JoVE Journal > Chemistry
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Resultados
Discussion
Declarações
Acknowledgements
Materials
Referências
Tadução automática
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Química

Facile Получение Внутренне самоорганизующейся липидов частиц, стабилизированных углеродных нанотрубок

Published: February 19, 2016
doi:
10.3791/53489
, , ,
1Centre for Materials Science, School of Physical Sciences and Computing,University of Central Lancashire, 2School of Food Science & Nutrition,University of Leeds

Summary

We report on a smart application of carbon nanotubes for kinetic stabilization of lipid particles that contain self-assembled nanostructures in their cores. The preparation of lipid particles requires rather low concentrations of carbon nanotubes permitting their use in biomedical applications such as drug delivery.

Abstract

Мы представляем легкое способ получения наноструктурированных липидные частицы, стабилизированные углеродных нанотрубок (УНТ). Однослойных (нетронутой) и многослойные (функционализированные) УНТ используются в качестве стабилизаторов для получения масла-в-воде (O / W) эмульсии типа Пикеринг. Липиды именно Dimodan U и Фитантриол используются в качестве эмульгаторов, которые в избытке воды самособираются в биконтинуальной кубический Pn3m фазе. Это очень вязкий фаза раздроблена на мелкие частицы с помощью зонда ультразвукового дезинтегратора в присутствии обычных стабилизаторов поверхностно или УНТ, как это сделано здесь. Первоначально, углеродные нанотрубки (порошок форма) диспергируют в воде с последующим дальнейшим ультразвуком с расплавленным липидов с образованием конечной эмульсии. В ходе этого процесса углеродные нанотрубки получают покрытые липидных молекул, которые, в свою очередь, как предполагается, чтобы окружить липидные капли с образованием эмульсии частиц, который является стабильным в течение нескольких месяцев. Средний размер CNT-стабилизированных наноструктурных частиц липидов находится в субмикронного гАнж, которая сравнивается хорошо с частицами стабилизировалась, используя обычные поверхностно-активные вещества. Малый угол данных рентгеновского рассеяния подтверждает сохранение первоначального Pn3m кубической фазы в CNT-стабилизированных липидных дисперсий по сравнению с чистым липидной фазе (объемное состояние). Голубой сдвиг и понижение интенсивности в характеристике G и G 'полос УНТ, наблюдаемых в спектроскопии комбинационного рассеяния характеризуют взаимодействие между поверхностными и липидных молекул УНТ. Эти результаты свидетельствуют о том, что взаимодействие между УНТ и липидов несут ответственность за их взаимного стабилизации в водных растворах. Как концентрации нанотрубок, используемых для стабилизации очень низки и липидные молекулы способны функционализации УНТ, токсичность углеродных нанотрубок, как ожидается, будет незначительным, а их биосовместимость значительно усиливается. Таким образом, настоящее подход находит большой потенциал в различных биомедицинских применений, например, для разработки гибридных систем nanocarrier для доставки месколько функциональные молекулы как в комбинированной терапии или политерапии.

Introduction

За последние несколько десятилетий, нанотехнологии стала мощным инструментом, особенно в области доклинической разработки лекарств для борьбы с пресловутые заболеваний, таких как рак 1. В этом контексте, наноразмерные структуры с размером <1,000 нм широко изучены в качестве средства доставки различных активных биомолекул, таких как лекарственные средства, белки, нуклеиновые кислоты, гены и диагностических визуализирующих агентов 1-4. Эти биомолекулы либо инкапсулировать в наночастицы или конъюгированы на поверхность наночастиц и высвобождаются в месте действия через триггеры, таких как рН или температуры 5,6. Хотя чрезвычайно малы по размеру, большая площадь поверхности этих наночастиц оказывается значительно выгоднее для направленной доставки активных биомолекул. Контроль за размером частиц и биосовместимости имеет первостепенное значение для того, чтобы оптимизировать терапевтическую эффективность, а следовательно, применимость наночастиц 7,8.Липиды 9-13, полимеры, металлы 14,15 16,17 и углеродных нанотрубок 18,19 были широко использованы в качестве наноносителей для различных биомедицинских и фармацевтических применений.

