JoVE Journal > Chemistry
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Resultados
Discussion
Declarações
Acknowledgements
Materials
Referências
Tadução automática
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Química

הכנה קלילה של פנימית עצמית התאספו חלקיקים ליפידים מיוצב על ידי פחמן

Published: February 19, 2016
doi:
10.3791/53489
, , ,
1Centre for Materials Science, School of Physical Sciences and Computing,University of Central Lancashire, 2School of Food Science & Nutrition,University of Leeds

Summary

We report on a smart application of carbon nanotubes for kinetic stabilization of lipid particles that contain self-assembled nanostructures in their cores. The preparation of lipid particles requires rather low concentrations of carbon nanotubes permitting their use in biomedical applications such as drug delivery.

Abstract

אנו מציגים שיטה קלילה להכין חלקיקי שומני nanostructured על מנת לייצב את צינורות פחמן (CNTs). חד-דופנות (וטהור) ו-חומה רבה (פונקציונלי) CNTs משמש מייצב לייצר סוג פיקרינג שמן-ב-מים (O / W) אמולסיות. ליפידים כלומר, Dimodan U ו- Phytantriol משמשים כמו מתחלבים, אשר המים העודפים עצמית להרכיב לשלב Pn3m מעוקב bicontinuous. שלב צמיג מאוד זה מקוטע לחלקיקים קטנים יותר באמצעות בדיקת ultrasonicator בנוכחות מייצבים פעילים שטח קונבנציונליים או CNTs כפי שנעשה כאן. בתחילה, CNTs (בצורת אבקה) מפוזרים במים ואחריו ultrasonication נוספת עם השומנים מותכת כדי ליצור את התחליב הסופי. במהלך תהליך זה CNTs לקבל מצופה מולקולות שומנים בדם, אשר בתורו הן בחזקים להקיף את טיפות שומנים כדי ליצור תחליב חלקיקים כי הוא יציב במשך חודשים. הגודל הממוצע של חלקיקי שומני nanostructured CNT-התייצב נמצא r submicronange, אשר משווה גם עם החלקיקים התייצב באמצעות פעילי שטח קונבנציונליים. נתוני רנטגן פיזור זווית קטן מאשר את השמירה של שלב Pn3m מהעוקב המקורי תפוצות שומני CNT-התייצבו לעומת שלב השומנים הטהור (המדינה בתפזורת). ולכחול והורדה של העוצמות בסול מאפיין והלהקות 'G של CNTs שנצפתה ספקטרוסקופיית ראמאן לאפיין את האינטראקציה בין מולקולות פני שטח שומני CNT. התוצאות מראה כי יחסי הגומלין בין CNTs והשומנים אחראים הייצוב הדדי בתמיסות מימיות. ככל הריכוזים של CNTs מועסק לייצוב נמוכים מאוד ומולקולות שומנים מסוגלות functionalize את CNTs, הרעילות של CNTs צפויה להיות מבוטל תוך ההתאמה הביולוגית שלהם היא מאוד משופרת. לפיכך הגישה הנוכחית מוצאת פוטנציאל גדול יישומים ביו שונים, למשל, לפיתוח מערכות nanocarrier היברידי עבור משלוח של מ 'רובי מולקולות תפקודיות כמו טיפול משולב או polytherapy.

Introduction

במהלך העשורים האחרונים, ננוטכנולוגיה התפתחה ככלי רב עוצמה במיוחד בתחום פיתוח פרה-קליניים של תרופות למאבק במחלות לשמצה כגון סרטן 1. בהקשר זה, מבנים ננומטריים עם גודל <1,000 ננומטר נחקרים נרחב ככלי משלוח של ביומולקולות השונים הפועלים כגון תרופות, חלבונים, חומצות גרעין, גנים וסוכני הדמיה לאבחון 1-4. ביומולקולות אלה כמוסות או בתוך החלקיקים או מצומדות על פני שטח של חלקיקים ומשתחררות באתר של פעולה על ידי גורמים כגון pH או 5,6 טמפרטורה. למרות מאוד קטן בגודלם, שטח פנים הגדול של ננו-חלקיקים אלו מוכיח להיות יתרון מאוד עבור משלוח ממוקד של ביומולקולות פעילה. השליטה על גודל החלקיקים ואת biocompatibility הוא בעל חשיבות עליונה על מנת לייעל את היעילות הטיפולית ומכאן תחולת חלקיקים 7,8.ליפידים 9-13, פולימרים 14,15, מתכות 16,17 צינורות פחמן 18,19 הועסקו בכינויו nanocarriers עבור יישומים ביו או תרופות שונות.

