JoVE Journal > Chemistry
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Resultados
Discussion
Declarações
Acknowledgements
Materials
Referências
Tadução automática
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Química

Karbon Nanotüpler tarafından Stabilize İçeriden Kendinden monte Lipid Parçacıklar uyduruk hazırlanması

Published: February 19, 2016
doi:
10.3791/53489
, , ,
1Centre for Materials Science, School of Physical Sciences and Computing,University of Central Lancashire, 2School of Food Science & Nutrition,University of Leeds

Summary

We report on a smart application of carbon nanotubes for kinetic stabilization of lipid particles that contain self-assembled nanostructures in their cores. The preparation of lipid particles requires rather low concentrations of carbon nanotubes permitting their use in biomedical applications such as drug delivery.

Abstract

Biz karbon nanotüpler (CNT) tarafından stabilize nano yapılı lipid parçacıkları hazırlamak için bir kolay yöntem mevcut. duvarlı Yalnız (saf) ve çok duvarlı (fonksiyonalize) CNT Pickering tipi yağ-içinde-su (W / O) emülsiyonları üretmek için stabilize edici olarak kullanılır. Lipidler, yani Dimodan U ve fitantriol fazla suyun çift sürekli kübik Pn3m faz halinde kendi kendine birleşebilen emülgatörler kullanılmaktadır. Bu yüksek viskoz faz, geleneksel yüzey aktif madde stabilizatörler ya da CNTs Burada yapıldığı gibi mevcudiyetinde bir prob ultrasonikatör kullanılarak küçük parçacıklara parçalanır. Başlangıçta, CNT (toz halinde), son emülsiyonun oluşturulması için, erimiş lipid daha ultrasonikasyon ve ardından su içinde disperse edilir. Bu işlem sırasında CNT da ay stabil olan bir parçacık halinde bir emülsiyon meydana getirmek üzere, lipid damlacıkları çevreleyen olduğu kabul edilir lipit molekülleri ile kaplanmasıyla. CNT-stabilize nano yapılı lipid parçacıkların ortalama boyutu mikron altı r olanparçacıklar ile karşılaştırır ange, geleneksel yüzey aktif kullanılarak stabilize. Saf lipid fazı (dökme devlet) ile karşılaştırıldığında küçük açı X-ışını saçılması veri CNT-stabilize lipid dispersiyonlan orijinal Pn3m kübik faz tutma doğruluyor. Maviye kayma ve karakteristik G ve Raman spektroskopisi gözlenen CNTs G 'bantlarında yoğunlukları düşürülmesi CNT yüzeyi ve lipid molekülleri arasındaki etkileşimi karakterize eder. Bu sonuçlar, CNTs ve lipid arasındaki etkileşimler, sulu çözeltiler içinde, karşılıklı stabilizasyonu için sorumlu olduğunu göstermektedir. stabilizasyon için kullanılan CNTs konsantrasyonu çok düşüktür ve lipit molekülleri CNT işlevselleştirilmesi mümkün olduğu gibi, CNTs toksisitesi kendi biyouyumluluk oldukça gelişmiş ise önemsiz olduğu tahmin edilmektedir. Bu nedenle, bu yaklaşım, m verilmesi için hibrid nanocarrier sistemleri geliştirmek için, örneğin, çeşitli biyomedikal uygulamalarda büyük bir potansiyele bulurultiple bileşik tedavide ya da çoklu tedaviye olarak işlevsel moleküller.

Introduction

Son birkaç yılda, nanoteknoloji, özellikle kanser 1 olarak azılı hastalıklarla mücadele için ilaç klinik öncesi geliştirme alanında güçlü bir araç olarak ortaya çıkmıştır. Bu bağlamda, yoğun böyle ilaçların, proteinler, nükleik asitler, gen ve teşhis görüntüleme maddeleri 1-4 olarak çeşitli aktif biyomoleküllerin dağıtım aracı olarak incelenmiştir mil boyutu <1.000 ile nano ölçekli yapılar. Bu biyomoleküllerin da nanopartiküller kapsüllenen veya nanopartiküllerin yüzeyi üzerine konjüge edilmiş ve bu pH ya da ısı 5,6 şekilde tetikleyiciler tarafından etki yerinde bırakılır edilir. boyut olarak çok küçük olmasına rağmen, bu nanopartiküller büyük yüzey alanı, aktif biyomoleküllerin hedeflenmiş dağılım için büyük ölçüde avantajlı olduğunu kanıtlamaktadır. Parçacık boyutu ve biyolojik uyumluluk üzerinde kontrol terapötik etkinliği ve dolayısıyla nanopartiküller 7,8 uygulanabilirliğini optimize etmek için büyük önem taşımaktadır.Lipidler 9-13, polimerler 14,15, metaller 16,17 ve karbon nanotüpler 18,19 sık çeşitli biyomedikal ve ilaç uygulamaları için nanocarriers olarak istihdam edilmiştir.