Кроме того, nanocarrier приложения, основанные на липидных самоорганизующихся наноструктур имеют широкий смысл во многих других областях, включая пищевой и косметической промышленности 20,21. Например, они используются в кристаллизации белков 22, разделения биомолекул 23, в качестве пищевых стабилизаторов например, в десертах 24, и в доставке активных молекул, таких как питательные вещества, ароматизаторы и отдушки 25-31. Самоорганизующиеся липидные наноструктуры не только способностью высвобождать биоактивных молекул в контролируемой и целенаправленно 32-38, но они также способны защитить функциональные молекулы из химической и ферментативной деградации 39,40. Хотя плоская двухслойная жидкость является самым коммна наноструктуры, сформированной путем амфифильных молекул липидов в присутствии воды, другие структуры, такие как гексагональной и кубической также обычно наблюдается 20,41,42. Тип наноструктуры сформированы зависеть от структуры молекулярной формы липидов », состав липидов в воде, а также на физико-химических условий, используемых таких как температура и давление 43. Применимость неплоских липидных наноструктур особенно кубических фаз, ограничено из-за их высокой вязкости и консистенции неоднородного домена. Эти проблемы преодолены путем диспергирования липидных наноструктур в большом количестве воды, чтобы образовывать эмульсии, содержащие микрон или липидные частицы субмикронного размера масло-в-воде (O / W). Таким образом, подходящая продукт с низкой вязкостью могут быть получены, сохраняя первоначальный липидный самоорганизующуюся структуру внутри диспергированных частиц. Формирование этих внутренних самоформирующихся частиц (сокращенно ISAsomes 44 </sup> Например, cubosomes из кубических фаз и hexosomes из гексагональных фаз) обычно требует комбинации стадии входного высоких энергий и добавлением стабилизаторов, таких как поверхностно-активные вещества или полимеров. Недавние исследования в этом направлении демонстрирует применение различных твердых частиц 45 в том числе наночастиц из диоксида кремния 46, глины 47-49 и углеродные нанотрубки 50 для стабилизации вышеуказанных эмульсий, соответственно, называемых также Pickering 51 или Рамсден-эмульсий Пикеринга 52.

В последние годы на основе углерода наноструктур, таких как однослойных углеродных нанотрубок (ОУНТ), многослойные углеродные нанотрубки (МУНТ) и фуллерены получили большое внимание в качестве новых биоматериалов 53,54. Основными проблемами являются их токсичность 55-58, нерастворимость в воде 59 и, следовательно, их биосовместимость 56. Эффективный способ решения этих вопросов является функция поверхностьзация использованием нетоксичных и биосовместимых молекулы, такие как липиды. В присутствии воды, липиды взаимодействовать с нанотрубок таким образом, что гидрофобная поверхность нанотрубок защищена от полярного водной среде, тогда как липидные гидрофильные головные группы помочь их растворимость или диспергирование в воде 60,61. Липиды являются неотъемлемыми компонентами клеточных органелл, а также некоторых пищевых материалов, поэтому их украшения в идеале должны снижать токсичность в естественных условиях нанотрубок. Биомедицинские приложения, основанные независимо от УНТ 18,19 и липидных наноструктур 9-13 находятся под экстенсивного развития, но приложения, которые сочетают в себе свойства двух еще не хорошо изучены.

