et al. Surgical procedure affects physiological parameters in rat myocardial ischemia: need for mechanical ventilation. Am. J. Physiol. 276, 472-479 (1999).
  7. Duchatelle, J. P., Vivet, P., Cortes, M., Groussard, O., Pocidalo, J. J. Respiratory and Hemodynamic-Effects of Lateral Thoracotomy or Sternotomy in Mechanically Ventilated Rats. Eur. Surg. Res. 17, 10-16 (1985).
  8. Giraud, M. N., et al. Hydrogel-based engineered skeletal muscle grafts normalize heart function early after myocardial infarction. Artif. Organs. 32, 692-700 (2008).
  9. Siepe, M., et al. Myoblast-seeded biodegradable scaffolds to prevent post-myocardial infarction evolution toward heart failure. J. Thorac. Cardiov. Sur. 132, 124-131 (2006).
  10. Guex, A. G., et al. Plasma-functionalized electrospun matrix for biograft development and cardiac function stabilization. Acta Biomater. 10, (2014).
  11. Terrovitis, J., et al. Noninvasive Quantification and Optimization of Acute Cell Retention by In Vivo Positron Emission Tomography After Intramyocardial Cardiac-Derived Stem Cell Delivery. J. Am. Coll. Cardiol. 54, 1619-1626 (2009).
  12. Guo, H. D., Wang, H. J., Tan, Y. Z., Wu, J. H. Transplantation of marrow-derived cardiac stem cells carried in fibrin improves cardiac function after myocardial infarction. Tissue Eng. Part A. 17, 45-58 (2011).
  13. Qiao, H., et al. Death and Proliferation Time Course of Stem Cells Transplanted in the Myocardium. Mol. Imaging Biol. 11, 408-414 (2009).
  14. Conradi, L., Pahrmann, C., Schmidt, S., Deuse, T., Hansen, A., Eder, A., et al. Bioluminescence Imaging for Assessment of Immune Responses Following Implantation of Engineered Heart Tissue (EHT). J. Vis. Exp. 52 (e2605), (2011).

Play Video

Citar este artigo
Frobert, A., Valentin, J., Cook, S., Lopes-Vicente, J., Giraud, M. Cell-based Therapy for Heart Failure in Rat: Double Thoracotomy for Myocardial Infarction and Epicardial Implantation of Cells and Biomatrix. J. Vis. Exp. (91), e51390, doi:10.3791/51390 (2014).

View Video