יתר על כן, יישומי nanocarrier מבוססים על ננו עצמית התאספה שומנים יש משמעות רחבה בהרבה תחומים אחרים, כוללים מזון וקוסמטיקה 20,21. למשל, הם משמשים התגבשות חלבון 22, הפרדת ביומולקולות 23, כמו ייצוב מזון למשל, בקינוחים 24, ובסופו של משלוח של מולקולות פעילות כגון חומרי הזנה, חומרי טעם וריח ובשמים 25-31. ננו שומנים עצמי התאסף לא רק את היכולת לשחרר מולקולות ביו בצורה מבוקרות וממוקד 32-38 אבל הם גם מסוגלים להגן על המולקולות התפקודיות מפני השפלה הכימית אנזימטיים 39,40. למרות bilayer נוזל מישוריים הוא הכי commעל ננו-מבנה שנוצר על ידי מולקולות השומנים amphiphilic בנוכחות של מים, מבנים אחרים כגון משושה ו מעוקב הם נצפו גם 20,41,42 נפוץ. הסוג של ננו-מבנה שנוצר תלוי במבנה המבנה המולקולרי "השומנים, רכב השומנים במים כמו גם על תנאי הפיסיקלי כימי מועסק כגון טמפרטורה ולחץ 43. תחולת ננו השומנים הלא מישוריים במיוחד כי הפאזות מעוקב, מוגבלת בגלל הצמיגות שלהם גבוהה ועקביות תחום הלא הומוגנית. בעיות אלה הם להתגבר על ידי פיזור ננו ליפיד כמות גדולה של מים ליצירת שמן-ב-מים (O / W) תחליבים המכילים מיקרון או חלקיקים השומנים בגודל submicron. באופן זה, מוצר מתאים של צמיגות נמוכה ניתן להכין תוך שמירה על המבנה עצמי התאסף שומנים המקוריים בתוך חלקיקים המפוזרים. ההיווצרות הפנימית אלה חלקיקים עצמיים התאסף (המקוצרת כמו ISAsomes 44 </sup> למשל, cubosomes משלב מעוקב hexosomes משלב משושה) נפוץ דורש שילוב של צעד השקעת אנרגיה גבוהה והוספת מייצבים כגון פעיל שטח או פולימרים. מחקרים שנערכו לאחרונה בכיוון זה מדגים את היישום של חלקיקים מוצקים שונים 45 כולל חלקיקי סיליקה 46, חימר 47-49 צינורות פחמן 50 לייצוב תחליבים הנ"ל, כינה מתאים, פיקרינג 51 או Ramsden-פיקרינג תחליבים 52.

בשנים האחרונות, פחמן המבוסס ננו כגון צינורות פחמן חד-דופנות (SWCNTs), צינורות פחמן רב חומה (MWCNTs) ו פולרנים קיבלו תשומת לב רבה כמו biomaterials הרומן 53,54. החששות העיקריים הם רעילותם 55-58, insolubility מים 59 ומכאן biocompatibility שלהם 56. דרך יעילה להתמודד עם בעיות אלה היא פונקצית המשטחalization באמצעות מולקולות רעילות ביולוגיות כגון שומנים. בנוכחות של מים, שומנים אינטראקציה עם CNTs באופן משטח הידרופובי של CNTs מוגן מפני בתווך מימי הקוטב ואילו קבוצות ראש הידרופילי השומנים לסייע מסיסות או פיזורם במים 60,61. ליפידים הם המרכיבים בלתי נפרד אברונים הסלולר, כמו גם כמה חומרי מזון, ולכן קישוט שלהם רצוי להקטין את רעילות in vivo של CNTs. יישומים ביו-רפואיים המבוססים באופן עצמאי על CNTs 18,19 ו ננו השומנים 9-13 נמצאים תחת פיתוח נרחב אך יישומים המשלבים תכונות של שני עדיין לא-בחנו היטב.