В этой работе, мы используем два разных типа липидов и три типа УНТ из которых ОУНТ в нетронутом виде, тогда как МСУНТ функционализируют гидроксилом и карбоксильными группами. Мы использовали очень низкие концентрации нанотрубок подготовить дисперсий, чьиСтабильность зависит от нескольких факторов, например, от типа липида, типа УНТ, отношение липида к CNT используется, а также от параметров обработки ультразвуком в частности связанных с мощности и длительности. Это видео протокол обеспечивает технические детали метода кинетически стабилизации наночастиц липидов, используя различные CNT-стабилизаторы.

Protocol

Предостережение: углеродные нанотрубки, используемые в данной работе в форме наночастиц, которые могут иметь дополнительную опасность в сравнении с их объемных аналогов. Вдыхание графита, как природных, так и синтетических, может вызвать пневмокониоз 62, похожий на пневмокониоза угольной р?…

Representative Results

Следующие результаты представляют собой) стабильность дисперсий, б) распределение по размерам частиц липидов, в) типа самосборки и г) доказательство для липидного покрытия УНТ. Стабильность дисперсий (Рисунок 2) контролировали с помощью 5-Мп камера с автофоку?…

Discussion

Стабилизация липидных частиц
Три различных углеродных нанотрубок используются для стабилизации липидных дисперсий; два из которых являются многослойные и функционализированный использованием -ОН и карбоксильных групп, и одна единая стенками и не функционализированные…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить д-ра Мэтью Дж Бейкер, теперь в университете Стратклайд, Глазго за поддержку с экспериментами комбинационных и г.Ником Гонта за его предыдущей работы этого проекта.

Materials

Dimodan U Danisco 15312 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Phytantriol (> 95%, GC) TCI Europe N.V. P1674 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Single walled Carbon Nanotubes (90%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc.  1246YJS Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Multi-walled carboxylic acid functionalised Carbon Nanotubes (> 80% Caron basis, > 8% carboxylic acid functionalized) Sigma-Aldrich Co. LLC  755125 Store at room temperature. Away from direct light. Causes serious eye irritation. May cause respiratory irritation
Graphitized Multi-walled hydroxy functionalised Carbon Nanotubes (99.9%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc. (NanoAmor)  1224YJF Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Pluronic F127 Sigma-Aldrich Co. LLC  P2443 BioReagent, suitable for cell culture. Not a hazardous substance or mixture. Store at room temperature.
Acetone (99.5%) Fisher Scientific  10134100 Highly flammable liquid. Causes serious eye irritation. May cause drowsiness or dizziness
Scintillation Vial VWR International Ltd 548‐0704 Soda‐lime glass vial with low background count Fitted with foil lined urea cap, 20 ml
Jars with loose, enfolding lids (375ml) VWR International Ltd 216-3308
Beaker , 1000mL Fisher Scientific  12942161 heavy duty, low form, with spout and graduations
Pasteur glass pipette (150 mm length) with latex bulb Fisher Scientific  10006021
Microcentrifuge tube conical snap cap 1.5mL Fisher Scientific  11558232
Spatula Fisher Scientific  11352204
Heating magnetic stirrer Fisher Scientific  11715704
Magnetic stirrer bars (cylindrical, opaque PTFE, 30mm x 7mm (l x diameter)) Fisher Scientific  10011792
Needle (0.9 mm x 40 mm cannula length) Terumo UK Ltd MN-2038MQ
Retort Stand Set – With stand, clamp, base, rod, rubber 3 jaw and bosshead Camlab Ltd, UK 1177157
Millipore water equipment Barnstead Nanopure, Thermoscientific, USA
Progen Genfuge 24D Digital Microcentrifuge Progen Scientific C-2400
Probe ultra-sonicator, with 13 mm  SONICS, Vibracell,  USA
5MP camera with auto-focus and LED flash Samsung Galaxy Fame Mobile camera
Raman Spectrometer Horiba Jobin-Yvon LabRAM HR800 spectrometer
Mastersizer 3000  Malvern Instruments Ltd, Malvern, United Kingdom
Small angle X-ray scattering (SAXS) SAXSpace camera (Anton Paar, Graz, Austria), X-ray generating equipment (ISO-DEBYEFLEX3003, GE Inspection Technologies GmbH), closed water circuit (Chilly 35, HYFRA, Germany). 
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referências

