Summary

Ikke-begrensende EEG Radiotelemetry: Epidural og Deep intracerebral stereo EEG elektrodeplassering

Published: June 25, 2016
doi:

Summary

Ikke-begrensende EEG radiotelemetry er en verdifull metodisk tilnærming til å ta opp i vivo langsiktig electroencephalograms fra fritt bevegelige gnagere. Denne detaljerte protokollen beskriver stereotaxic epidural og dyp intraelektrodeplassering i ulike områder av hjernen for å få pålitelige opptak av CNS rhythmicity og CNS relaterte atferds etapper.

Abstract

Implanterbare EEG radiotelemetry er av sentral betydning i den nevrologiske karakterisering av transgene musemodeller av nevropsykiatriske og nevrodegenerative sykdommer samt epilepsi. Denne kraftige teknikken ikke bare gi verdifull innsikt i de underliggende patofysiologiske mekanismer, altså., Den etiopathogenesis av CNS sykdommer, det forenkler også utvikling av nye translasjonsforskning, dvs., Terapeutiske tilnærminger. Mens konkurrerende teknikker som gjør bruk av opptaker som brukes i jakker eller tethered systemer lider av deres unphysiological besøksforbud til semi-begrensende karakter, radiotelemetric EEG opptak overvinne disse ulempene. Teknisk sett kan implanterbare EEG radiotelemetry for presis og svært følsom måling av epidural og dype, intracerebrale EEG under forskjellige fysiologiske og patofysiologiske forhold. Først presenterer vi en detaljert protokoll for en rett frem, vellykket,rask og effektiv teknikk for epidural (overflate) EEG opptak resulterer i høy kvalitet electrocorticograms. For det andre viser vi hvordan du kan implantere dype, intracerebrale EEG elektroder, f.eks i hippocampus (electrohippocampogram). For begge metoder blir en datastyrt 3D stereotaksisk elektrode implantasjon systemet som brukes. Den radiofrekvens-senderen i seg selv er implantert i en subkutan posen i både mus og rotter. Spesiell oppmerksomhet må også tas hensyn til pre-, peri- og postoperativ behandling av forsøksdyr. Preoperative fremstilling av mus og rotter som er egnet anestesi, så vel som postoperativ behandling og smertebehandling er beskrevet i detalj.

Introduction

Radiotelemetry er en mest verdifulle metodiske tilnærming for måling av en rekke av atferdsmessige og fysiologiske parametere i bevisste, ubundne dyr av forskjellige størrelser, spesielt i sammenheng med EEG, EKG, EMG, blodtrykk, kroppskjernetemperatur eller aktivitetsmålinger 1-7. Teoretisk kan enhver art analyseres ved hjelp av implanterbare EEG radiotelemetry fra laboratorie gnagere som mus og rotter til katter, hunder, griser og primater 3,8. Selv fisk, krypdyr og amfibier er underlagt radiotelemetric etterforskning 9. I løpet av de siste to tiår, har implanterbare EEG radiotelemetry vist seg å være verdifull i den karakteriseringen av en rekke transgene dyremodeller av humane sykdommer, så som epilepsi, søvnforstyrrelser, neurodegenerative og nevropsykiatriske lidelser 7,10-12. I det siste har mange metodiske tilnærminger som samler fysiologiske data inkludert biopotentials fra mus og rotter vært synkenderibed. Slitt i jakke opptaker systemer, fysiske beherskelse metoder, ikke-implantert radiotransmitters og tethered systemer har fått hoved oppmerksomhet i det siste 13,14. Nå til dags, forskjellige systemer for radiotelemetric implantasjon er kommersielt tilgjengelige. Men en litteratur skjerm også avdekket 29 publikasjoner som beskriver utviklingen av selvlagde radiotelemetric systemer 15-40. Mens hjemmelagde systemer er trolig bli billigere og mer brukertilpasset, kommersielt tilgjengelige systemer er rett frem, relativt enkle å installere og kan settes opp raskt.