בעבודה זו, אנו מעסיקים שני סוגים שונים של שומנים ושלושה סוגים של CNTs מתוכם SWCNTs הם בצורה והטהורה ואילו MWCNTs הם פונקציונליים עם הידרוקסיל וקבוצות קרבוקסיליות. השתמשנו בריכוזים נמוכים מאוד של CNTs להכין את התפוצות אשריציבות תלויה במספר גורמים כגון סוג של שומנים בדם, סוג של CNT, יחס של השומנים כדי CNT בשימוש, כמו גם על הפרמטרים sonication המועסקים כגון כוח ומשך. פרוטוקול וידאו זה מספק פרטים טכניים של שיטה של ​​ייצוב חלקיקי שומני kinetically באמצעות CNT-מייצבים שונים.

Protocol

זהירות: CNTs המשמש בעבודה זו הוא בצורת nanoparticulate אשר עשויה להיות סכנות נוספות לעומת עמיתיהם נפחם. שאיפת גרפיט, טבעיים וסינתטיים, יכול לגרום pneumoconiosis 62 דומה pneumoconiosis של העובד פחם. יתר על כן, חלו חששות הנוגעים הרעילות של ננו מבוסס פחמן וחלק מחקרים קודמים מראים רעילות חריפות וכרוני…

Representative Results

התוצאות הבאות מייצגות) ביציבות של תפוצות, ב) התפלגות גודל חלקיקים שומנים בדם, ג) סוג של הרכבה עצמית ו-ד) ראיות לציפוי השומנים של CNTs. היציבות של תפוצות (איור 2) היה פיקוח באמצעות מצלמה 5 מגה פיקסל עם פוקוס אוטומטי ופלאש LED. <p class="jove_content" fo:keep-togethe…

Discussion

ייצוב של חלקיקי שומנים
שלושה CNTs שונים משמשים לייצוב תפוצות השומנים; שתיים מהם רבי חומה ו פונקציונלי באמצעות -OH וקבוצות -COOH, ואחד הוא יחיד חום ולא פונקציונלי (וטהור). את CNTs מגוונות בגודל כדלקמן (אורך x קוטר): MWCNT-COOH: 9.5 ננומטר x 1.5 מיקרומטר; MWCNT-OH: 8-15 ננומטר x 50 מיק…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ברצוננו להודות לד"ר מתיו ג 'בייקר, עכשיו באוניברסיטת Strathclyde, גלזגו על התמיכה עם ניסויים רמן מר ניק גונט עבור עבודתו מראש של הפרויקט הזה.

Materials

Dimodan U Danisco 15312 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Phytantriol (> 95%, GC) TCI Europe N.V. P1674 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Single walled Carbon Nanotubes (90%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc.  1246YJS Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Multi-walled carboxylic acid functionalised Carbon Nanotubes (> 80% Caron basis, > 8% carboxylic acid functionalized) Sigma-Aldrich Co. LLC  755125 Store at room temperature. Away from direct light. Causes serious eye irritation. May cause respiratory irritation
Graphitized Multi-walled hydroxy functionalised Carbon Nanotubes (99.9%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc. (NanoAmor)  1224YJF Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Pluronic F127 Sigma-Aldrich Co. LLC  P2443 BioReagent, suitable for cell culture. Not a hazardous substance or mixture. Store at room temperature.
Acetone (99.5%) Fisher Scientific  10134100 Highly flammable liquid. Causes serious eye irritation. May cause drowsiness or dizziness
Scintillation Vial VWR International Ltd 548‐0704 Soda‐lime glass vial with low background count Fitted with foil lined urea cap, 20 ml
Jars with loose, enfolding lids (375ml) VWR International Ltd 216-3308
Beaker , 1000mL Fisher Scientific  12942161 heavy duty, low form, with spout and graduations
Pasteur glass pipette (150 mm length) with latex bulb Fisher Scientific  10006021
Microcentrifuge tube conical snap cap 1.5mL Fisher Scientific  11558232
Spatula Fisher Scientific  11352204
Heating magnetic stirrer Fisher Scientific  11715704
Magnetic stirrer bars (cylindrical, opaque PTFE, 30mm x 7mm (l x diameter)) Fisher Scientific  10011792
Needle (0.9 mm x 40 mm cannula length) Terumo UK Ltd MN-2038MQ
Retort Stand Set – With stand, clamp, base, rod, rubber 3 jaw and bosshead Camlab Ltd, UK 1177157
Millipore water equipment Barnstead Nanopure, Thermoscientific, USA
Progen Genfuge 24D Digital Microcentrifuge Progen Scientific C-2400
Probe ultra-sonicator, with 13 mm  SONICS, Vibracell,  USA
5MP camera with auto-focus and LED flash Samsung Galaxy Fame Mobile camera
Raman Spectrometer Horiba Jobin-Yvon LabRAM HR800 spectrometer
Mastersizer 3000  Malvern Instruments Ltd, Malvern, United Kingdom
Small angle X-ray scattering (SAXS) SAXSpace camera (Anton Paar, Graz, Austria), X-ray generating equipment (ISO-DEBYEFLEX3003, GE Inspection Technologies GmbH), closed water circuit (Chilly 35, HYFRA, Germany). 
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referências

