Summary

Mikroskopi av Fisjon gjær Seksuell Lifecycle

Published: March 09, 2016
doi:

Summary

We provide a reproducible basic method for the long-term microscopy of the fission yeast sexual lifecycle. With minor adjustments described, the presented protocol allows research focus on different steps of the reproductive process.

Abstract

The fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been an invaluable model system in studying the regulation of the mitotic cell cycle progression, the mechanics of cell division and cell polarity. Furthermore, classical experiments on its sexual reproduction have yielded results pivotal to current understanding of DNA recombination and meiosis. More recent analysis of fission yeast mating has raised interesting questions on extrinsic stimuli response mechanisms, polarized cell growth and cell-cell fusion. To study these topics in detail we have developed a simple protocol for microscopy of the entire sexual lifecycle. The method described here is easily adjusted to study specific mating stages. Briefly, after being grown to exponential phase in a nitrogen-rich medium, cell cultures are shifted to a nitrogen-deprived medium for periods of time suited to the stage of the sexual lifecycle that will be explored. Cells are then mounted on custom, easily built agarose pad chambers for imaging. This approach allows cells to be monitored from the onset of mating to the final formation of spores.

Introduction

Selv om genetisk utveksling mellom to celler er den sentrale hendelsen i seksuell reproduksjon, det er avhengig av en kjede av hendelser som fremmer celledifferensiering, gir mulighet for valg av partner, utfører celle-celle fusjon og vedlikeholde genomisk stabilitet. Dermed seksuell livssyklus presenterer seg som et modellsystem for å studere en rekke biologiske spørsmål om utviklings brytere, reaksjon på ytre stimuli, plasma membran fusion, kromosom segregering, osv Exploring fisjons gjær seksuell syklus for å studere disse fenomenene bringer fordelene av modellsystem kraftige genetikk, veletablerte high-throughput tilnærminger og sofistikert mikroskopi. Sex i fisjon gjær er en heterotypic hendelse mellom en P-celle og en M-celle distinkte parring typer. De to celletyper differensielt uttrykk for en rekke gener 1,2 inkludert de for fremstilling av det utskilte P- og M-feromoner, feromon-reseptorer Map3 og Mam2 samt feromon-proteases Sxa1 og Sxa2. Homo-thallisk-stammer, slik som vanligvis brukes H90 belastning, bærer den genetiske informasjonen for både parring typer i en enkelt genom og cellene gjennomgå en komplekst mønster av paringstypen veksling gjennom den mitotiske livssyklusen (oversikt i Ref. 3). Multiple isolater av heterothallic spalting gjær som sjelden eller aldri bytte paringstypen er også ofte brukt til 4, mest fremtredende h + N (P-type) og h -S (M-type) stammer.

I fisjon gjær, inntreden i den seksuelle livssyklus er under streng ernæringsmessig regulering. Bare nitrogen sultet fisjonsgjærceller arrestere mitotisk reproduksjon og produsere diffusible feromoner for å signalisere tilstedeværelsen av en paring partner og fremme ytterligere trinn av seksuell syklus (anmeldt i Ref. 5). Nitrogen deprivasjon de-undertrykker nøkkelen transcriptional regulator av parring Ste11 som fungerer som en utviklings bryter og fremmer eXpression av parring spesifikke gener inkludert feromon reseptoren og feromon produksjons gener 6,7. Pheromone-reseptor engasjement aktiverer reseptor-koblede protein G-alfa og nedstrøms MAPK signal som ytterligere forbedrer Ste11 transkripsjonen aktivitet 8-10, og dermed øke feromon produksjonen i en positiv tilbakemelding mellom parringspartnere. Feromon nivåer er avgjørende for å indusere forskjellige celle polarisering stater ved å regulere mester arrangør av celle polaritet, Rho-familien GTPase Cdc42 11. Ved eksponering for lave konsentrasjoner feromon er aktiv Cdc42 anskueliggjort på dynamiske flekker utforske cellen periferi, og ikke cellevekst observeres på dette stadiet. Økte nivåer feromon fremme stabiliseringen av Cdc42 aktivitet til en enkelt sone og vekst av en polarisert fremspring, betegnet Shmoo, som bringer partnerceller i kontakt. Deretter de to haploide paring partnere sikring for å danne en diploid zygote. Nyere arbeider avslører the eksistensen av en roman aktin struktur avgjørende for fusjon som er satt sammen av parings-indusert formin Fus1 12. Denne fusjon fokus konsentrater type V myosin avhengige prosesser og posisjonerer celleveggen degradering maskineri, og dermed gir ombygging av celleveggen for å tillate plasmamembranen kontakt uten cellelyse 12. Ved celle-celle fusjon, kjernen kommer i kontakt og gjennomgå karyogamy. En fremtredende dynein avhengig back-og-tilbake bevegelse av kjernen i zygoten (hestehale bevegelse) fremmer deretter sammenkoblingen av kromosom homologer 13,14, som er etterfulgt av meiose. Endelig er de fire produkter av meiose pakket i individuelle sporer under sporulering.