Implanterbare EEG radiotelemetry har en rekke fordeler sammenlignet med konkurrerende teknikker som for eksempel fysiske metoder, fastspennings slitt i jakke systemer eller forankrede tilnærminger. Sistnevnte er tilbakehold per definisjon, altså., Er dyret ute av stand til å bevege seg eller normal oppførsel er svekket. Det kan også være nødvendig å bedøve dyret for kjøp av reansvarlig data. Moderne tethered systemer er imidlertid trolig bli mindre begrensende, men dette må være vitenskapelig validert. Radiotelemetry derimot tillater dyr å stille ut sitt fulle repertoar av atferd uten tid og rom begrensninger og dermed antas å være overlegen til å dempe tilnærminger og være mer forutsigbare for de resultater som kan erverves i mennesker 1,3. Det er kjent en god stund at besøks tilnærminger kan dramatisk endre grunnleggende fysiologiske parametre, f.eks., Matinntak, kroppen kjernetemperatur, blodtrykk og hjertefrekvens og fysisk aktivitet for eksempel tre. Tethered systemer representerer en fortsatt mye brukt klassiske besøks tilnærming 13,14. Elektrodene som er enten epidurale eller dype elektroder er vanligvis koblet til en miniatyr stikkontakt som er festet til skallen. Stikkontakten i seg selv er utsatt for feste av en kabel som muliggjør forholdsvis fri bevegelse av dyret. although dag tethered systemer har blitt svært filigran og svært fleksibel, er en av de store ulempene, at det fortsatt er halvbesøksforbud. Dessuten kan det være en risiko for infeksjon ved elektroden implantasjonsstedet som dyrene har en tendens til å manipulere eventuelle eksterne enheter som stammer fra kroppen (hodet). Selv om trådløs radiotelemetry teknologi i ulike arter har allerede blitt beskrevet i slutten av 60-tallet og har således eksistert i flere tiår, har det nylig blitt rimelig, pålitelig og relativt enkel å bruke 10,41,42, særlig i små laboratorie gnagere slike som mus og rotter. Små, miniatyr implanterbare EEG-sendere er nå kommersielt tilgjengelig og kan bli implantert i mus er større enn 20 g (~ 10 uker). Dermed har elektro karakterisering av transgene musemodeller i særdeleshet blir en dominerende innen anvendelse av implanterbare EEG radiotelemetry i disse dager. Animal størrelse er ikke lenger et absolutt eksperimentell RESTRICsjon, mens levetiden av senderne 'batteri faktisk er. Til tross for sin begrensede levetid, implanterbare transmitter systemer er i stand til å minimere de fleste ulemper knyttet til potensiell opptak-forbundet stress ved besøksforbud systemer. Gnagere kan presentere deres komplette armamentarium av fysiologiske atferd inkludert hvile, bevegelsesaktivitet (leting) og søvn (REM, slow-wave søvn) 43,44. Viktigere, kan implanterbare radiotelemetry sterkt redusere bruk av dyr 3. Foreløpig er det en intens diskusjon om hvordan man kan begrense antallet forsøksdyr i vitenskap og redusere deres lidelse. Klart, dyreforsøk og dyremodeller for menneske- og dyresykdommer er avgjørende for vår forståelse av bunnlinjen patofysiologi og påfølgende fremgang i terapi. Videre dyreforsøk er kritiske i narkotika forskning og utvikling. De trenger vesentlig bidra til prekliniske / toksikologiske studier i narkotika lisensieringdermed binde seg til både mennesker og dyr omsorg. Det er verdt å merke seg, at det for tiden ikke finnes alternativer er ennå tilgjengelig for dyr forskning for å forstå de komplekse patofysiologiske mekanismer som ellers ville være umulig å bli utløst. Samtidig, 3R, altså., Oppfordrer erstatning, reduksjon og raffinering strategi i EU og USA sterkt forskning på komplementære og alternative metoder. Radiotelemetry er et viktig eksempel på en vellykket 3R strategi som det kan redusere antall forsøksdyr og deres lidelser i forhold til andre teknikker.

Her har vi gi en detaljert og sammenhengende trinn-for-trinn-tilnærming for å utføre en subkutan pose implantasjon av en radiofrekvenssender i både mus og rotter. Denne første sekvensen er etterfulgt av en beskrivelse av stereotaksisk epidural og dypt intra EEG elektrode posisjonering. Spesiell oppmerksomhet er betalt til boforhold, anestesi, peri- og postoperativ smertestyring og mulige anti-infeksiøse behandling. Fokuset er på den datastyrte 3D stereotaxic tilnærming til pålitelig målrette epidural og dype intracerebrale strukturer. Vi kommenterer også på hyppige eksperimentelle fallgruver i EEG elektroder implantasjon og strategier for reduksjon av traumer og optimalisering av smertebehandling under postoperative utvinning. Til slutt, er eksempler på overflaten og dype EEG opptak presentert.

