Summary

Sigara frenleyici EEG Radiotelemetry: Epidural ve Derin İntraserebral Stereotaksik EEG Elektrot Yerleştirme

Published: June 25, 2016
doi:

Summary

Sigara kısıtlayıcı EEG radiotelemetry serbestçe hareket kemirgenler, in vivo uzun vadeli elektroenzefalografıye kaydetmek için değerli bir metodolojik bir yaklaşımdır. Bu ayrıntılı bir protokol MSS ritmi ve MSS ile ilgili davranışsal aşamalarında güvenilir kayıtları elde etmek için, beynin farklı bölgelerinde stereotaksik epidural ve derin intraserebral elektrot yerleştirme anlatılmaktadır.

Abstract

İmplante edilebilir EEG Radiotelemetry nöropsikiyatrik ve nörodejeneratif hastalıklar gibi epilepsi transjenik fare modelleri nörolojik karakterizasyonu merkezi öneme sahiptir. Bu güçlü teknik, altta yatan patofizyolojik mekanizmalar değerli bilgiler sağlamaz sadece, yani., MSS ile ilgili hastalıkların etyopatogenezi, aynı zamanda yeni öteleme, yani., Terapötik yaklaşımların gelişmesini kolaylaştırır. ceket ya da gergin sistemlerinde kullanılan kayıt sistemlerinin kullanımı yarı yasaklama karakteri kendi fizyolojik olmayan zaptetmek muzdarip yapmak rakip teknikleri ise, radiotelemetrik EEG kayıtları bu dezavantajların üstesinden. Teknik olarak, implante EEG radiotelemetry çeşitli fizyolojik ve patofizyolojik koşullarda epidural ve derin, intraserebral EEG hassas ve çok hassas ölçüm için izin verir. İlk olarak, biz düz bir ileri ayrıntılı bir protokol, başarılı sunmak,Yüksek kaliteli electrocorticograms sonuçlanan epidural (yüzey) EEG kayıtları için hızlı ve verimli bir tekniktir. İkincisi, biz hipokampus (electrohippocampogram) 'de, örneğin derin, intraserebral EEG elektrotları, implant nasıl gösterilmektedir. Her iki yaklaşımda da, bilgisayarlı 3D stereotaksik elektrot implantasyon sistemi kullanılmaktadır. radyofrekans verici kendisi farelerde ve sıçanlarda subkutan kese içine yerleştirilir. Özel ilgi de, deney hayvanlarının peri ve postoperatif tedavi öncesi ödenecek vardır. Fare ve sıçanlarda, uygun bir anestezi Ameliyat öncesi hazırlık olarak ameliyat sonrası işleme ve ağrı tedavisi ayrıntılı olarak tarif edilmiştir.

Introduction

Radiotelemetry özellikle EEG, EKG, EMG, tansiyon, vücut çekirdek sıcaklığı veya aktivite ölçümleri 1-7 bağlamında, çeşitli boyutlarda bilinçli kısıtlanmamış hayvanlarda davranış ve fizyolojik parametrelerin çeşitli ölçmek için çok değerli bir metodolojik bir yaklaşımdır. Teorik olarak, herhangi bir türün kedi, köpek, domuz ve primat 3,8 fareler ve sıçanlar gibi laboratuar kemirgenler implante edilebilir EEG Radiotelemetry kullanılarak analiz edilebilir. Hatta balık, sürüngenler ve amfibiler radiotelemetrik soruşturma 9 tabidir. Son yirmi yıl içinde, implante EEG Radiotelemetry örneğin epilepsi, uyku bozuklukları, nörodejeneratif ve nöropsikiyatrik bozuklukların 7,10-12 gibi insan hastalıklarında çeşitli transgenik hayvan modelleri, karakterizasyonu değerli olduğu kanıtlanmıştır. Geçmişte, farelerin Biyopotansiyellerin ve sıçanlarda da dahil olmak üzere fizyolojik veri toplama sayısız metodolojik yaklaşımlar azalan olmuşturbelirlemiş. Ceket kayıt sistemleri, fiziksel kısıtlama yöntemleri, implant olmayan radiotransmitters ve gergin sistemlerde giyilen son 13,14 ana ilgi görmüştür. Günümüzde radiotelemetrik implantasyon için çeşitli sistemler ticari olarak temin edilebilir. Ancak, literatür ekranı da self-made radiotelemetrik sistemlerin 15-40 gelişimini açıklayan 29 yayın saptandı. ev yapımı sistemler daha az pahalı ve adapte daha kullanıcı olması muhtemel ise, piyasada mevcut sistemler, yalındır kurmak nispeten kolay ve hızlı bir şekilde kurulum olabilir.