På grunn av sin kompleksitet og de mange trinnene som er involvert, har detaljert overvåking av parring vært utfordrende. To kjente problemer er at hele prosessen tar godt over femten timer, og at cellene er vanskelig å synkronisere. disse difficulties blir omgått ved encellede mikros tilnærminger. Her en generell protokoll for å undersøke den seksuelle livssyklus i fisjon gjær er presentert. Med mindre justeringer, tillater denne protokollen studiet av alle de forskjellige trinnene i prosessen, nemlig induksjon av parring genprodukt, celle polarisering og sammenkoblingen mellom søster-celler etter Mating Typ veksling og mellom ikke-beslektede partnere, celle-cellefusjon og post-fusjon hestehale bevegelse, meiose og sporulation. Denne metoden gjør det mulig å 1) lett visualisere fluorescens-merket proteiner over tid før-, under og etter fusjon; 2) diskriminere oppførselen til celler av motsatt parrings type; og 3) måle og kvantifisere parametere som shmooing, parring, fusjon eller sporulation effektivitet.

Protocol

Mikroskopi analyse av fisjon gjær seksuell reproduksjon 1. Media Forberedelse Forbered Minimum sporulering medium (MSL-N) 15 ved å blande følgende komponenter: Glukose 10 g / l KH 2PO 4: 1 g / l, NaCl: 0,1 g / l MgSO4 · 7H 2 O: 0,2 g / L. Legg Sporstoffer (10,000x): 100 mL / L, vitaminer (1,000x): 1 ml / l og 0,1 M CaCl2   ml / l. Filter-sterilisere ved hjelp av en 0,22 mikrometer porestørrelse filter og oppbevares …

Representative Results

Fisjons Gjær Vekst og Mating Dynamics ved fjerning av en nitrogenkilde Som nitrogen sult er en forutsetning for initiering av seksuell reproduksjon i fisjon gjær, ble villtype-homo-thallisk H90 belastning overvåkes ved overgang fra nitrogen-rik på nitrogen-belastede medium (figur 2), etter den protokoll som er beskrevet i figur 1. I korthet ble cellene ble dyrket O / N til eksponensiell fase (OD600 = 0,5) i MSL + N medium, …

Discussion

Miljøforhold og næringsstoffer spesielt sterkt påvirke fisjon gjær fysiologi. Nitrogen sult er nødvendig for forpliktelse til seksuell reproduksjon og i utgangspunktet fører til slående endringer i mitotisk cellecyklusprogresjonen (Ref. 21 og figur 2). Ved nitrogenfjerning fra eksponentielt voksende befolkning, cellestørrelsen ved divisjon hurtig avtar (figur 2C) og flertallet av celler arrest mitotisk progresjon kortere enn lengden av nyfødte eksponentielt dyrkede c…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

AV ble støttet av en EMBO langsiktig postdoktorstipend. Forskning i Martin lab er finansiert av et ERC Starting Grant (GeometryCellCycle) og en sveitsisk National Science Foundation tilskudd (31003A_155944) til SDB.

Materials

Glucose Sigma-Aldrich G8270-10KG
KH2PO4 Sigma-Aldrich 1.05108.0050
NaCl Sigma-Aldrich 71381
MgSO4.7H2O Sigma-Aldrich 63140
CaCl2 Sigma-Aldrich 12095
Pantothenate AppliChem A2088,0025
Nicotinic Acid AppliChem A0963,0100
Inositol AppliChem A1716,0100
Biotin AppliChem A0967,0250
Boric Acid Sigma-Aldrich B6768-1KG
MnSO4 AppliChem A1038,0250
ZnSO4.7H2 Sigma-Aldrich Z4750
FeCl2.6H2O AppliChem A3514,0250
Molybdenum oxide (VI) (MoO3) Sigma-Aldrich 69850
KI AppliChem A3872,0100
CuSO4.5H2O AppliChem A1034,0500
Citric Acid  AppliChem A2344,0500
Agarose Promega V3125
(NH4)2SO4  Merck 1.01217.1000
L-Leucine Sigma-Aldrich L8000-100G
Adenine Hemisulfat Salt, mini 99% Sigma-Aldrich A9126-100G
Uracil  Sigma-Aldrich U0750
Lanolin Sigma-Aldrich L7387
Vaseline Reactolab 92045-74-4
Paraffin Reactolab 7005600