Protocol

Etikk Uttalelse: Alle dyreforsøk ble utført i henhold til retningslinjene for den lokale og institusjonelle Council on Animal Care (Universitetet i Bonn, BfArM, LANUV, Tyskland). I tillegg ble alle dyreforsøk utført i samsvar med overordnet regelverk, f.eks., Det europeiske fellesskap rådsdirektiv av 24 november 1986 (86/609 / EEC) eller enkelte regional eller nasjonal lovgivning. Spesifikk anstrengelser gjøres for å minimere antall dyr som brukes og deres lidelser. 1. forsøks…

Representative Results

Denne delen viser eksempler hentet fra overflaten og dype, intracerebrale EEG opptak. I utgangspunktet bør det være sagt at baseline opptak under fysiologiske betingelser er obligatorisk før påfølgende opptak følgende eksempel, farmakologisk behandling. Slike registrert grunn kan gi verdifull informasjon om funksjonelle gjensidige avhengigheten mellom hjernen rhythmicity med ulike atferds stater eller sove / circadian rhythmicity. Her viser vi eksempler på registrerte anf…

Discussion

Implanterbare EEG radiotelemetry er av sentral betydning som det er et ikke-begrensende teknikk slik at forsøksdyr til å utføre sitt fulle repertoar av atferd 1,3. Dette er av stor interesse som telemetrisk tilnærming gjør det mulig ikke bare spontan EEG opptak, men også opptak i henhold kognitive oppgaver og biologiske analytiske oppsett, for eksempel T-labyrint, radial labyrint, vann labyrinten, søvnmangel oppgaver eller når en EEG opptak er nødvendig eller nyttig under kompleks kognitiv eller moto…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Dr. Christina Ginkel (German Center for Neurodegenerative Diseases, DZNE), Dr. Michaela Möhring (DZNE) and Dr. Robert Stark (DZNE) for assistance in animal breeding and animal health care. This work was financially supported by the Federal Institute for Drugs and Medical Devices (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM) Bonn, Germany.

Materials

Carprofen (Rimadyl VET – InjektionA2:D43slösung) Pfizer PZN 0110208 20 ml
binocular surgical magnification microscope  Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
bulldog serrefine F.S.T. 18051-28 28mm
cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202 ordered at Th.Geyer
cotton tip applicators (sterile) Carl Roth  EH12.1
Dexpanthenole (Bepanthen Wund- und Heilsalbe) Bayer PZN: 1578818
drapes (sterile) Hartmann PZN 0366787
70% ethanol Carl Roth  9065.5
0.3% / 3% hydrogene peroxide solution Sigma 95321 30% stock solution 
gloves (sterile) Unigloves 1570
dental glas ionomer cement KentDental /NORDENTA 957 321
2% glutaraldehyde solution Sigma G6257
Graefe Forceps-curved, serrated F.S.T. 11052-10
Halsey Micro Needle Holder-Tungsten Carbide F.S.T. 12500-12 12.5 cm
heat-based surgical instrument sterilizer F.S.T. 18000-50
heating pad AEG HK5510 520010 ordered at myToolStore
high-speed dental drill Adeor SI-1708
Iris scissors extra thin  F.S.T. 14058-09 9 cm
Inhalation narcotic system (isoflurane) Harvard Apparatus GmbH 34-1352, 10-1340, 34-0422, 34-1041, 34-0401, 34-1067, 72-3044, 34-0426, 34-0387, 34-0415, 69-0230
Isoflurane Baxter 250 ml PZN 6497131
Ketamine Pfizer PZN 07506004
lactated Ringer’s solution (sterile) Braun L7502
Lexar-Baby Scissors-straight, 10 cm F.S.T. 14078-10 10 cm
Nissl staining solution Armin Baack BAA31712159
non-absorbable suture material 5-0/6-0 (sterile) SABANA (Sabafil) N-63123-45
Covidien (Sofsilk) S1172, S1173
Halsey Needle Holder F.S.T. 12001-13 13 cm
pads (sterile) ReWa Krankenhausbedarf 2003/01
0.9% saline (NaCl, sterile) Braun PZN:8609255
scalpel blades with handle (sterile) propraxis 2029/10
Standard Pattern Forceps F.S.T. 11000-12, 11000-14 12 cm and 14.5 cm length
Steel and tungsten electrodes parylene coated  FHC Inc., USA) UEWLGESEANND
stereotaxic frame Neurostar 51730M ordered at Stoelting
(Stereo Drive-New Motorized Stereotaxic)
tapes (sterile) BSN medical GmbH & Co. KG 626225
TA10ETA-F20  DSI 270-0042-001X Radiofrequency transmitter 3.9 g, 
3.9 g, 1.9 cc, input voltage range ± 2.5 mV,
channel bandwidth (B) 1-200 Hz, 
nominal sampling rate (f) 1000 Hz (f = 5B)
temperature operating range 34-41 °C
warranted battery life 4 months
TL11M2-F20EET  DSI 270-0124-001X Radiofrequency transmitter 
3.9 g, 1.9 cc, input voltage range ± 1.25 mV,
channel bandwidth (B) 1-50 Hz, 
nominal sampling rate (f) 250 Hz (f = 5B)
temperature operating range 34-41 °C
warranted battery life 1.5 months
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm F.S.T. 11021-12 12 cm length
Tungsten carbide iris scissors F.S.T. 14558-11 11.5 cm
Vibroslicer 5000 MZ Electron Microscopy Sciences 5000-005
Xylazine (Rompun) Bayer PZN: 1320422