  1. Peer, D., et al. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nature Nanotech. 2, 751-760 (2007).
  2. White, R. R., Sullenger, B. A., Rusconi, C. P. Developing aptamers into therapeutics. J. Clin. Invest. 106, 929-934 (2000).
  3. Itaka, K., Chung, U. I., Kataoka, K. Supramolecular nanocarrier for gene and siRNA delivery. Nippon Rinsho Jpn. J. Clin. Med. 64, 253-257 (2006).
  4. Xu, S., et al. Development of pH-responsive core-shell nanocarriers for delivery of therapeutic and diagnostic agents. Bioorg. Med. Chem. Lett. 19, 1030-1034 (2009).
  5. Soppimath, K. S., Tan, D. C. W., Yang, Y. Y. pH-triggered thermally responsive polymer core-shell nanoparticles for drug delivery. Adv. Mater. 17, 318-323 (2005).
  6. Hans, M., Lowman, A. Biodegradable nanoparticles for drug delivery and targeting. Curr. Opin. Solid State Mater. Sci. 6, 319-327 (2002).
  7. Petros, R. A., DeSimone, J. M. Strategies in the design of nanoparticles for therapeutic applications. Nat Rev Drug Discov. 9, 615-627 (2010).
  8. Torchilin, V. P. Multifunctional nanocarriers. Adv Drug Deliver Rev. 64, 302-315 (2012).
  9. Shmeeda, H., et al. Delivery of zoledronic acid encapsulated in folate-targeted liposome results in potent in vitro cytotoxic activity on tumor cells. J. Controlled Release. 146, 76-83 (2010).
  10. Xu, Z., et al. The performance of docetaxel-loaded solid lipid nanoparticles targeted to hepatocellular carcinoma. Biomaterials. 30, 226-232 (2009).
  11. Rosenthal, E., et al. Phase IV study of liposomal daunorubicin (DaunoXome) in AIDS-related Kaposi sarcoma. Am. J. Clin. Oncol.-Canc. 25, 57-59 (2002).
  12. Dong, Y. D., Larson, I., Bames, T. J., Prestidge, C. A., Boyd, B. J. Adsorption of Nonlamellar Nanostructured Liquid-Crystalline Particles to Biorelevant Surfaces for Improved Delivery of Bioactive Compounds. Acs Appl Mater Inter. 3, 1771-1780 (2011).
  13. Rizwan, S. B., Boyd, B. J., Rades, T., Hook, S. Bicontinuous cubic liquid crystals as sustained delivery systems for peptides and proteins. Expert Opin. Drug. Deliv. 7, 1133-1144 (2010).
  14. Yoo, H. S., Park, T. G. Folate receptor targeted biodegradable polymeric doxorubicin micelles. J. Controlled Release. 96, 273-283 (2004).
  15. Khandare, J. J., et al. Dendrimer versus linear conjugate: Influence of polymeric architecture on the delivery and anticancer effect of paclitaxel. Bioconjug. Chem. 17, 1464-1472 (2006).
  16. Prabaharan, M., Grailer, J. J., Pilla, S., Steeber, D. A., Gong, S. Gold nanoparticles with a monolayer of doxorubicin-conjugated amphiphilic block copolymer for tumor-targeted drug delivery. Biomaterials. 30, 6065-6075 (2009).
  17. Fan, J., et al. Targeted anticancer prodrug with mesoporous silica nanoparticles as vehicles. Nanotechnology. 22, (2011).
  18. Bianco, A., Prato, M. Can carbon nanotubes be considered useful tools for biological applications?. Adv. Mater. 15, 1765-1768 (2003).
  19. Kam, N. W. S., Dai, H. J. Carbon nanotubes as intracellular protein transporters: Generality and biological functionality. J. Am. Chem. Soc. 127, 6021-6026 (2005).