Ayrıca, lipit kendi kendini monte nanoyapıların dayalı nanocarrier uygulamaları, gıda ve kozmetik endüstrileri 20,21 dahil olmak üzere birçok diğer disiplinlerde geniş bir öneme sahiptir. Örneğin, bu tatlılar 24, örneğin gıda stabilizatörleri olarak, protein kristalleştirme 22 biyomoleküllerin 23 ayrılmasında kullanılan ve bu besin maddeleri, aromalar ve parfümler 25-31 aktif moleküllerin teslim edilir. Kendinden monte lipit nanoyapılar ancak kontrollü ve hedeflenen bir şekilde 32-38 biyoaktif molekülleri serbest yeteneğine sahip değil ama onlar da kimyasal ve enzimatik yıkımı 39,40 fonksiyonel molekülleri korumak edebiliyoruz. düzlemsel akışkan iki tabakalı en comm olmasına rağmensuyun mevcudiyetinde amfifilik lipit moleküllerinin oluşturduğu nano üzerinde örneğin altıgen ve kübik gibi diğer yapılar da genel olarak 20,41,42 görülmektedir. Oluşan nano tipi Lipitler "moleküler şekil yapısı, su içinde yağ bileşimi hem de sıcaklık ve basınç 43 gibi kullanılan fiziko-kimyasal koşullarına bağlıdır. düzlemsel olmayan lipid nano uygulanabilirliği özellikle de kübik fazlarının, çünkü onların yüksek viskozite ve homojen olmayan etki tutarlılık sınırlıdır. Bu sorunlar, bir yağ-içinde-su (W / O) mikron veya mikron altı boyutta lipid parçacıkları içeren emülsiyonlar oluşturmak üzere su içinde büyük miktarda lipid nano dağıtılmasıyla yenilmektedir. dağılmış parçacıklar içindeki orijinal yağ kendi kendine monte edilmiş yapısını koruyarak Bu şekilde, düşük bir viskozite uygun bir ürün hazırlanabilir. ISAsomes 44 olarak kısaltılmıştır, bu dahili kendi kendini monte parçacıkların oluşumu ( </sup> Örneğin, kübik fazlar ve altıgen fazlardan hexosomes) gelen cubosomes yaygın olarak, yüksek enerji girişinin adımı ve bu tür yüzey aktif veya polimerler gibi stabilizatörler ilave bir kombinasyonunu gerektirir. Bu doğrultuda son araştırmalar silika nanopartiküller 46, uygun Pickering 51 veya Ramsden-Pickering emülsiyonlar 52 olarak adlandırılan Anılan emülsiyonlar, stabilizasyonu için kil 47-49 ve karbon nanotüpler 50 dahil olmak üzere çeşitli katı parçacıkların 45 uygulamasını göstermektedir.

Son yıllarda, karbon gibi tek duvarlı karbon nanotüpler (SWCNTs) olarak nano tabanlı, çok duvarlı karbon nanotüpler (MWCNTs) ve fulleren yeni biyomalzeme 53,54 olarak dikkat büyük bir aldık. Ana endişeleri onların toksisite 55-58, su insolubility 59 ve dolayısıyla onların biyouyumluluk 56 vardır. Bu sorunları çözmek için etkili bir yöntem yüzey işleviBu lipidler gibi toksik olmayan ve biyo-uyumlu molekülleri kullanarak layan serbestleştirme. Suyun varlığında, lipidler, lipid hidrofilik baş grupları su 60,61 bunların çözünürlüğü veya dağılmasına yardımcı ise CNTs hidrofobik yüzey polar sulu ortamdan korunacak şekilde CNTs etkileşim. Lipidler dolayısıyla dekorasyon ideal CNTs de vivo toksisite azaltmalıdır, hücresel organellere yanı sıra bazı gıda maddelerinin ayrılmaz bileşenleridir. CNTs 18,19 ve lipid nano 9-13 bağımsız Dayalı Biyomedikal uygulamalar geniş geliştirilme aşamasındadır ama iki özelliklerini birleştiren uygulamalar henüz iyi araştırılmış değildir.