Referências

  1. Mata, J., Bahler, J. Global roles of Ste11p, cell type, and pheromone in the control of gene expression during early sexual differentiation in fission yeast. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (42), 15517-15522 (2006).
  2. Xue-Franzen, Y., Kjaerulff, S., Holmberg, C., Wright, A., Nielsen, O. Genomewide identification of pheromone-targeted transcription in fission yeast. BMC Genomics. 7, 303 (2006).
  3. Klar, A. J. Lessons learned from studies of fission yeast mating-type switching and silencing. Annu Rev Genet. 41, 213-236 (2007).
  4. Beach, D. H., Klar, A. J. Rearrangements of the transposable mating-type cassettes of fission yeast. EMBO J. 3 (3), 603-610 (1984).
  5. Merlini, L., Dudin, O., Martin, S. G. Mate and fuse: how yeast cells do it. Open Biol. 3 (3), 130008 (2013).
  6. Mochizuki, N., Yamamoto, M. Reduction in the intracellular cAMP level triggers initiation of sexual development in fission yeast. Mol Gen Genet. 233 (1-2), 17-24 (1992).
  7. Sugimoto, A., Iino, Y., Maeda, T., Watanabe, Y., Yamamoto, M. Schizosaccharomyces pombe ste11+ encodes a transcription factor with an HMG motif that is a critical regulator of sexual development. Genes Dev. 5 (11), 1990-1999 (1991).
  8. Kjaerulff, S., Lautrup-Larsen, I., Truelsen, S., Pedersen, M., Nielsen, O. Constitutive activation of the fission yeast pheromone-responsive pathway induces ectopic meiosis and reveals ste11 as a mitogen-activated protein kinase target. Mol Cell Biol. 25 (5), 2045-2059 (2005).
  9. Obara, T., Nakafuku, M., Yamamoto, M., Kaziro, Y. Isolation and characterization of a gene encoding a G-protein alpha subunit from Schizosaccharomyces pombe: involvement in mating and sporulation pathways. Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (13), 5877-5881 (1991).
  10. Toda, T., Shimanuki, M., Yanagida, M. Fission yeast genes that confer resistance to staurosporine encode an AP-1-like transcription factor and a protein kinase related to the mammalian ERK1/MAP2 and budding yeast FUS3 and KSS1 kinases. Genes Dev. 5 (1), 60-73 (1991).
  11. Bendezu, F. O., Martin, S. G. Cdc42 explores the cell periphery for mate selection in fission yeast. Curr Biol. 23 (1), 42-47 (2013).
  12. Dudin, O., et al. A formin-nucleated actin aster concentrates cell wall hydrolases for cell fusion in fission yeast. J Cell Biol. 208 (7), 897-911 (2015).
  13. Chikashige, Y., et al. Telomere-led premeiotic chromosome movement in fission yeast. Science. 264 (5156), 270-273 (1994).
  14. Bahler, J., et al. Heterologous modules for efficient and versatile PCR-based gene targeting in Schizosaccharomyces pombe. Yeast. 14 (10), 943-951 (1998).
  15. Egel, R., Willer, M., Kjaerulff, S., Davey, J., Nielsen, O. Assessment of pheromone production and response in fission yeast by a halo test of induced sporulation. Yeast. 10 (10), 1347-1354 (1994).
  16. Tran, P. T., Marsh, L., Doye, V., Inoue, S., Chang, F. A mechanism for nuclear positioning in fission yeast based on microtubule pushing. J Cell Biol. 153 (2), 397-411 (2001).
  17. Pedelacq, J. D., Cabantous, S., Tran, T., Terwilliger, T. C., Waldo, G. S. Engineering and characterization of a superfolder green fluorescent protein. Nat Biotechnol. 24 (1), 79-88 (2006).
  18. Kitamura, K., Shimoda, C. The Schizosaccharomyces pombe mam2 gene encodes a putative pheromone receptor which has a significant homology with the Saccharomyces cerevisiae Ste2 protein. EMBO J. 10 (12), 3743-3751 (1991).
  19. Tanaka, K., Davey, J., Imai, Y., Yamamoto, M. Schizosaccharomyces pombe map3+ encodes the putative M-factor receptor. Mol Cell Biol. 13 (1), 80-88 (1993).
  20. Motegi, F., Arai, R., Mabuchi, I. Identification of two type V myosins in fission yeast, one of which functions in polarized cell growth and moves rapidly in the cell. Mol Biol Cell. 12 (5), 1367-1380 (2001).
  21. Sajiki, K., Pluskal, T., Shimanuki, M., Yanagida, M. Metabolomic analysis of fission yeast at the onset of nitrogen starvation. Metabolites. 3 (4), 1118-1129 (2013).
  22. Miyawaki, A., Nagai, T., Mizuno, H. Mechanisms of protein fluorophore formation and engineering. Curr Opin Chem Biol. 7 (5), 557-562 (2003).
  23. Dyer, J. M., et al. Tracking shallow chemical gradients by actin-driven wandering of the polarization site. Curr Biol. 23 (1), 32-41 (2013).
  24. Beta, C., Bodenschatz, E. Microfluidic tools for quantitative studies of eukaryotic chemotaxis. Eur J Cell Biol. 90 (10), 811-816 (2011).
  25. Lee, S. S., et al. Quantitative and dynamic assay of single cell chemotaxis. Integr Biol (Camb). 4 (4), 381-390 (2012).
check_url/pt/53801?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Vjestica, A., Merlini, L., Dudin, O., Bendezu, F. O., Martin, S. G. Microscopy of Fission Yeast Sexual Lifecycle. J. Vis. Exp. (109), e53801, doi:10.3791/53801 (2016).

View Video