  20. Kulkarni, C. V. Lipid crystallization: from self-assembly to hierarchical and biological ordering. Nanoscale. 4, 5779-5791 (2012).
  21. Yaghmur, A., et al. . Drug Formulations Based on Self-Assembled Liquid Crystalline Nanostructures. , 341-360 (2014).
  22. Kulkarni, C. V. . Advances in Planar Lipid Bilayers and Liposomes. 12, 237-272 (2010).
  23. Landau, E. M., Navarro, J. V. . US Pat. , (2001).
  24. Kulkarni, C., Belsare, N., Lele, A. Studies on shrikhand rheology. J. Food Eng. 74, 169-177 (2006).
  25. Mezzenga, R., Schurtenberger, P., Burbidge, A., Michel, M. Understanding foods as soft materials. Nature Mater. 4, 729-740 (2005).
  26. Ubbink, J., Burbidge, A., Mezzenga, R. Food structure and functionality: a soft matter perspective. Soft Matter. 4, 1569-1581 (2008).
  27. Dong, Y. D., Larson, I., Hanley, T., Boyd, B. J. Bulk and dispersed aqueous phase behavior of phytantriol: effect of vitamin E acetate and F127 polymer on liquid crystal nanostructure. Langmuir. 22, 9512-9518 (2006).
  28. Yaghmur, A., Glatter, O. Characterization and potential applications of nanostructured aqueous dispersions. Adv. Colloid Interface Sci. 147, 333-342 (2009).
  29. Pardeike, J., Hommoss, A., Müller, R. H. Lipid nanoparticles (SLN, NLC) in cosmetic and pharmaceutical dermal products. Int. J. Pharm. 366, 170-184 (2009).
  30. Yaghmur, A., Rappolt, M., Østergaard, J., Larsen, C., Larsen, S. W. Characterization of bupivacaine-loaded formulations based on liquid crystalline phases and microemulsions: the effect of lipid composition. Langmuir. 28, 2881-2889 (2012).
  31. Singh, H., Ye, A., Horne, D. Structuring food emulsions in the gastrointestinal tract to modify lipid digestion. Prog. Lipid Res. 48, 92-100 (2009).
  32. Angelova, A., Angelov, B., Mutafchieva, R., Lesieur, S., Couvreur, P. Self-Assembled Multicompartment Liquid Crystalline Lipid Carriers for Protein, Peptide, and Nucleic Acid Drug Delivery. Accounts Chem. Res. 44, 147-156 (2011).
  33. Clogston, J., Caffrey, M. Controlling release from the lipidic cubic phase. Amino acids, peptides, proteins and nucleic acids. J. Controlled Release. 107, 97-111 (2005).
  34. Shah, J. C., Sadhale, Y., Chilukuri, D. M. Cubic phase gels as drug delivery systems. Adv. Drug Deliver. Rev. 47, 229-250 (2001).
  35. Boyd, B. J., Whittaker, D. V., Khoo, S. M., Davey, G. Lyotropic liquid crystalline phases formed from glycerate surfactants as sustained release drug delivery systems. Int. J. Pharm. 309, 218-226 (2006).
  36. Drummond, C. J., Fong, C. Surfactant self-assembly objects as novel drug delivery vehicles. Curr. Opin. Colloid Interface Sci. 4, 449-456 (1999).
  37. Zhao, X. Y., Zhang, J., Zheng, L. Q., Li, D. H. Studies of cubosomes as a sustained drug delivery system. J. Dispersion Sci. Technol. 25, 795-799 (2004).
  38. Malmsten, M. Phase transformations in self-assembly systems for drug delivery applications. J. Dispersion Sci. Technol. 28, 63-72 (2007).
  39. Sadhale, Y., Shah, J. C. Stabilization of insulin against agitation-induced aggregation by the GMO cubic phase gel. Int. J. Pharm. 191, 51-64 (1999).