İmplante edilebilir EEG Radiotelemetry kılıf sistemleri veya bağlı yaklaşımlar giyilen bu fiziksel kısıtlama yöntemleri rekabet teknikleri ile karşılaştırıldığında bir çok avantaj vardır. İkincisi, tanımı gereği kısıtlama vardır yani., Hayvan hareket edemez ya da normal bir davranış bozulur. Hatta yeniden kazanılması için hayvan uyutmak için gerekli olabilirsorumlu veriler. Modern gergin sistemler ancak az kısıtlama olması muhtemel, ancak bu bilimsel olarak doğrulanmış olması gerekir. Öte yandan Radiotelemetry hayvanlar uzaysal bir kısıtlama olmaksızın ve böylece davranış tam repertuar kazanmasını sağlar ve yaklaşımları kısıtlama ve insanlarda 1,3 elde edilebilir sonuçlar daha tahmin için üstün olduğu düşünülmektedir. Bu kısıtlama yaklaşımları büyük ölçüde temel fizyolojik parametreleri, örneğin., Gıda alımı, vücut çekirdek ısısı, kan basıncı ve kalp atım hızı ve örnek 3 için fiziksel aktivite değiştirebilir iken oldukça bilinir. Gergin sistemler hala yaygın olarak kullanılan klasik kısıtlayıcı yaklaşımı 13,14 temsil etmektedir. Epidural veya derin ya elektrotları olan elektrotlar genellikle kafatasına demirlemiş bir minyatür soketine bağlanır. soket kendisi hayvanın nispeten serbest dolaşımı sağlayan bir kablo takılması için maruz kalmaktadır. although günümüzde gergin sistemleri son derece telkari ve son derece esnek hale gelmiştir, onun büyük dezavantajlarından biri hala yarı yasaklama olduğunu, olduğunu. hayvanlar vücutlarının (kafa) kaynaklanan herhangi bir harici aygıtları işlemek eğilimi gibi yanında elektrot implantasyon yerinde enfeksiyon riski olabilir. Çeşitli türlerde kablosuz Radiotelemetry teknoloji zaten geç 60s tarif edilmiştir ve bu on yıldır olmasına rağmen, ancak son zamanlarda, özellikle küçük laboratuar kemirgenlerde örneğin içinde, uygun maliyetli, güvenilir ve nispeten kolay kullanımlı 10,41,42 olmuştur sıçanlar ve fareler gibi. Küçük, minyatür implant edilebilir EEG vericiler şu anda ticari olarak temin edilebilir ve 20 g (~ 10 hafta) daha büyük farelere implante edilebilir. Bu nedenle, özellikle de transjenik fare modelini elektrofizyolojik karakterizasyon bugünlerde implante edilebilir EEG radiotelemetry uygulama baskın alanı haline gelmiştir. Hayvan boyutu artık mutlak bir deneysel SINIRLAMALI olduğunuaktaricilarin pilin ömrü ise tion gerçekten de. sınırlı yaşam süresine rağmen, implante verici sistemleri sistemlerini frenleyici potansiyel kayıt ilişkili stres ile ilgili en dezavantajları en aza indirmek yeteneğine sahiptirler. Kemirgenler dinlenme, lokomotor aktivite (keşif) ve uyku (REM, yavaş dalga uykusu) 43,44 olmak üzere fizyolojik davranış onların tam armamentaryumu sunabilirler. Önemlisi, implante radiotelemetry güçlü hayvan kullanımını 3 azaltabilir. Şu anda, bilimde deney hayvanlarının sayısını sınırlamak ve acılarını azaltmak için nasıl yoğun bir tartışma var. Açıkçası, hayvan deneyleri ve insan ve hayvan hastalıklarının hayvan modellerinde alt-line patofizyolojisi ve tedavide müteakip ilerleme anlayışımız için çok önemlidir. Ayrıca, hayvan deneyleri, ilaç araştırma ve geliştirme çok önemlidir. Onlar büyük ölçüde ilaç ruhsatlandırma preklinik / toksikolojik çalışmalarına katkı yapmakböylece hem insan hem de hayvan bakımı için taahhütte. Şu anda hiçbir alternatifi henüz ortaya edilecek, aksi takdirde imkansız olurdu karmaşık patofizyolojik mekanizmaları anlamak için hayvan araştırmaları için kullanılabilir olduğunu, çekicidir. Aynı zamanda, 3R, yani en., AB ve ABD yerine, azaltılması ve arıtma stratejisi güçlü tamamlayıcı ve alternatif yöntemleri ile ilgili araştırmaların teşvik eder. Radiotelemetry diğer tekniklerle karşılaştırıldığında deney hayvanlarının sayısı ve bunların acı azaltabilir olarak başarılı 3R stratejisinin önemli bir örnektir.