  1. Peer, D., et al. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nature Nanotech. 2, 751-760 (2007).
  2. White, R. R., Sullenger, B. A., Rusconi, C. P. Developing aptamers into therapeutics. J. Clin. Invest. 106, 929-934 (2000).
  3. Itaka, K., Chung, U. I., Kataoka, K. Supramolecular nanocarrier for gene and siRNA delivery. Nippon Rinsho Jpn. J. Clin. Med. 64, 253-257 (2006).
  4. Xu, S., et al. Development of pH-responsive core-shell nanocarriers for delivery of therapeutic and diagnostic agents. Bioorg. Med. Chem. Lett. 19, 1030-1034 (2009).
  5. Soppimath, K. S., Tan, D. C. W., Yang, Y. Y. pH-triggered thermally responsive polymer core-shell nanoparticles for drug delivery. Adv. Mater. 17, 318-323 (2005).
  6. Hans, M., Lowman, A. Biodegradable nanoparticles for drug delivery and targeting. Curr. Opin. Solid State Mater. Sci. 6, 319-327 (2002).
  7. Petros, R. A., DeSimone, J. M. Strategies in the design of nanoparticles for therapeutic applications. Nat Rev Drug Discov. 9, 615-627 (2010).
  8. Torchilin, V. P. Multifunctional nanocarriers. Adv Drug Deliver Rev. 64, 302-315 (2012).
  9. Shmeeda, H., et al. Delivery of zoledronic acid encapsulated in folate-targeted liposome results in potent in vitro cytotoxic activity on tumor cells. J. Controlled Release. 146, 76-83 (2010).
  10. Xu, Z., et al. The performance of docetaxel-loaded solid lipid nanoparticles targeted to hepatocellular carcinoma. Biomaterials. 30, 226-232 (2009).
  11. Rosenthal, E., et al. Phase IV study of liposomal daunorubicin (DaunoXome) in AIDS-related Kaposi sarcoma. Am. J. Clin. Oncol.-Canc. 25, 57-59 (2002).
  12. Dong, Y. D., Larson, I., Bames, T. J., Prestidge, C. A., Boyd, B. J. Adsorption of Nonlamellar Nanostructured Liquid-Crystalline Particles to Biorelevant Surfaces for Improved Delivery of Bioactive Compounds. Acs Appl Mater Inter. 3, 1771-1780 (2011).
  13. Rizwan, S. B., Boyd, B. J., Rades, T., Hook, S. Bicontinuous cubic liquid crystals as sustained delivery systems for peptides and proteins. Expert Opin. Drug. Deliv. 7, 1133-1144 (2010).
  14. Yoo, H. S., Park, T. G. Folate receptor targeted biodegradable polymeric doxorubicin micelles. J. Controlled Release. 96, 273-283 (2004).
  15. Khandare, J. J., et al. Dendrimer versus linear conjugate: Influence of polymeric architecture on the delivery and anticancer effect of paclitaxel. Bioconjug. Chem. 17, 1464-1472 (2006).
  16. Prabaharan, M., Grailer, J. J., Pilla, S., Steeber, D. A., Gong, S. Gold nanoparticles with a monolayer of doxorubicin-conjugated amphiphilic block copolymer for tumor-targeted drug delivery. Biomaterials. 30, 6065-6075 (2009).
  17. Fan, J., et al. Targeted anticancer prodrug with mesoporous silica nanoparticles as vehicles. Nanotechnology. 22, (2011).
  18. Bianco, A., Prato, M. Can carbon nanotubes be considered useful tools for biological applications?. Adv. Mater. 15, 1765-1768 (2003).
  19. Kam, N. W. S., Dai, H. J. Carbon nanotubes as intracellular protein transporters: Generality and biological functionality. J. Am. Chem. Soc. 127, 6021-6026 (2005).
