Summary

Fluorescência de células activadas (FACS) e Gene Análise da expressão de Fos-expressando neurônios de fresco e congelado cérebro de um rato Tissue

Published: August 27, 2016
doi:

Summary

Aqui apresentamos um protocolo de fluorescência de células activadas (FACS) para estudar alterações moleculares em Fos-expressando conjuntos neuronais a partir de tecido cerebral fresco e congelado. O uso de tecido congelado permite o isolamento FACS de muitas áreas do cérebro mais várias sessões para maximizar o uso de indivíduos animais valiosos.

Abstract

O estudo da neuroplasticidade e alterações moleculares em comportamentos aprendidos está a mudar a partir do estudo de regiões do cérebro inteiro ao estudo de conjuntos específicos de neurônios ativados escassamente distribuídos chamados conjuntos neuronais que medeiam aprendidas associações. Fluorescência de células activadas (FACS) foi recentemente optimizada para o tecido do cérebro do rato adulto e permitiu o isolamento de neurónios activados utilizando anticorpos contra o marcador neuronal NeuN e proteínas Fos, um marcador de neurónios fortemente activado. Até agora, os neurónios que expressam-Fos e outros tipos de células foram isoladas a partir de tecido fresco, o que implicou dias longos de processamento e permitiu número muito limitado de amostras de cérebro de ser avaliadas após procedimentos comportamentais longas e complexas. Aqui descobrimos que os rendimentos de Fos-expressando neurônios e mRNA Fos de striatum dorsal foram semelhantes entre o tecido recém-dissecados e tecido congelado a -80 ºC durante 3 – 21 dias. Além disso, confirmou o fenótipodas células NeuN positivos e NeuN-negativas classificados por expressão avaliar gene de natureza neuronal (NeuN), astrócitos (GFAP), oligodendrocíticos (Oligo2) e microgial marcadores (Iba1), o que indica que o tecido congelado pode também ser utilizado para o isolamento de FACS de tipos de células gliais. Em geral, é possível recolher, dissecar e congelar o tecido cerebral para sessões múltiplas de FACS. Isto maximiza a quantidade de dados obtidos a partir de sujeitos animais valiosos que têm muitas vezes sido submetidos a procedimentos comportamentais longos e complexos.

Introduction

Durante o aprendizado, os animais formam associações entre conjuntos complexos de estímulos altamente específicos. Esta informação de alta resolução é pensado para ser codificado por alterações dentro dos padrões específicos de neurônios escassamente distribuídos chamados conjuntos neuronais. Conjuntos neuronais foram recentemente identificados pela indução de genes imediatamente precoces (IEGs), tais como Fos, arco, e Zif268 e seus produtos proteicos em neurónios que foram fortemente activadas durante o comportamento ou a exposição a estímulos. Fos-expressando neurônios, em particular, têm sido mostrados para desempenhar papéis causais no contexto e comportamentos aprendidos 1-4 específico-cue. Assim, neuroadaptações moleculares únicas dentro desses neurônios Fos-expressando ativados são os melhores candidatos para os mecanismos neurais que codificam aprendidas associações formadas durante distúrbios de aprendizagem e de aprendizagem anormal normais, tais como vício e transtorno de estresse pós-traumático (PTSD) 5.

fluoréscence de células activadas (FACS) permitiu recentemente a análise de neuroadaptações moleculares únicas dentro dos neurônios Fos-expressam. A citometria de fluxo e classificação celular foram desenvolvidos na década de 1960 para 6,7 caracterizar e isolar as células de acordo com as suas características de dispersão de luz e de imunofluorescência, e têm sido muito utilizados em imunologia e na investigação do cancro. No entanto citometria de fluxo e FACS requer células individuais dissociadas que são difíceis de obter a partir de tecido do cérebro adulto. FACS foi usado pela primeira vez para isolar e analisar Green Fluorescent Protein (GFP) -expressing neurónios do estriado de ratos transgénicos que não exigem rotulagem anticorpo 8,9. Foi desenvolvido um método de FACS baseada em anticorpos 10 para isolar e avaliar alterações moleculares em Fos-expressando neurónios activados por droga e / ou sinais do tipo em animais selvagens 11-15. Neste método, os neurónios são marcadas com um anticorpo contra o marcador neuronal geral NeuN, enquanto que os neurónios fortemente activadosão marcadas com um anticorpo contra Fos. Embora o nosso método inicial necessário o agrupamento de até 10 ratos por amostra de tecido fresco, modificações posteriores do protocolo permitiu o isolamento FACS de Fos-expressando neurônios e Polymerase Chain Reaction quantitativa de análise (qPCR) de áreas cerebrais distintas de um único rato 13-15 . No geral, as alterações moleculares únicas foram encontrados em Fos-expressando neurônios ativados durante uma variedade de comportamentos ao contexto e ativada por sinalização em pesquisa vício 12,14,15.

Um grande problema logístico com a realização de FACS em tecido fresco é que leva um dia inteiro para dissociar o tecido e processo pelo FACS. Além disso, apenas cerca de quatro amostras pode ser processado por dia. Isto normalmente significa que apenas uma área do cérebro pode ser avaliado a partir de todos os cérebros e os restantes áreas do cérebro têm que ser descartados. Este é um grande problema para os procedimentos comportamentais baixo rendimento como a auto-administração e trai extinçãoning que requer cirurgia e muitas semanas de treinamento intensivo. Além disso, os procedimentos comportamentais longas e complicadas no dia do teste faz com que seja difícil de executar de FACS no mesmo dia. Seria uma vantagem significativa de ser capaz de congelar os cérebros dos animais imediatamente após o teste de comportamento, e, em seguida, isolar-Fos neurónios que expressam a partir de uma ou mais áreas do cérebro em momentos diferentes da escolha do investigador.