Burada farelerde ve sıçanlarda bir radyofrekans verici bir deri altı torbanın implantasyon gerçekleştirmek için ayrıntılı ve bitişik adım adım bir yaklaşım sağlar. Bu ilk dizi stereotaksik epidural ve derin intraserebral EEG elektrot konumlandırma bir açıklama ile takip edilmektedir. Özel dikkat barınma koşulları, anestezi, peri ve postoperatif ağrı ödenirYönetim ve muhtemel anti-enfeksiyon tedavisi. Odak güvenilir epidural ve derin intraserebral yapıların hedef bilgisayarlı 3D stereotaksik yaklaşım olduğunu. Biz de ameliyat sonrası iyileşme sırasında travma ve ağrı yönetiminin optimizasyonu azaltılması için sık sık deneysel EEG elektrot implantasyonu içinde tuzaklar ve stratejiler hakkında yorum. Son olarak, yüzey ve derin EEG kayıtları örnekleri sunulmaktadır.

Protocol

Etik Beyanı: Tüm hayvan deneyleri yerel ve kurumsal Hayvan Bakımı Konseyi (Bonn Üniversitesi, BfArM, LANUV, Almanya) kurallarına göre gerçekleştirildi. Buna ek olarak, tüm hayvan deneyleri üstün mevzuat, örneğin uygun olarak yürütülmüştür., 24 Kasım 1986 (86/609 / EEC) ya da bireysel, bölgesel veya ulusal mevzuat, Avrupa Birliği Konsey Direktifi. Belirli çaba kullanılan hayvanların ve onların acıları sayısını en aza indirmek için yapılır. 1. Deney Ha…

Representative Results

Bu bölümde yüzey ve derin, intraserebral EEG kayıtları elde edilen örnekleri göstermektedir. Başlangıçta fizyolojik koşullar altında bazal kayıtları önce örneğin aşağıdaki sonraki kayıtlar, farmakolojik tedavi zorunlu olduğu ifade edilmelidir. Böyle temel kayıtlar farklı davranış devletler ya da uyku / sirkadiyen ritim ile beyin ritim fonksiyonel bağımlılık hakkında değerli bilgiler verebilir. Burada, proconvulsive / Psiko ilaçların ak…