  40. Amar-Yuli, I., Azulay, D., Mishraki, T., Aserin, A., Garti, N. The role of glycerol and phosphatidylcholine in solubilizing and enhancing insulin stability in reverse hexagonal mesophases. J. Colloid Interface Sci. 364, 379-387 (2011).
  41. Rappolt, M., Leitmannova Liu, A. . Advances in planar lipid bilayers and liposomes. 5, 253-283 (2006).
  42. Rappolt, M., Cacho-Nerin, F., Morello, C., Yaghmur, A. How the chain configuration governs the packing of inverted micelles in the cubic Fd 3 m-phase. Soft Matter. 9, 6291-6300 (2013).
  43. Kulkarni, C. V., Wachter, W., Iglesias-Salto, G., Engelskirchen, S., Ahualli, S. Monoolein: a magic lipid?. Phys. Chem. Chem. Phys. 13, 3004-3021 (2011).
  44. Yaghmur, A., de Campo, L., Sagalowicz, L., Leser, M. E., Glatter, O. Emulsified Microemulsions and Oil-Containing Liquid Crystalline Phases. Langmuir. 21, 569-577 (2005).
  45. Kulkarni, C. V., Glatter, O., Nissim, G. Ch. 6. Self-Assembled Supramolecular Architectures: Lyotropic Liquid Crystals.Surface and Interfacial Chemistry. , (2012).
  46. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Internally Self-Assembled Submicrometer Emulsions Stabilized by Spherical Nanocolloids: Finding the Free Nanoparticles in the Aqueous Continuous Phase. Langmuir. 26, 7981-7987 (2010).
  47. Guillot, S., Bergaya, F., de Azevedo, C., Warmont, F., Tranchant, J. F. Internally structured pickering emulsions stabilized by clay mineral particles. J. Colloid Interface Sci. 333, 563-569 (2009).
  48. Muller, F., Salonen, A., Glatter, O. Monoglyceride-based cubosomes stabilized by Laponite: Separating the effects of stabilizer, pH and temperature. Colloids Surf., A. 358, 50-56 (2010).
  49. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Dispersions of Internally Liquid Crystalline Systems Stabilized by Charged Disklike Particles as Pickering Emulsions: Basic Properties and Time-Resolved. Langmuir. 24, 5306-5314 (2008).
  50. Gaunt, N. P., Patil-Sen, Y., Baker, M. J., Kulkarni, C. V. Carbon nanotubes for stabilization of nanostructured lipid particles. Nanoscale. 7, 1090-1095 (2015).
  51. Pickerings, S. U. Emulsions. J. Chem. Soc. 91, (2001).
  52. Ramsden, W. Separation of Solids in the Surface-Layers of Solutions and ‘Suspensions’ (Observations on Surface-Membranes, Bubbles, Emulsions, and Mechanical Coagulation). — Preliminary Account. Proceedings of the Royal Society of London. 72, 156-164 (1903).
  53. Lin, Y., et al. Advances toward bioapplications of carbon nanotubes. J. Mater. Chem. 14, 527-541 (2004).
  54. Saito, N., et al. Safe Clinical Use of Carbon Nanotubes as Innovative Biomaterials. Chem. Rev. 114, 6040-6079 (2014).
  55. Pulskamp, K., Diabate, S., Krug, H. F. Carbon nanotubes show no sign of acute toxicity but induce intracellular reactive oxygen species in dependence on contaminants. Toxicol. Lett. 168, 58-74 (2007).
  56. Smart, S. K., Cassady, A. I., Lu, G. Q., Martin, D. J. The biocompatibility of carbon nanotubes. Carbon. 44, 1034-1047 (2006).
  57. Colvin, V. L. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nat. Biotechnol. 21, 1166-1170 (2003).