Bu çalışmada, lipidlerin iki farklı tip ve MWCNTs hidroksil ve karboksil gruplarıyla beraber çalışanlar- oysa SWCNTs bozulmamış biçimde olmak üzere CNTs üç tip kullanmaktadır. Bu yazıda, dispersiyonlar hazırlamak için CNTs çok düşük konsantrasyonlarda kullanılmışStabilite çeşitli faktörler, örneğin, lipid türü CNT Çeşidi CNT kullanılan, hem de güç ve süresi gibi kullanılan sonikasyon parametreleri üzerinde lipidin oranına bağlıdır. Bu video protokolü kinetik çeşitli CNT-stabilize edici maddeler kullanılarak lipit nanopartiküller stabilize bir yöntemin teknik detayları sağlar.

Protocol

Dikkat: Bu çalışmada kullanılan CNT hacim olarak muadillerine göre daha fazla tehlike olabilir nanopartikülat formunda bulunmaktadır. Grafit solunması, hem doğal hem sentetik, kömür işçilerinde görülen pnömokonyoz benzer pnömokonyoz 62 neden olabilir. Ayrıca, CNTs 63-68 inhalasyonu ile ilişkili akut ve kronik toksisite karbon bazlı nanoyapılarda toksisitesi ve önceki çalışmaların bazıları ile ilgili endişeler var öneririz olmuştur. Bu nedenle, ince CNT tozu solumaktan kaçınmak ve büyü…

Representative Results

Aşağıdaki sonuçlar dispersiyonların a) stabilite, lipid parçacıkları b) boyutu dağılımına, kendini montaj ve D C) tipi) CNTs lipid kaplama için kanıt oluşturmaktadır. Dağılımların kararlılık (Şekil 2) otomatik odaklama ve LED flaşlı 5 MP kamera ile izlendi. Şekil 2. Durağan emülsiyonlar sadece b…

Discussion

Lipit partiküllerinin stabilizasyonu
Üç farklı CNT lipid dispersiyonlarının stabilize etmek için kullanılırlar; iki çok duvarlı ve -OH ve -COOH grupları kullanılarak işlevselleştirilmiş olan ve bir duvarlı ve (bozulmamış) işlevselleştirilmemiş tektir. MWCNT-COOH: (çap x uzunluk) aşağıda CNTs içinde gösterilmekte 9.5 mil x 1.5 um; MWCNT-OH: 15/8 nm x 50 mm; SWCNT x 1-3 um 1-2 mil. toz haline getirilmiş CNT prob ultrasonikasyonla su içinde dağıtılmıştır. CNTs yuk…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz bu proje onun önceki çalışmaları için Raman deneyler ve Bay Nick Gaunt ile destek için, Strathclyde Üniversitesi'nde şimdi, Glasgow Dr. Matthew J. Baker teşekkür etmek istiyorum.