Discussion

Deneysel hayvan davranışları 1,3 onların tam repertuar yapmak için izin olmayan bir kısıtlayıcı tekniği olarak implante edilebilir EEG radiotelemetry merkezi öneme sahiptir. telemetrik yaklaşımı spontan EEG kayıtları ancak T-labirent, radyal labirent, su labirenti, uyku yoksunluğu görevler ya da her bir EEG kaydı gerekli ya da yararlı olduğu gibi bilişsel görevleri ve sirkadiyen analitik kurulumları altında da kayıtları sadece sağlayan bu büyük ilgi çekicidir karmaşık bilişse…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Dr. Christina Ginkel (German Center for Neurodegenerative Diseases, DZNE), Dr. Michaela Möhring (DZNE) and Dr. Robert Stark (DZNE) for assistance in animal breeding and animal health care. This work was financially supported by the Federal Institute for Drugs and Medical Devices (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM) Bonn, Germany.

Materials

Carprofen (Rimadyl VET – InjektionA2:D43slösung) Pfizer PZN 0110208 20 ml
binocular surgical magnification microscope  Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
bulldog serrefine F.S.T. 18051-28 28mm
cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202 ordered at Th.Geyer
cotton tip applicators (sterile) Carl Roth  EH12.1
Dexpanthenole (Bepanthen Wund- und Heilsalbe) Bayer PZN: 1578818
drapes (sterile) Hartmann PZN 0366787
70% ethanol Carl Roth  9065.5
0.3% / 3% hydrogene peroxide solution Sigma 95321 30% stock solution 
gloves (sterile) Unigloves 1570
dental glas ionomer cement KentDental /NORDENTA 957 321
2% glutaraldehyde solution Sigma G6257
Graefe Forceps-curved, serrated F.S.T. 11052-10
Halsey Micro Needle Holder-Tungsten Carbide F.S.T. 12500-12 12.5 cm
heat-based surgical instrument sterilizer F.S.T. 18000-50
heating pad AEG HK5510 520010 ordered at myToolStore
high-speed dental drill Adeor SI-1708
Iris scissors extra thin  F.S.T. 14058-09 9 cm
Inhalation narcotic system (isoflurane) Harvard Apparatus GmbH 34-1352, 10-1340, 34-0422, 34-1041, 34-0401, 34-1067, 72-3044, 34-0426, 34-0387, 34-0415, 69-0230
Isoflurane Baxter 250 ml PZN 6497131
Ketamine Pfizer PZN 07506004
lactated Ringer’s solution (sterile) Braun L7502
Lexar-Baby Scissors-straight, 10 cm F.S.T. 14078-10 10 cm
Nissl staining solution Armin Baack BAA31712159
non-absorbable suture material 5-0/6-0 (sterile) SABANA (Sabafil) N-63123-45
Covidien (Sofsilk) S1172, S1173
Halsey Needle Holder F.S.T. 12001-13 13 cm
pads (sterile) ReWa Krankenhausbedarf 2003/01
0.9% saline (NaCl, sterile) Braun PZN:8609255
scalpel blades with handle (sterile) propraxis 2029/10
Standard Pattern Forceps F.S.T. 11000-12, 11000-14 12 cm and 14.5 cm length
Steel and tungsten electrodes parylene coated  FHC Inc., USA) UEWLGESEANND
stereotaxic frame Neurostar 51730M ordered at Stoelting
(Stereo Drive-New Motorized Stereotaxic)
tapes (sterile) BSN medical GmbH & Co. KG 626225
TA10ETA-F20  DSI 270-0042-001X Radiofrequency transmitter 3.9 g, 
3.9 g, 1.9 cc, input voltage range ± 2.5 mV,
channel bandwidth (B) 1-200 Hz, 
nominal sampling rate (f) 1000 Hz (f = 5B)
temperature operating range 34-41 °C
warranted battery life 4 months
TL11M2-F20EET  DSI 270-0124-001X Radiofrequency transmitter 
3.9 g, 1.9 cc, input voltage range ± 1.25 mV,
channel bandwidth (B) 1-50 Hz, 
nominal sampling rate (f) 250 Hz (f = 5B)
temperature operating range 34-41 °C
warranted battery life 1.5 months
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm F.S.T. 11021-12 12 cm length
Tungsten carbide iris scissors F.S.T. 14558-11 11.5 cm
Vibroslicer 5000 MZ Electron Microscopy Sciences 5000-005
Xylazine (Rompun) Bayer PZN: 1320422

