Summary

In vitro Cell Culture Model for Toxic Inhalert Chemical Testing

Published: May 08, 2014
doi:

Summary

Denne protokollen er utformet for å demonstrere fremgangsmåten eksponering av cellekulturer til inhalerte giftige kjemikalier. Eksponering av differensiert luft-væske-grensesnittet (ALI) kulturer av luftveis epitelceller gir en unik modell av luftveis eksponering for giftige gasser som klor. I dette manuskriptet beskriver vi effekten av klor eksponering på luft-væske-grensesnittet kulturer av epitelceller og neddykket kultur kardiomyocytter. In vitro eksponering systemer tillater viktige mekanistiske studier for å evaluere trasé som dermed kan brukes til å utvikle nye terapeutiske midler.

Abstract

Cellekulturer er uunnværlig for å utvikle og å studere effekten av terapeutiske midler, før deres bruk i dyremodeller. Vi har en unik evne til å modellere godt differensiert menneskelige luftveier epitel og hjertemuskelceller. Dette kan være et uvurderlig verktøy for å studere de skadelige virkninger av giftige inhalerte kjemikalier, slik som klor, som normalt kan samhandle med celleoverflatene og danner en rekke biprodukter ved reaksjon med vann, og som begrenser deres virkninger i neddykkede kulturer. Vår modell med godt differensiert menneskelige airway epithelial cellekulturer på luft-liqiuid grensesnitt omgår denne begrensningen, samt gir en mulighet til å vurdere kritiske mekanismer for toksisitet av potensielle giftige inhalerte kjemikalier. Vi beskriver forbedret tap av membranintegritet, caspase frigjøring og død ved inhalert toksisk kjemikalie slik som klor-eksponering. I denne artikkelen foreslår metoder for å modellere klor eksponering i pattedyr hjerte og luftveier epitel calen i kultur og enkle tester for å evaluere effekten på disse celletypene.

Introduction

Eksponering for giftige kjemikalier inhalerte (tics) / gasser som klor (Cl 2) gjenstår en kontinuerlig helseproblem i utilsiktet eksponering så vel som i deres potensielle anvendelse som et kjemisk middel trussel. Selv om lungene er det primære målet, er organer som hjerte og hjerne også påvirket 1-3. In vivo modeller er vanligvis brukt til testing toksisitet fra tics, men in vitro analyser for toksisitet vurdering er enklere, raskere og mer kostnadseffektivt. I vitro modeller også gi rom for omfattende etterforskning av middel-celle interaksjoner som kan være vanskelig å vurdere in vivo. Slike in vitro eksponering systemer er sjeldne, og dessuten i noen konvensjonelle modeller hvor giftstoffer tilsettes til kulturmediet hvori cellene er neddykket, kan egenskapene til de midler endres på grunn av interaksjoner og binding til komponentene i mediet. I slike scenarier cellekultursystemer som luft-væske-grensesnittet (ALI) kulturer av primære menneskelige luftveis epitelceller, som foreslås her, som kan være direkte utsatt for gass agenter kan være lovende.

Epitelceller luftveiene er de første linjene av forsvaret mot inhalert giftige kjemikalier. Den menneskelige airway epithelium danner en fysisk barriere mellom hulrommet og de underliggende celler i lungen og deltar i responsen av lungen. Den produserer en rekke cytokiner og andre pro-og anti-inflammatoriske midler, så vel som utskiller slim / luftveisoverflate væske (ASL) som dekker epitel. En av begrensningene i konvensjonell neddykket in vitro kultursystemer er også at ASL og slim som dekker den epiteliale overflate er fjernet eller fortynnet. Dette gjenspeiler ikke den fysiologiske tilstand av lunge epitelceller som er utsatt for luft. Dermed bør en ideell in vitro system for TIC toksisitetstesting gjenskape denne arkitekturen. Det er stor interesse for å utvikle rask screening methods som forut in vivo toksisitet. Epitel-celler dyrket ved ALI differensiere og har godt differensierte strukturer og funksjoner, sammenlignet med celler dyrket under vann og utføre en overlegen modell av luftrom.

I denne studien, beskriver vi bruk av luft-væske-grensesnittet kultur for menneskelig luftveier (tracheobronchial) epitelceller for testing giftig inhalert gass giftighet og sammenligne det med en neddykket cellekultur av cardiomyocyte, derav studere et annet viktig mål for toksisitet.

Protocol

En. Rat cardiomyocyte kulturer Alle forsøkene ble utført under protokoller godkjent av institusjonelle dyr omsorg og bruk komité, IACUC. Skaff rotte cardiomyocytes fra hjertene (ventriklene) av hannrotter (240-260 g) ved hjelp av metoder som er beskrevet tidligere fire. Kort, anesthetize dyr ved hjelp av en intraperitoneal injeksjon av pentobarbital (100 mg / kg; bekrefte anestesi ved tåen klemme-metode), og deretter fjerne hjerter i 10,0 ml, 1 mM Ca 2 +-inneholdende Krebs-…

Representative Results

Primær stang formet kardiomyocytter feste på Laminin matriser og spre seg og differensiere i konfluente kulturer (figur 1A og dens innfelt). Disse cellene ble videre karakterisert på basis av sarcomeric aktin og SERCA2 uttrykket (figurene 1B og 1C). Rotte cardiomyocytes er svært utsatt for klor toksisitet som 15 min eksponering for 100 ppm klor forårsaket omfattende celle avrunding og død i neddykket kulturer og forstyrrelse av konfluente lag på celler dyrket på…

Discussion

Den vanligste typen akutt giftige eksponeringer oppstår når man puster en giftig kjemisk ned i lungene. Disse kjemikaliene kan også bli raskt tatt opp i blodet og kan påvirke andre organer som hjerne og hjerte. Inhalering toksisitet av forskjellige stoffer ved hjelp av dyremodeller er studert og rapportert vidt, men mekanismene er mindre godt forstått. Dette er et stort hinder i utviklingen av effektive behandlingsformer. Fravær av in vitro eksponering systemer er en primær årsak bak mangelen på mekani…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen er støttet av motvirke Program, National Institutes of Health (NIH), kontor direktør, og National Institute of Environmental Health Sciences (NIEHS) Grant Antall U54 ES015678 (CWW). SA er også støttet av sykehus Barnas Colorado / Colorado School of Mines Samarbeid Pilot Award # G0100394 og Barnas Hospital Colorado Forskning Institue Pilot Award # G0100471.