  20. Kulkarni, C. V. Lipid crystallization: from self-assembly to hierarchical and biological ordering. Nanoscale. 4, 5779-5791 (2012).
  21. Yaghmur, A., et al. . Drug Formulations Based on Self-Assembled Liquid Crystalline Nanostructures. , 341-360 (2014).
  22. Kulkarni, C. V. . Advances in Planar Lipid Bilayers and Liposomes. 12, 237-272 (2010).
  23. Landau, E. M., Navarro, J. V. . US Pat. , (2001).
  24. Kulkarni, C., Belsare, N., Lele, A. Studies on shrikhand rheology. J. Food Eng. 74, 169-177 (2006).
  25. Mezzenga, R., Schurtenberger, P., Burbidge, A., Michel, M. Understanding foods as soft materials. Nature Mater. 4, 729-740 (2005).
  26. Ubbink, J., Burbidge, A., Mezzenga, R. Food structure and functionality: a soft matter perspective. Soft Matter. 4, 1569-1581 (2008).
  27. Dong, Y. D., Larson, I., Hanley, T., Boyd, B. J. Bulk and dispersed aqueous phase behavior of phytantriol: effect of vitamin E acetate and F127 polymer on liquid crystal nanostructure. Langmuir. 22, 9512-9518 (2006).
  28. Yaghmur, A., Glatter, O. Characterization and potential applications of nanostructured aqueous dispersions. Adv. Colloid Interface Sci. 147, 333-342 (2009).
  29. Pardeike, J., Hommoss, A., Müller, R. H. Lipid nanoparticles (SLN, NLC) in cosmetic and pharmaceutical dermal products. Int. J. Pharm. 366, 170-184 (2009).
  30. Yaghmur, A., Rappolt, M., Østergaard, J., Larsen, C., Larsen, S. W. Characterization of bupivacaine-loaded formulations based on liquid crystalline phases and microemulsions: the effect of lipid composition. Langmuir. 28, 2881-2889 (2012).
  31. Singh, H., Ye, A., Horne, D. Structuring food emulsions in the gastrointestinal tract to modify lipid digestion. Prog. Lipid Res. 48, 92-100 (2009).
  32. Angelova, A., Angelov, B., Mutafchieva, R., Lesieur, S., Couvreur, P. Self-Assembled Multicompartment Liquid Crystalline Lipid Carriers for Protein, Peptide, and Nucleic Acid Drug Delivery. Accounts Chem. Res. 44, 147-156 (2011).
  33. Clogston, J., Caffrey, M. Controlling release from the lipidic cubic phase. Amino acids, peptides, proteins and nucleic acids. J. Controlled Release. 107, 97-111 (2005).
  34. Shah, J. C., Sadhale, Y., Chilukuri, D. M. Cubic phase gels as drug delivery systems. Adv. Drug Deliver. Rev. 47, 229-250 (2001).
  35. Boyd, B. J., Whittaker, D. V., Khoo, S. M., Davey, G. Lyotropic liquid crystalline phases formed from glycerate surfactants as sustained release drug delivery systems. Int. J. Pharm. 309, 218-226 (2006).
  36. Drummond, C. J., Fong, C. Surfactant self-assembly objects as novel drug delivery vehicles. Curr. Opin. Colloid Interface Sci. 4, 449-456 (1999).
  37. Zhao, X. Y., Zhang, J., Zheng, L. Q., Li, D. H. Studies of cubosomes as a sustained drug delivery system. J. Dispersion Sci. Technol. 25, 795-799 (2004).
  38. Malmsten, M. Phase transformations in self-assembly systems for drug delivery applications. J. Dispersion Sci. Technol. 28, 63-72 (2007).
  39. Sadhale, Y., Shah, J. C. Stabilization of insulin against agitation-induced aggregation by the GMO cubic phase gel. Int. J. Pharm. 191, 51-64 (1999).