Referências

  1. Kramer, K., et al. The use of radiotelemetry in small laboratory animals: recent advances. Contemp Top Lab Anim Sci. 40, 8-16 (2001).
  2. Kramer, K., et al. The use of telemetry to record electrocardiogram and heart rate in freely swimming rats. Methods Find Exp Clin Pharmacol. 17, 107-112 (1995).
  3. Kramer, K., Kinter, L. B. Evaluation and applications of radiotelemetry in small laboratory animals. Physiol Genomics. 13, 197-205 (2003).
  4. Kramer, K., Remie, R. Measuring blood pressure in small laboratory animals. Methods Mol Med. 108, 51-62 (2005).
  5. Kramer, K., et al. Use of telemetry to record electrocardiogram and heart rate in freely moving mice. J Pharmacol Toxicol Methods. 30, 209-215 (1993).
  6. Kramer, K., et al. Telemetric monitoring of blood pressure in freely moving mice: a preliminary study. Lab Anim. 34, 272-280 (2000).
  7. Guler, N. F., Ubeyli, E. D. Theory and applications of biotelemetry. J Med Syst. 26, 159-178 (2002).
  8. Aylott, M., Bate, S., Collins, S., Jarvis, P., Saul, J. Review of the statistical analysis of the dog telemetry study. Pharm Stat. 10, 236-249 (2011).
  9. Rub, A. M., Jepsen, N., Liedtke, T. L., Moser, M. L., Weber, E. P., 3rd, Surgical insertion of transmitters and telemetry methods in fisheries research. Am J Vet Res. 75, 402-416 (2014).
  10. Bastlund, J. F., Jennum, P., Mohapel, P., Vogel, V., Watson, W. P. Measurement of cortical and hippocampal epileptiform activity in freely moving rats by means of implantable radiotelemetry. J Neurosci Methods. 138, 65-72 (2004).
  11. Jeutter, D. C. Biomedical telemetry techniques. Crit Rev Biomed Eng. 7, 121-174 (1982).
  12. Williams, P., et al. The use of radiotelemetry to evaluate electrographic seizures in rats with kainate-induced epilepsy. J Neurosci Methods. 155, 39-48 (2006).
  13. Bertram, E. H., Lothman, E. W. Ambulatory EEG cassette recorders for prolonged electroencephalographic monitoring in animals. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 79, 510-512 (1991).
  14. Bertram, E. H., Williamson, J. M., Cornett, J. F., Spradlin, S., Chen, Z. F. Design and construction of a long-term continuous video-EEG monitoring unit for simultaneous recording of multiple small animals. Brain Res Brain Res Protoc. 2, 85-97 (1997).
  15. Russell, D. M., McCormick, D., Taberner, A. J., Malpas, S. C., Budgett, D. M. A high bandwidth fully implantable mouse telemetry system for chronic ECG measurement. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 7666-7669 (2011).
  16. Lin, D. C., Bucher, B. P., Davis, H. P., Sprunger, L. K. A low-cost telemetry system suitable for measuring mouse biopotentials. Med Eng Phys. 30, 199-205 (2008).
  17. Aghagolzadeh, M., Zhang, F., Oweiss, K. An implantable VLSI architecture for real time spike sorting in cortically controlled Brain Machine Interfaces. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 1569-1572 (2010).
  18. Bonfanti, A., et al. A multi-channel low-power system-on-chip for single-unit recording and narrowband wireless transmission of neural signal. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , (2010).
  19. Chang, P., Hashemi, K. S., Walker, M. C. A novel telemetry system for recording EEG in small animals. J Neurosci Methods. 201, 106-115 (2011).
  20. Chen, H. Y., Wu, J. S., Hyland, B., Lu, X. D., Chen, J. J. A low noise remotely controllable wireless telemetry system for single-unit recording in rats navigating in a vertical maze. Med Biol Eng Comput. 46, 833-839 (2008).