  58. Firme, C. P., Bandaru, P. R. Toxicity issues in the application of carbon nanotubes to biological systems. Nanomed-Nanotechnol. 6, 245-256 (2010).
  59. Haddon, R. C. Carbon nanotubes. Accounts Chem. Res. 35, 997-997 (2002).
  60. Kapralov, A. A., et al. Adsorption of Surfactant Lipids by Single-Walled Carbon Nanotubes in Mouse Lung upon Pharyngeal Aspiration. Acs Nano. 6, 4147-4156 (2012).
  61. Wallace, E. J., Mark, S. P. S. Carbon nanotube self-assembly with lipids and detergent: a molecular dynamics study. Nanotechnology. 20, 045101 (2009).
  62. George, R. B. Chest medicine: essentials of pulmonary and critical care medicine. Lippincott Williams & Wilkins. , (2005).
  63. Monteiro-Riviere, N. A., Nemanich, R. J., Inman, A. O., Wang, Y. Y., Riviere, J. E. Multi-walled carbon nanotube interactions with human epidermal keratinocytes. Toxicol. Lett. 155, 377-384 (2005).
  64. Shvedova, A., et al. Exposure to carbon nanotube material: assessment of nanotube cytotoxicity using human keratinocyte cells. J. Toxicol. Env. Heal. A. 66, 1909-1926 (2003).
  65. Jia, G., et al. Cytotoxicity of carbon nanomaterials: single-wall nanotube, multi-wall nanotube, and fullerene. Environ. Sci. Technol. 39, 1378-1383 (2005).
  66. Sato, Y., et al. Influence of length on cytotoxicity of multi-walled carbon nanotubes against human acute monocytic leukemia cell line THP-1 in vitro and subcutaneous tissue of rats in vivo. Mol. BioSyst. 1, 176-182 (2005).
  67. Bottini, M., et al. Multi-walled carbon nanotubes induce T lymphocyte apoptosis. Toxicol. Lett. 160, 121-126 (2006).
  68. Cui, D., Tian, F., Ozkan, C. S., Wang, M., Gao, H. Effect of single wall carbon nanotubes on human HEK293 cells. Toxicol. Lett. 155, 73-85 (2005).
  69. Huang, T., Toraya, H., Blanton, T., Wu, Y. X-ray powder diffraction analysis of silver behenate, a possible low-angle diffraction standard. J. Appl. Crystallogr. 26, 180-184 (1993).
  70. Bokobza, L., Zhang, J. Raman spectroscopic characterization of multiwall carbon nanotubes and of composites. Express Polym. Lett. 6, 601-608 (2012).
  71. Zhao, Q., Wagner, H. D. Raman spectroscopy of carbon-nanotube-based composites. Philos. Trans. R. Soc. London, Ser. A -Math. Phys. Eng. Sci. 362, 2407-2424 (2004).
  72. Douroumis, D., Fatouros, D. G., Bouropoulos, N., Papagelis, K., Tasis, D. Colloidal stability of carbon nanotubes in an aqueous dispersion of phospholipid. Int. J. Nanomed. 2, 761-766 (2007).
  73. Worthington, R. J., Melander, C. Combination approaches to combat multidrug-resistant bacteria. Trends Biotechnol. 31, 177-184 (2013).

Tags

Keywords: Carbon NanotubesLipid ParticlesSelf-assemblyEmulsionNanostructureSurfactantSonicationDimodan UPhytantriolF127Hydroxyl-functionalized CNTsCarboxyl-functionalized CNTs
check_url/pt/53489?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citar este artigo
Patil-Sen, Y., Sadeghpour, A., Rappolt, M., Kulkarni, C. V. Facile Preparation of Internally Self-assembled Lipid Particles Stabilized by Carbon Nanotubes. J. Vis. Exp. (108), e53489, doi:10.3791/53489 (2016).
Baixar citação
Reimpressões e Permissões

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image