Referências

  1. Kramer, K., et al. The use of radiotelemetry in small laboratory animals: recent advances. Contemp Top Lab Anim Sci. 40, 8-16 (2001).
  2. Kramer, K., et al. The use of telemetry to record electrocardiogram and heart rate in freely swimming rats. Methods Find Exp Clin Pharmacol. 17, 107-112 (1995).
  3. Kramer, K., Kinter, L. B. Evaluation and applications of radiotelemetry in small laboratory animals. Physiol Genomics. 13, 197-205 (2003).
  4. Kramer, K., Remie, R. Measuring blood pressure in small laboratory animals. Methods Mol Med. 108, 51-62 (2005).
  5. Kramer, K., et al. Use of telemetry to record electrocardiogram and heart rate in freely moving mice. J Pharmacol Toxicol Methods. 30, 209-215 (1993).
  6. Kramer, K., et al. Telemetric monitoring of blood pressure in freely moving mice: a preliminary study. Lab Anim. 34, 272-280 (2000).
  7. Guler, N. F., Ubeyli, E. D. Theory and applications of biotelemetry. J Med Syst. 26, 159-178 (2002).
  8. Aylott, M., Bate, S., Collins, S., Jarvis, P., Saul, J. Review of the statistical analysis of the dog telemetry study. Pharm Stat. 10, 236-249 (2011).
  9. Rub, A. M., Jepsen, N., Liedtke, T. L., Moser, M. L., Weber, E. P., 3rd, Surgical insertion of transmitters and telemetry methods in fisheries research. Am J Vet Res. 75, 402-416 (2014).
  10. Bastlund, J. F., Jennum, P., Mohapel, P., Vogel, V., Watson, W. P. Measurement of cortical and hippocampal epileptiform activity in freely moving rats by means of implantable radiotelemetry. J Neurosci Methods. 138, 65-72 (2004).
  11. Jeutter, D. C. Biomedical telemetry techniques. Crit Rev Biomed Eng. 7, 121-174 (1982).
  12. Williams, P., et al. The use of radiotelemetry to evaluate electrographic seizures in rats with kainate-induced epilepsy. J Neurosci Methods. 155, 39-48 (2006).
  13. Bertram, E. H., Lothman, E. W. Ambulatory EEG cassette recorders for prolonged electroencephalographic monitoring in animals. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 79, 510-512 (1991).
  14. Bertram, E. H., Williamson, J. M., Cornett, J. F., Spradlin, S., Chen, Z. F. Design and construction of a long-term continuous video-EEG monitoring unit for simultaneous recording of multiple small animals. Brain Res Brain Res Protoc. 2, 85-97 (1997).
  15. Russell, D. M., McCormick, D., Taberner, A. J., Malpas, S. C., Budgett, D. M. A high bandwidth fully implantable mouse telemetry system for chronic ECG measurement. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 7666-7669 (2011).
  16. Lin, D. C., Bucher, B. P., Davis, H. P., Sprunger, L. K. A low-cost telemetry system suitable for measuring mouse biopotentials. Med Eng Phys. 30, 199-205 (2008).
  17. Aghagolzadeh, M., Zhang, F., Oweiss, K. An implantable VLSI architecture for real time spike sorting in cortically controlled Brain Machine Interfaces. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 1569-1572 (2010).
  18. Bonfanti, A., et al. A multi-channel low-power system-on-chip for single-unit recording and narrowband wireless transmission of neural signal. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , (2010).
  19. Chang, P., Hashemi, K. S., Walker, M. C. A novel telemetry system for recording EEG in small animals. J Neurosci Methods. 201, 106-115 (2011).
  20. Chen, H. Y., Wu, J. S., Hyland, B., Lu, X. D., Chen, J. J. A low noise remotely controllable wireless telemetry system for single-unit recording in rats navigating in a vertical maze. Med Biol Eng Comput. 46, 833-839 (2008).