  21. De Simoni, M. G., De Luigi, A., Imeri, L., Algeri, S. Miniaturized optoelectronic system for telemetry of in vivo voltammetric signals. J Neurosci Methods. 33, 233-240 (1990).
  22. Farshchi, S., Nuyujukian, P. H., Pesterev, A., Mody, I., Judy, J. W. A TinyOS-enabled MICA2-based wireless neural interface. IEEE Trans Biomed Eng. 53, 1416-1424 (2006).
  23. Gottesmann, C., Rodi, M., Rebelle, J., Maillet, B. Polygraphic recording of the rat using miniaturised telemetry equipment. Physiol Behav. 18, 337-340 (1977).
  24. Gottesmann, C., Rebelle, J., Maillet, B., Rodi, M., Rallo, J. L. Polygraphic recording in the rat by a miniaturized radiotelemetric technic. C R Seances Soc Biol Fil. 169, 1584-1589 (1975).
  25. Handoko, M. L., et al. A refined radio-telemetry technique to monitor right ventricle or pulmonary artery pressures in rats: a useful tool in pulmonary hypertension research. Pflugers Arch. 455, 951-959 (2008).
  26. Hanley, J., Zweizig, J. R., Kado, R. T., Adey, W. R., Rovner, L. D. Combined telephone and radiotelemetry of the EEG. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 26, 323-324 (1969).
  27. Irazoqui, P. P., Mody, I., Judy, J. W. Recording brain activity wirelessly. Inductive powering in miniature implantable neural recording devices. IEEE Eng Med Biol Mag. 24, 48-54 (2005).
  28. Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel miniature telemetric system for recording EEG activity in freely moving rats. J Neurosci Methods. 168, 119-126 (2008).
  29. Lee, S. B., Yin, M., Manns, J. R., Ghovanloo, M. A wideband dual-antenna receiver for wireless recording from animals behaving in large arenas. IEEE Trans Biomed Eng. 60, 1993-2004 (2013).
  30. Morrison, T., Nagaraju, M., Winslow, B., Bernard, A., Otis, B. P. A 0.5 cm(3) four-channel 1.1 mW wireless biosignal interface with 20 m range. IEEE Trans Biomed Circuits Syst. 8 (3), 138-147 (2014).
  31. Moscardo, E., Rostello, C. An integrated system for video and telemetric electroencephalographic recording to measure behavioural and physiological parameters. J Pharmacol Toxicol Methods. 62, 64-71 (2010).
  32. Mumford, H., Wetherell, J. R. A simple method for measuring EEG in freely moving guinea pigs. J Neurosci Methods. 107, 125-130 (2001).
  33. Nagasaki, H., Asaki, Y., Iriki, M., Katayama, S. Simple and stable techniques for recording slow-wave sleep. Pflugers Arch. 366, 265-267 (1976).
  34. Podgurniak, P. A simple, PC-dedicated, implanted digital PIM-radiotelemetric system. Part 2: The multichannel system. Biomed Tech (Berl). 46, 273-279 (2001).
  35. Ruedin, P., Bisang, J., Waser, P. G., Borbely, A. A. Sleep telemetry in the rat: I. a miniaturized FM–AM transmitter for EEG and EMG). Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 44, 112-114 (1978).
  36. Ruther, P., et al. Compact wireless neural recording system for small animals using silicon-based probe arrays. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 2284-2287 (2011).
  37. Saito, T., Watanabe, Y., Nemoto, T., Kasuya, E., Sakumoto, R. Radiotelemetry recording of electroencephalogram in piglets during rest. Physiol Behav. 84, 725-731 (2005).
  38. Sumiyoshi, A., Riera, J. J., Ogawa, T., Kawashima, R. A mini-cap for simultaneous EEG and fMRI recording in rodents. Neuroimage. 54, 1951-1965 (2011).
  39. Sundstrom, L. E., Sundstrom, K. E., Mellanby, J. H. A new protocol for the transmission of physiological signals by digital telemetry. J Neurosci Methods. 77, 55-60 (1997).