Materials

Dimodan U Danisco 15312 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Phytantriol (> 95%, GC) TCI Europe N.V. P1674 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Single walled Carbon Nanotubes (90%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc.  1246YJS Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Multi-walled carboxylic acid functionalised Carbon Nanotubes (> 80% Caron basis, > 8% carboxylic acid functionalized) Sigma-Aldrich Co. LLC  755125 Store at room temperature. Away from direct light. Causes serious eye irritation. May cause respiratory irritation
Graphitized Multi-walled hydroxy functionalised Carbon Nanotubes (99.9%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc. (NanoAmor)  1224YJF Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Pluronic F127 Sigma-Aldrich Co. LLC  P2443 BioReagent, suitable for cell culture. Not a hazardous substance or mixture. Store at room temperature.
Acetone (99.5%) Fisher Scientific  10134100 Highly flammable liquid. Causes serious eye irritation. May cause drowsiness or dizziness
Scintillation Vial VWR International Ltd 548‐0704 Soda‐lime glass vial with low background count Fitted with foil lined urea cap, 20 ml
Jars with loose, enfolding lids (375ml) VWR International Ltd 216-3308
Beaker , 1000mL Fisher Scientific  12942161 heavy duty, low form, with spout and graduations
Pasteur glass pipette (150 mm length) with latex bulb Fisher Scientific  10006021
Microcentrifuge tube conical snap cap 1.5mL Fisher Scientific  11558232
Spatula Fisher Scientific  11352204
Heating magnetic stirrer Fisher Scientific  11715704
Magnetic stirrer bars (cylindrical, opaque PTFE, 30mm x 7mm (l x diameter)) Fisher Scientific  10011792
Needle (0.9 mm x 40 mm cannula length) Terumo UK Ltd MN-2038MQ
Retort Stand Set – With stand, clamp, base, rod, rubber 3 jaw and bosshead Camlab Ltd, UK 1177157
Millipore water equipment Barnstead Nanopure, Thermoscientific, USA
Progen Genfuge 24D Digital Microcentrifuge Progen Scientific C-2400
Probe ultra-sonicator, with 13 mm  SONICS, Vibracell,  USA
5MP camera with auto-focus and LED flash Samsung Galaxy Fame Mobile camera
Raman Spectrometer Horiba Jobin-Yvon LabRAM HR800 spectrometer
Mastersizer 3000  Malvern Instruments Ltd, Malvern, United Kingdom
Small angle X-ray scattering (SAXS) SAXSpace camera (Anton Paar, Graz, Austria), X-ray generating equipment (ISO-DEBYEFLEX3003, GE Inspection Technologies GmbH), closed water circuit (Chilly 35, HYFRA, Germany). 
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referências