  21. De Simoni, M. G., De Luigi, A., Imeri, L., Algeri, S. Miniaturized optoelectronic system for telemetry of in vivo voltammetric signals. J Neurosci Methods. 33, 233-240 (1990).
  22. Farshchi, S., Nuyujukian, P. H., Pesterev, A., Mody, I., Judy, J. W. A TinyOS-enabled MICA2-based wireless neural interface. IEEE Trans Biomed Eng. 53, 1416-1424 (2006).
  23. Gottesmann, C., Rodi, M., Rebelle, J., Maillet, B. Polygraphic recording of the rat using miniaturised telemetry equipment. Physiol Behav. 18, 337-340 (1977).
  24. Gottesmann, C., Rebelle, J., Maillet, B., Rodi, M., Rallo, J. L. Polygraphic recording in the rat by a miniaturized radiotelemetric technic. C R Seances Soc Biol Fil. 169, 1584-1589 (1975).
  25. Handoko, M. L., et al. A refined radio-telemetry technique to monitor right ventricle or pulmonary artery pressures in rats: a useful tool in pulmonary hypertension research. Pflugers Arch. 455, 951-959 (2008).
  26. Hanley, J., Zweizig, J. R., Kado, R. T., Adey, W. R., Rovner, L. D. Combined telephone and radiotelemetry of the EEG. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 26, 323-324 (1969).
  27. Irazoqui, P. P., Mody, I., Judy, J. W. Recording brain activity wirelessly. Inductive powering in miniature implantable neural recording devices. IEEE Eng Med Biol Mag. 24, 48-54 (2005).
  28. Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel miniature telemetric system for recording EEG activity in freely moving rats. J Neurosci Methods. 168, 119-126 (2008).
  29. Lee, S. B., Yin, M., Manns, J. R., Ghovanloo, M. A wideband dual-antenna receiver for wireless recording from animals behaving in large arenas. IEEE Trans Biomed Eng. 60, 1993-2004 (2013).
  30. Morrison, T., Nagaraju, M., Winslow, B., Bernard, A., Otis, B. P. A 0.5 cm(3) four-channel 1.1 mW wireless biosignal interface with 20 m range. IEEE Trans Biomed Circuits Syst. 8 (3), 138-147 (2014).
  31. Moscardo, E., Rostello, C. An integrated system for video and telemetric electroencephalographic recording to measure behavioural and physiological parameters. J Pharmacol Toxicol Methods. 62, 64-71 (2010).
  32. Mumford, H., Wetherell, J. R. A simple method for measuring EEG in freely moving guinea pigs. J Neurosci Methods. 107, 125-130 (2001).
  33. Nagasaki, H., Asaki, Y., Iriki, M., Katayama, S. Simple and stable techniques for recording slow-wave sleep. Pflugers Arch. 366, 265-267 (1976).
  34. Podgurniak, P. A simple, PC-dedicated, implanted digital PIM-radiotelemetric system. Part 2: The multichannel system. Biomed Tech (Berl). 46, 273-279 (2001).
  35. Ruedin, P., Bisang, J., Waser, P. G., Borbely, A. A. Sleep telemetry in the rat: I. a miniaturized FM–AM transmitter for EEG and EMG). Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 44, 112-114 (1978).
  36. Ruther, P., et al. Compact wireless neural recording system for small animals using silicon-based probe arrays. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 2284-2287 (2011).
  37. Saito, T., Watanabe, Y., Nemoto, T., Kasuya, E., Sakumoto, R. Radiotelemetry recording of electroencephalogram in piglets during rest. Physiol Behav. 84, 725-731 (2005).
  38. Sumiyoshi, A., Riera, J. J., Ogawa, T., Kawashima, R. A mini-cap for simultaneous EEG and fMRI recording in rodents. Neuroimage. 54, 1951-1965 (2011).
  39. Sundstrom, L. E., Sundstrom, K. E., Mellanby, J. H. A new protocol for the transmission of physiological signals by digital telemetry. J Neurosci Methods. 77, 55-60 (1997).