Materials

Name Company Catalog Number
Rats Harlan Laboratories Sprague-Dawley 
Pentobarbital Sigma-Aldrich P3761
Chlorine AirGas, Inc X02NI99CP163LS1
Caspase 3/7 kit  Promega G8091
Epithelial voltohmmeter and chopstick electrode World Precision Instruments EVOM and STX2
Snapwell inserts Corning 07-200-708
70 micron nylon cell strainer Corning #352360
Polysulfone biocontainment chambers  BCU, Allentown Cage Equipment BCU
DMEM Life technologies 12491-015
Sarcomeric actin antibody Abcam Cambridge, MA ab28052
SERCA2 antibody  Affinity Bioreagents, Golden, CO MA3-9191
Ki-67 antibody  Dako, Carpinteria, CA M7248
Alexa-488-conjugated secondary antibody  Invitrogen, Grand Island, NY A11029
BSA Sigma-Aldrich A9418
Carnitine Sigma-Aldrich C0283
Taurine Sigma-Aldrich T8691
Creatinine Sigma-Aldrich C6257
Krebs Ringer Buffer Sigma-Aldrich K4002
Protease Sigma-Aldrich P5147
Collagenase Sigma-Aldrich C6885
                                                                  DNAase Sigma-Aldrich DN-25
Lactated Ringer solution Abott Laboratories 7953
Donkey serum Fisher Scientific 017-000-001
PBS, phosphate buffered saline Sigma-Aldrich D1408
4-15% SDS-PAGE gels Bio-Rad 456-1083
Nitrocellulose membrane Bio-Rad 162-0115
Dergent, Tween  Sigma-Aldrich P1379
Peroxidase detection kit Pierce 3402
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Mounting media, Fluormount G eBiosciences 00-4958-02
Sodium citrate Sigma-Aldrich 71497
Collagen Sigma-Aldrich C7521
MEM Sigma-Aldrich M8028
Laminin BD biosciences 354259
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070063
FBS Gibco 200-6140AJ

Referências

  1. Mohan, A., et al. Acute accidental exposure to chlorine gas: clinical presentation, pulmonary functions and outcomes. Indian J Chest Dis Allied Sci. 52, 149-152 (2010).
  2. Kose, A., et al. Myocardial infarction, acute ischemic stroke, and hyperglycemia triggered by acute chlorine gas inhalation. Am J Emerg Med. 27, 1021-1024 (2009).
  3. Das, R., Blanc, P. D. Chlorine gas exposure and the lung: a review. Toxicol Ind Health. 9, 439-455 (1993).
  4. Claycomb, W. C., Palazzo, M. C. Culture of the terminally differentiated adult cardiac muscle cell: a light and scanning electron microscope study. Dev Biol. 80, 466-482 (1980).
  5. Ahmad, S., et al. Bcl-2 suppresses sarcoplasmic/endoplasmic reticulum Ca2+-ATPase expression in cystic fibrosis airways: role in oxidant-mediated cell death. Am J Respir Crit Care Med. 179, 816-826 (2009).
  6. Ahmad, S., et al. Tissue factor signals airway epithelial basal cell survival via coagulation and protease-activated receptor isoforms 1 and 2. Am J Respir Cell Mol Biol. 48, 94-104 (2013).
  7. Lam, H. C., et al. Isolation of mouse respiratory epithelial cells and exposure to experimental cigarette smoke at air liquid interface. J Vis Exp. (48), (2011).
  8. Hosokawa, T., et al. Differentiation of tracheal basal cells to ciliated cells and tissue reconstruction on the synthesized basement membrane substratum in vitro. Connect Tissue Res. 48, 9-18 (2007).
  9. Fulcher, M. L., et al. Well-differentiated human airway epithelial cell cultures. Methods Mol Med. , 107-183 (2005).
  10. Ahmad, S., et al. SERCA2 regulates non-CF and CF airway epithelial cell response to ozone. PloS One. 6, e10 (2011).
  11. Martin, J. G., et al. Chlorine-induced injury to the airways in mice. Am J Respir Crit Care Med. 168, 568-574 (2003).
  12. Evans, R. B. Chlorine: state of the art. Lung. 183, 151-167 (2005).
  13. Vliet, A., et al. Formation of reactive nitrogen species during peroxidase-catalyzed oxidation of nitrite. A potential additional mechanism of nitric oxide-dependent toxicity. J Biol Chem. 272, 7617-7625 (1997).
  14. Ahmad, S., et al. Lung epithelial cells release ATP during ozone exposure: signaling for cell survival. Free Radic Biol Med. 39, 213-226 (2005).
  15. Allen, C. B. An automated system for exposure of cultured cells and other materials to ozone. Inhal Toxicol. 15, 1039-1052 (2003).
check_url/pt/51539?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ahmad, S., Ahmad, A., Neeves, K. B., Hendry-Hofer, T., Loader, J. E., White, C. W., Veress, L. In vitro Cell Culture Model for Toxic Inhaled Chemical Testing. J. Vis. Exp. (87), e51539, doi:10.3791/51539 (2014).

View Video