  1. Peer, D., et al. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nature Nanotech. 2, 751-760 (2007).
  2. White, R. R., Sullenger, B. A., Rusconi, C. P. Developing aptamers into therapeutics. J. Clin. Invest. 106, 929-934 (2000).
  3. Itaka, K., Chung, U. I., Kataoka, K. Supramolecular nanocarrier for gene and siRNA delivery. Nippon Rinsho Jpn. J. Clin. Med. 64, 253-257 (2006).
  4. Xu, S., et al. Development of pH-responsive core-shell nanocarriers for delivery of therapeutic and diagnostic agents. Bioorg. Med. Chem. Lett. 19, 1030-1034 (2009).
  5. Soppimath, K. S., Tan, D. C. W., Yang, Y. Y. pH-triggered thermally responsive polymer core-shell nanoparticles for drug delivery. Adv. Mater. 17, 318-323 (2005).
  6. Hans, M., Lowman, A. Biodegradable nanoparticles for drug delivery and targeting. Curr. Opin. Solid State Mater. Sci. 6, 319-327 (2002).
  7. Petros, R. A., DeSimone, J. M. Strategies in the design of nanoparticles for therapeutic applications. Nat Rev Drug Discov. 9, 615-627 (2010).
  8. Torchilin, V. P. Multifunctional nanocarriers. Adv Drug Deliver Rev. 64, 302-315 (2012).
  9. Shmeeda, H., et al. Delivery of zoledronic acid encapsulated in folate-targeted liposome results in potent in vitro cytotoxic activity on tumor cells. J. Controlled Release. 146, 76-83 (2010).
  10. Xu, Z., et al. The performance of docetaxel-loaded solid lipid nanoparticles targeted to hepatocellular carcinoma. Biomaterials. 30, 226-232 (2009).
  11. Rosenthal, E., et al. Phase IV study of liposomal daunorubicin (DaunoXome) in AIDS-related Kaposi sarcoma. Am. J. Clin. Oncol.-Canc. 25, 57-59 (2002).
  12. Dong, Y. D., Larson, I., Bames, T. J., Prestidge, C. A., Boyd, B. J. Adsorption of Nonlamellar Nanostructured Liquid-Crystalline Particles to Biorelevant Surfaces for Improved Delivery of Bioactive Compounds. Acs Appl Mater Inter. 3, 1771-1780 (2011).
  13. Rizwan, S. B., Boyd, B. J., Rades, T., Hook, S. Bicontinuous cubic liquid crystals as sustained delivery systems for peptides and proteins. Expert Opin. Drug. Deliv. 7, 1133-1144 (2010).
  14. Yoo, H. S., Park, T. G. Folate receptor targeted biodegradable polymeric doxorubicin micelles. J. Controlled Release. 96, 273-283 (2004).
  15. Khandare, J. J., et al. Dendrimer versus linear conjugate: Influence of polymeric architecture on the delivery and anticancer effect of paclitaxel. Bioconjug. Chem. 17, 1464-1472 (2006).
  16. Prabaharan, M., Grailer, J. J., Pilla, S., Steeber, D. A., Gong, S. Gold nanoparticles with a monolayer of doxorubicin-conjugated amphiphilic block copolymer for tumor-targeted drug delivery. Biomaterials. 30, 6065-6075 (2009).
  17. Fan, J., et al. Targeted anticancer prodrug with mesoporous silica nanoparticles as vehicles. Nanotechnology. 22, (2011).
  18. Bianco, A., Prato, M. Can carbon nanotubes be considered useful tools for biological applications?. Adv. Mater. 15, 1765-1768 (2003).
  19. Kam, N. W. S., Dai, H. J. Carbon nanotubes as intracellular protein transporters: Generality and biological functionality. J. Am. Chem. Soc. 127, 6021-6026 (2005).
  20. Kulkarni, C. V. Lipid crystallization: from self-assembly to hierarchical and biological ordering. Nanoscale. 4, 5779-5791 (2012).
  21. Yaghmur, A., et al. . Drug Formulations Based on Self-Assembled Liquid Crystalline Nanostructures. , 341-360 (2014).
  22. Kulkarni, C. V. . Advances in Planar Lipid Bilayers and Liposomes. 12, 237-272 (2010).
  23. Landau, E. M., Navarro, J. V. . US Pat. , (2001).
  24. Kulkarni, C., Belsare, N., Lele, A. Studies on shrikhand rheology. J. Food Eng. 74, 169-177 (2006).
  25. Mezzenga, R., Schurtenberger, P., Burbidge, A., Michel, M. Understanding foods as soft materials. Nature Mater. 4, 729-740 (2005).
  26. Ubbink, J., Burbidge, A., Mezzenga, R. Food structure and functionality: a soft matter perspective. Soft Matter. 4, 1569-1581 (2008).
  27. Dong, Y. D., Larson, I., Hanley, T., Boyd, B. J. Bulk and dispersed aqueous phase behavior of phytantriol: effect of vitamin E acetate and F127 polymer on liquid crystal nanostructure. Langmuir. 22, 9512-9518 (2006).