  40. Amar-Yuli, I., Azulay, D., Mishraki, T., Aserin, A., Garti, N. The role of glycerol and phosphatidylcholine in solubilizing and enhancing insulin stability in reverse hexagonal mesophases. J. Colloid Interface Sci. 364, 379-387 (2011).
  41. Rappolt, M., Leitmannova Liu, A. . Advances in planar lipid bilayers and liposomes. 5, 253-283 (2006).
  42. Rappolt, M., Cacho-Nerin, F., Morello, C., Yaghmur, A. How the chain configuration governs the packing of inverted micelles in the cubic Fd 3 m-phase. Soft Matter. 9, 6291-6300 (2013).
  43. Kulkarni, C. V., Wachter, W., Iglesias-Salto, G., Engelskirchen, S., Ahualli, S. Monoolein: a magic lipid?. Phys. Chem. Chem. Phys. 13, 3004-3021 (2011).
  44. Yaghmur, A., de Campo, L., Sagalowicz, L., Leser, M. E., Glatter, O. Emulsified Microemulsions and Oil-Containing Liquid Crystalline Phases. Langmuir. 21, 569-577 (2005).
  45. Kulkarni, C. V., Glatter, O., Nissim, G. Ch. 6. Self-Assembled Supramolecular Architectures: Lyotropic Liquid Crystals.Surface and Interfacial Chemistry. , (2012).
  46. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Internally Self-Assembled Submicrometer Emulsions Stabilized by Spherical Nanocolloids: Finding the Free Nanoparticles in the Aqueous Continuous Phase. Langmuir. 26, 7981-7987 (2010).
  47. Guillot, S., Bergaya, F., de Azevedo, C., Warmont, F., Tranchant, J. F. Internally structured pickering emulsions stabilized by clay mineral particles. J. Colloid Interface Sci. 333, 563-569 (2009).
  48. Muller, F., Salonen, A., Glatter, O. Monoglyceride-based cubosomes stabilized by Laponite: Separating the effects of stabilizer, pH and temperature. Colloids Surf., A. 358, 50-56 (2010).
  49. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Dispersions of Internally Liquid Crystalline Systems Stabilized by Charged Disklike Particles as Pickering Emulsions: Basic Properties and Time-Resolved. Langmuir. 24, 5306-5314 (2008).
  50. Gaunt, N. P., Patil-Sen, Y., Baker, M. J., Kulkarni, C. V. Carbon nanotubes for stabilization of nanostructured lipid particles. Nanoscale. 7, 1090-1095 (2015).
  51. Pickerings, S. U. Emulsions. J. Chem. Soc. 91, (2001).
  52. Ramsden, W. Separation of Solids in the Surface-Layers of Solutions and ‘Suspensions’ (Observations on Surface-Membranes, Bubbles, Emulsions, and Mechanical Coagulation). — Preliminary Account. Proceedings of the Royal Society of London. 72, 156-164 (1903).
  53. Lin, Y., et al. Advances toward bioapplications of carbon nanotubes. J. Mater. Chem. 14, 527-541 (2004).
  54. Saito, N., et al. Safe Clinical Use of Carbon Nanotubes as Innovative Biomaterials. Chem. Rev. 114, 6040-6079 (2014).
  55. Pulskamp, K., Diabate, S., Krug, H. F. Carbon nanotubes show no sign of acute toxicity but induce intracellular reactive oxygen species in dependence on contaminants. Toxicol. Lett. 168, 58-74 (2007).
  56. Smart, S. K., Cassady, A. I., Lu, G. Q., Martin, D. J. The biocompatibility of carbon nanotubes. Carbon. 44, 1034-1047 (2006).
  57. Colvin, V. L. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nat. Biotechnol. 21, 1166-1170 (2003).