  40. Wang, M., et al. A telemetery system for neural signal acquiring and processing. Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. 28, 49-53 (2011).
  41. Cotugno, M., Mandile, P., D’Angiolillo, D., Montagnese, P., Giuditta, A. Implantation of an EEG telemetric transmitter in the rat. Ital J Neurol Sci. 17, 131-134 (1996).
  42. Vogel, V., Sanchez, C., Jennum, P. EEG measurements by means of radiotelemetry after intracerebroventricular (ICV) cannulation in rodents. J Neurosci Methods. 118, 89-96 (2002).
  43. Louis, R. P., Lee, J., Stephenson, R. Design and validation of a computer-based sleep-scoring algorithm. J Neurosci Methods. 133, 71-80 (2004).
  44. Tang, X., Sanford, L. D. Telemetric recording of sleep and home cage activity in mice. Sleep. 25, 691-699 (2002).
  45. Bassett, L., et al. Telemetry video-electroencephalography (EEG) in rats, dogs and non-human primates: methods in follow-up safety pharmacology seizure liability assessments. J Pharmacol Toxicol Methods. 70, 230-240 (2014).
  46. Authier, S., et al. Video-electroencephalography in conscious non human primate using radiotelemetry and computerized analysis: refinement of a safety pharmacology model. J Pharmacol Toxicol Methods. 60, 88-93 (2009).
  47. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Res. 354, 221-246 (2013).
  48. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mamm Genome. 24, 89-94 (2013).
  49. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Prog Neurobiol. 96, 220-241 (2012).
  50. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Depend. 92, 217-227 (2008).
  51. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. Eur J Anaesthesiol. 25, 113-117 (2008).
  52. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Front Neuroendocrinol. 31, 341-358 (2010).
  53. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Res. , 102-153 (2012).
  54. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neurosci Biobehav Rev. 28, 811-825 (2005).
  55. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress. Altern Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  56. Liles, J. H., Flecknell, P. A., Roughan, J., Cruz-Madorran, I. Influence of oral buprenorphine, oral naltrexone or morphine on the effects of laparotomy in the rat. Lab Anim. 32, 149-161 (1998).
  57. Liles, J. H., Flecknell, P. A. The effects of buprenorphine, nalbuphine and butorphanol alone or following halothane anaesthesia on food and water consumption and locomotor movement in rats. Lab Anim. 26, 180-189 (1992).
  58. Flecknell, P. A. Anaesthesia of animals for biomedical research. Br J Anaesth. 71, 885-894 (1993).
  59. Davis, J. A. Mouse and rat anesthesia and analgesia. Curr Protoc Neurosci. , (2008).
  60. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR J. 53, 55-69 (2012).
  61. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Res Brain Res Protoc. 14, 154-164 (2005).
  62. Lundt, A., et al. EEG radiotelemetry in small laboratory rodents: a powerful state-of-the art approach in neuropsychiatric, neurodegenerative, and epilepsy research. Neural Plast. , (2016).
check_url/pt/54216?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Papazoglou, A., Lundt, A., Wormuth, C., Ehninger, D., Henseler, C., Soós, J., Broich, K., Weiergräber, M. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. J. Vis. Exp. (112), e54216, doi:10.3791/54216 (2016).

View Video