  28. Yaghmur, A., Glatter, O. Characterization and potential applications of nanostructured aqueous dispersions. Adv. Colloid Interface Sci. 147, 333-342 (2009).
  29. Pardeike, J., Hommoss, A., Müller, R. H. Lipid nanoparticles (SLN, NLC) in cosmetic and pharmaceutical dermal products. Int. J. Pharm. 366, 170-184 (2009).
  30. Yaghmur, A., Rappolt, M., Østergaard, J., Larsen, C., Larsen, S. W. Characterization of bupivacaine-loaded formulations based on liquid crystalline phases and microemulsions: the effect of lipid composition. Langmuir. 28, 2881-2889 (2012).
  31. Singh, H., Ye, A., Horne, D. Structuring food emulsions in the gastrointestinal tract to modify lipid digestion. Prog. Lipid Res. 48, 92-100 (2009).
  32. Angelova, A., Angelov, B., Mutafchieva, R., Lesieur, S., Couvreur, P. Self-Assembled Multicompartment Liquid Crystalline Lipid Carriers for Protein, Peptide, and Nucleic Acid Drug Delivery. Accounts Chem. Res. 44, 147-156 (2011).
  33. Clogston, J., Caffrey, M. Controlling release from the lipidic cubic phase. Amino acids, peptides, proteins and nucleic acids. J. Controlled Release. 107, 97-111 (2005).
  34. Shah, J. C., Sadhale, Y., Chilukuri, D. M. Cubic phase gels as drug delivery systems. Adv. Drug Deliver. Rev. 47, 229-250 (2001).
  35. Boyd, B. J., Whittaker, D. V., Khoo, S. M., Davey, G. Lyotropic liquid crystalline phases formed from glycerate surfactants as sustained release drug delivery systems. Int. J. Pharm. 309, 218-226 (2006).
  36. Drummond, C. J., Fong, C. Surfactant self-assembly objects as novel drug delivery vehicles. Curr. Opin. Colloid Interface Sci. 4, 449-456 (1999).
  37. Zhao, X. Y., Zhang, J., Zheng, L. Q., Li, D. H. Studies of cubosomes as a sustained drug delivery system. J. Dispersion Sci. Technol. 25, 795-799 (2004).
  38. Malmsten, M. Phase transformations in self-assembly systems for drug delivery applications. J. Dispersion Sci. Technol. 28, 63-72 (2007).
  39. Sadhale, Y., Shah, J. C. Stabilization of insulin against agitation-induced aggregation by the GMO cubic phase gel. Int. J. Pharm. 191, 51-64 (1999).
  40. Amar-Yuli, I., Azulay, D., Mishraki, T., Aserin, A., Garti, N. The role of glycerol and phosphatidylcholine in solubilizing and enhancing insulin stability in reverse hexagonal mesophases. J. Colloid Interface Sci. 364, 379-387 (2011).
  41. Rappolt, M., Leitmannova Liu, A. . Advances in planar lipid bilayers and liposomes. 5, 253-283 (2006).
  42. Rappolt, M., Cacho-Nerin, F., Morello, C., Yaghmur, A. How the chain configuration governs the packing of inverted micelles in the cubic Fd 3 m-phase. Soft Matter. 9, 6291-6300 (2013).
  43. Kulkarni, C. V., Wachter, W., Iglesias-Salto, G., Engelskirchen, S., Ahualli, S. Monoolein: a magic lipid?. Phys. Chem. Chem. Phys. 13, 3004-3021 (2011).
  44. Yaghmur, A., de Campo, L., Sagalowicz, L., Leser, M. E., Glatter, O. Emulsified Microemulsions and Oil-Containing Liquid Crystalline Phases. Langmuir. 21, 569-577 (2005).
  45. Kulkarni, C. V., Glatter, O., Nissim, G. Ch. 6. Self-Assembled Supramolecular Architectures: Lyotropic Liquid Crystals.Surface and Interfacial Chemistry. , (2012).
  46. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Internally Self-Assembled Submicrometer Emulsions Stabilized by Spherical Nanocolloids: Finding the Free Nanoparticles in the Aqueous Continuous Phase. Langmuir. 26, 7981-7987 (2010).
  47. Guillot, S., Bergaya, F., de Azevedo, C., Warmont, F., Tranchant, J. F. Internally structured pickering emulsions stabilized by clay mineral particles. J. Colloid Interface Sci. 333, 563-569 (2009).
  48. Muller, F., Salonen, A., Glatter, O. Monoglyceride-based cubosomes stabilized by Laponite: Separating the effects of stabilizer, pH and temperature. Colloids Surf., A. 358, 50-56 (2010).
  49. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Dispersions of Internally Liquid Crystalline Systems Stabilized by Charged Disklike Particles as Pickering Emulsions: Basic Properties and Time-Resolved. Langmuir. 24, 5306-5314 (2008).
  50. Gaunt, N. P., Patil-Sen, Y., Baker, M. J., Kulkarni, C. V. Carbon nanotubes for stabilization of nanostructured lipid particles. Nanoscale. 7, 1090-1095 (2015).