  58. Firme, C. P., Bandaru, P. R. Toxicity issues in the application of carbon nanotubes to biological systems. Nanomed-Nanotechnol. 6, 245-256 (2010).
  59. Haddon, R. C. Carbon nanotubes. Accounts Chem. Res. 35, 997-997 (2002).
  60. Kapralov, A. A., et al. Adsorption of Surfactant Lipids by Single-Walled Carbon Nanotubes in Mouse Lung upon Pharyngeal Aspiration. Acs Nano. 6, 4147-4156 (2012).
  61. Wallace, E. J., Mark, S. P. S. Carbon nanotube self-assembly with lipids and detergent: a molecular dynamics study. Nanotechnology. 20, 045101 (2009).
  62. George, R. B. Chest medicine: essentials of pulmonary and critical care medicine. Lippincott Williams & Wilkins. , (2005).
  63. Monteiro-Riviere, N. A., Nemanich, R. J., Inman, A. O., Wang, Y. Y., Riviere, J. E. Multi-walled carbon nanotube interactions with human epidermal keratinocytes. Toxicol. Lett. 155, 377-384 (2005).
  64. Shvedova, A., et al. Exposure to carbon nanotube material: assessment of nanotube cytotoxicity using human keratinocyte cells. J. Toxicol. Env. Heal. A. 66, 1909-1926 (2003).
  65. Jia, G., et al. Cytotoxicity of carbon nanomaterials: single-wall nanotube, multi-wall nanotube, and fullerene. Environ. Sci. Technol. 39, 1378-1383 (2005).
  66. Sato, Y., et al. Influence of length on cytotoxicity of multi-walled carbon nanotubes against human acute monocytic leukemia cell line THP-1 in vitro and subcutaneous tissue of rats in vivo. Mol. BioSyst. 1, 176-182 (2005).
  67. Bottini, M., et al. Multi-walled carbon nanotubes induce T lymphocyte apoptosis. Toxicol. Lett. 160, 121-126 (2006).
  68. Cui, D., Tian, F., Ozkan, C. S., Wang, M., Gao, H. Effect of single wall carbon nanotubes on human HEK293 cells. Toxicol. Lett. 155, 73-85 (2005).
  69. Huang, T., Toraya, H., Blanton, T., Wu, Y. X-ray powder diffraction analysis of silver behenate, a possible low-angle diffraction standard. J. Appl. Crystallogr. 26, 180-184 (1993).
  70. Bokobza, L., Zhang, J. Raman spectroscopic characterization of multiwall carbon nanotubes and of composites. Express Polym. Lett. 6, 601-608 (2012).
  71. Zhao, Q., Wagner, H. D. Raman spectroscopy of carbon-nanotube-based composites. Philos. Trans. R. Soc. London, Ser. A -Math. Phys. Eng. Sci. 362, 2407-2424 (2004).
  72. Douroumis, D., Fatouros, D. G., Bouropoulos, N., Papagelis, K., Tasis, D. Colloidal stability of carbon nanotubes in an aqueous dispersion of phospholipid. Int. J. Nanomed. 2, 761-766 (2007).
  73. Worthington, R. J., Melander, C. Combination approaches to combat multidrug-resistant bacteria. Trends Biotechnol. 31, 177-184 (2013).

Tags

Carbon NanotubesLipid ParticlesSelf-assemblyEmulsionNanostructureSurfactantSonicationDimodan UPhytantriolF127Hydroxyl-functionalized CNTsCarboxyl-functionalized CNTs

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citar este artigo
Patil-Sen, Y., Sadeghpour, A., Rappolt, M., Kulkarni, C. V. Facile Preparation of Internally Self-assembled Lipid Particles Stabilized by Carbon Nanotubes. J. Vis. Exp. (108), e53489, doi:10.3791/53489 (2016).
Baixar citação
Reimpressões e Permissões

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image