  40. Wang, M., et al. A telemetery system for neural signal acquiring and processing. Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. 28, 49-53 (2011).
  41. Cotugno, M., Mandile, P., D’Angiolillo, D., Montagnese, P., Giuditta, A. Implantation of an EEG telemetric transmitter in the rat. Ital J Neurol Sci. 17, 131-134 (1996).
  42. Vogel, V., Sanchez, C., Jennum, P. EEG measurements by means of radiotelemetry after intracerebroventricular (ICV) cannulation in rodents. J Neurosci Methods. 118, 89-96 (2002).
  43. Louis, R. P., Lee, J., Stephenson, R. Design and validation of a computer-based sleep-scoring algorithm. J Neurosci Methods. 133, 71-80 (2004).
  44. Tang, X., Sanford, L. D. Telemetric recording of sleep and home cage activity in mice. Sleep. 25, 691-699 (2002).
  45. Bassett, L., et al. Telemetry video-electroencephalography (EEG) in rats, dogs and non-human primates: methods in follow-up safety pharmacology seizure liability assessments. J Pharmacol Toxicol Methods. 70, 230-240 (2014).
  46. Authier, S., et al. Video-electroencephalography in conscious non human primate using radiotelemetry and computerized analysis: refinement of a safety pharmacology model. J Pharmacol Toxicol Methods. 60, 88-93 (2009).
  47. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Res. 354, 221-246 (2013).
  48. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mamm Genome. 24, 89-94 (2013).
  49. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Prog Neurobiol. 96, 220-241 (2012).
  50. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Depend. 92, 217-227 (2008).
  51. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. Eur J Anaesthesiol. 25, 113-117 (2008).
  52. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Front Neuroendocrinol. 31, 341-358 (2010).
  53. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Res. , 102-153 (2012).
  54. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neurosci Biobehav Rev. 28, 811-825 (2005).
  55. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress. Altern Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  56. Liles, J. H., Flecknell, P. A., Roughan, J., Cruz-Madorran, I. Influence of oral buprenorphine, oral naltrexone or morphine on the effects of laparotomy in the rat. Lab Anim. 32, 149-161 (1998).
  57. Liles, J. H., Flecknell, P. A. The effects of buprenorphine, nalbuphine and butorphanol alone or following halothane anaesthesia on food and water consumption and locomotor movement in rats. Lab Anim. 26, 180-189 (1992).
  58. Flecknell, P. A. Anaesthesia of animals for biomedical research. Br J Anaesth. 71, 885-894 (1993).
  59. Davis, J. A. Mouse and rat anesthesia and analgesia. Curr Protoc Neurosci. , (2008).
  60. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR J. 53, 55-69 (2012).
  61. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Res Brain Res Protoc. 14, 154-164 (2005).
  62. Lundt, A., et al. EEG radiotelemetry in small laboratory rodents: a powerful state-of-the art approach in neuropsychiatric, neurodegenerative, and epilepsy research. Neural Plast. , (2016).
check_url/pt/54216?article_type=t&slug=non-restraining-eeg-radiotelemetry-epidural-deep-intracerebral

Play Video

Citar este artigo
Papazoglou, A., Lundt, A., Wormuth, C., Ehninger, D., Henseler, C., Soós, J., Broich, K., Weiergräber, M. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. J. Vis. Exp. (112), e54216, doi:10.3791/54216 (2016).

View Video