  51. Pickerings, S. U. Emulsions. J. Chem. Soc. 91, (2001).
  52. Ramsden, W. Separation of Solids in the Surface-Layers of Solutions and ‘Suspensions’ (Observations on Surface-Membranes, Bubbles, Emulsions, and Mechanical Coagulation). — Preliminary Account. Proceedings of the Royal Society of London. 72, 156-164 (1903).
  53. Lin, Y., et al. Advances toward bioapplications of carbon nanotubes. J. Mater. Chem. 14, 527-541 (2004).
  54. Saito, N., et al. Safe Clinical Use of Carbon Nanotubes as Innovative Biomaterials. Chem. Rev. 114, 6040-6079 (2014).
  55. Pulskamp, K., Diabate, S., Krug, H. F. Carbon nanotubes show no sign of acute toxicity but induce intracellular reactive oxygen species in dependence on contaminants. Toxicol. Lett. 168, 58-74 (2007).
  56. Smart, S. K., Cassady, A. I., Lu, G. Q., Martin, D. J. The biocompatibility of carbon nanotubes. Carbon. 44, 1034-1047 (2006).
  57. Colvin, V. L. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nat. Biotechnol. 21, 1166-1170 (2003).
  58. Firme, C. P., Bandaru, P. R. Toxicity issues in the application of carbon nanotubes to biological systems. Nanomed-Nanotechnol. 6, 245-256 (2010).
  59. Haddon, R. C. Carbon nanotubes. Accounts Chem. Res. 35, 997-997 (2002).
  60. Kapralov, A. A., et al. Adsorption of Surfactant Lipids by Single-Walled Carbon Nanotubes in Mouse Lung upon Pharyngeal Aspiration. Acs Nano. 6, 4147-4156 (2012).
  61. Wallace, E. J., Mark, S. P. S. Carbon nanotube self-assembly with lipids and detergent: a molecular dynamics study. Nanotechnology. 20, 045101 (2009).
  62. George, R. B. Chest medicine: essentials of pulmonary and critical care medicine. Lippincott Williams & Wilkins. , (2005).
  63. Monteiro-Riviere, N. A., Nemanich, R. J., Inman, A. O., Wang, Y. Y., Riviere, J. E. Multi-walled carbon nanotube interactions with human epidermal keratinocytes. Toxicol. Lett. 155, 377-384 (2005).
  64. Shvedova, A., et al. Exposure to carbon nanotube material: assessment of nanotube cytotoxicity using human keratinocyte cells. J. Toxicol. Env. Heal. A. 66, 1909-1926 (2003).
  65. Jia, G., et al. Cytotoxicity of carbon nanomaterials: single-wall nanotube, multi-wall nanotube, and fullerene. Environ. Sci. Technol. 39, 1378-1383 (2005).
  66. Sato, Y., et al. Influence of length on cytotoxicity of multi-walled carbon nanotubes against human acute monocytic leukemia cell line THP-1 in vitro and subcutaneous tissue of rats in vivo. Mol. BioSyst. 1, 176-182 (2005).
  67. Bottini, M., et al. Multi-walled carbon nanotubes induce T lymphocyte apoptosis. Toxicol. Lett. 160, 121-126 (2006).
  68. Cui, D., Tian, F., Ozkan, C. S., Wang, M., Gao, H. Effect of single wall carbon nanotubes on human HEK293 cells. Toxicol. Lett. 155, 73-85 (2005).
  69. Huang, T., Toraya, H., Blanton, T., Wu, Y. X-ray powder diffraction analysis of silver behenate, a possible low-angle diffraction standard. J. Appl. Crystallogr. 26, 180-184 (1993).
  70. Bokobza, L., Zhang, J. Raman spectroscopic characterization of multiwall carbon nanotubes and of composites. Express Polym. Lett. 6, 601-608 (2012).
  71. Zhao, Q., Wagner, H. D. Raman spectroscopy of carbon-nanotube-based composites. Philos. Trans. R. Soc. London, Ser. A -Math. Phys. Eng. Sci. 362, 2407-2424 (2004).
  72. Douroumis, D., Fatouros, D. G., Bouropoulos, N., Papagelis, K., Tasis, D. Colloidal stability of carbon nanotubes in an aqueous dispersion of phospholipid. Int. J. Nanomed. 2, 761-766 (2007).
  73. Worthington, R. J., Melander, C. Combination approaches to combat multidrug-resistant bacteria. Trends Biotechnol. 31, 177-184 (2013).

Tags

Keywords: Carbon NanotubesLipid ParticlesSelf-assemblyEmulsionNanostructureSurfactantSonicationDimodan UPhytantriolF127Hydroxyl-functionalized CNTsCarboxyl-functionalized CNTs
check_url/pt/53489?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citar este artigo
Patil-Sen, Y., Sadeghpour, A., Rappolt, M., Kulkarni, C. V. Facile Preparation of Internally Self-assembled Lipid Particles Stabilized by Carbon Nanotubes. J. Vis. Exp. (108), e53489, doi:10.3791/53489 (2016).
Baixar citação
Reimpressões e Permissões

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image