Aqui demonstramos que o protocolo de FACS pode ser usado para isolar neurónios Fos-expressam (e outros tipos de células) a partir de tecido cerebral, tanto frescos e congelados. Como um exemplo, nós isolamos neurônios do corpo estriado de ratos após as injeções de metanfetamina agudas e de ratos ingênuos, sem injeções (condição de controle) Fos-expressar. No entanto, este protocolo FACS pode ser usado após qualquer tratamento comportamental ou farmacológica. análise qPCR subsequente de nossas amostras indicaram que a expressão do gene a partir desses tipos de células pode ser avaliada com simieficiência lar a partir de tecido fresco e congelado.

Protocol

Todos os experimentos foram realizados de acordo com o Comitê Institucional animal Cuidado e Uso (IACUC) dos Institutos Nacionais de Saúde Guia para o Cuidado e Uso de Animais de laboratório 16. Nota: Todos os passos abaixo uso tubos de ligação baixas centrífuga que foram mantidos em gelo, a menos que especificado em contrário. 1. Preparação antes da coleção Tissue Definir a centrífuga a 4 o C. Fogo polonês …

Representative Results

Classificando neurônios Fos-positivos e Fos-negativos de tecido dorsal striatum frescos e congelados de ratos individuais após as injeções de metanfetamina agudas. O protocolo acima descrito foi utilizado para classificar os neurónios positivos e Fos-Fos-negativas a partir de um único rato estriado dorsal 90 minutos depois de uma injecção intraperitoneal de metanfetamina (5 mg / kg). ratos ingênuos em suas gaiolas for…

Discussion

FACS pode ser usado para classificar os neurónios e outro tipo de células a partir de qualquer tecido cerebral adulto fresca ou congelada. Como mencionado na introdução, a capacidade de usar tecido congelado permite uma utilização óptima das amostras de animais que tenham sido submetidos a procedimentos comportamentais complexas e prolongadas, como a auto-administração e de recaída estudos em pesquisa vício. Estes procedimentos comportamentais geralmente leva 1-2 horas ou mais tempo, e necessitam de todos os …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the NIDA Intramural Research Program (Bruce T. Hope, Yavin Shaham). F.J.R. was supported by an appointment to the NIDA Research Participation Program sponsored by the National Institutes of Health and administered by the Oak Ridge Institute for Science and Education, and received additional financial support from a Becas-Chile scholarship managed by CONICYT and the Universidad de los Andes, Santiago, Chile. The Johns Hopkins FACS Core facility was supported by Award P30AR053503 from the National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases of the National Institute of Health.

Materials

Brain matrix CellPoint Scientific 69-2160-1 to obtain coronal brain slices
Hibernate A low fluorescence  Brain Bits HA-lf  Buffer A' in the protocol is used for processing tissue and cells from the dissociation to fixation steps
Accutase  Millipore SCR005 Enzyme solution' in the protocol is used for enzymatic digestion of tissue prior to trituration
Protein LoBind Tube 1.5 mL, PCR clean Eppendorf 22431081 to prevent cell lost during the protocol
Cell Strainer, 40 µm BD Falcon 352340 to filter cell suspension
Cell Strainer, 100 µm BD Falcon 352360 to filter cell suspension
Falcon 5 ml round-bottom polystyrene test tube with cell strainer snap cap BD Bioscience 352235 to filter cell suspension before passing though the flow cytometer
Pasteur Pipet, Glass NIH supply 6640-00-782-6008 to do tissue trituration
Milli-Mark Anti-NeuN-PE, Clone A60 (mouse monoclonal) antibody EMD Millipore FCMAB317PE antibody to detect neurons
Phospho-c-Fos (Ser32) (D82C12) XP Rabbit (Alexa Fluor 647 Conjugate)  Cell Signaling Technology  8677 antibody to detect Fos-expressing cells
DAPI Sigma D8417 to label nuclei
PicoPure RNA Isolation Kit Applied Biosystems. KIT0204 The kit includes the RNA extraction buffer for step 6.14. It is used to collect sorted cells
Superscript III first strand cDNA synthesis system Invitrogen 18080-051 to synthesize cDNA from RNA
TaqMan PreAmp Master Mix Applied Biosystems. 4391128 to do targeted-preamplification from cDNA
TaqMan Advance Fast Master  Applied Biosystems. 4444963 to do PCR using TaqMan probes
Fos TaqMan probe Applied Biosystems. Rn00487426_g1 TaqMan probe/primers
NeuN TaqMan probe Applied Biosystems. CACTCCAACAGCGTGAC nucleotide sequence for neuronal gene marker
NeuN Forward primer Applied Biosystems. GGCCCCTGGCAGAAAGTAG nucleotide sequence for neuronal gene marker
NeuN Reverse primer Applied Biosystems. TTCCCCCTGGTCCTTCTGA nucleotide sequence for neuronal gene marker
Gfap TaqMan probe Applied Biosystems. Rn00566603_m1 TaqMan probe/primers for astrocityc gene marker
iba-1 TaqMan probe Applied Biosystems. Rn00574125_g1 TaqMan probe/primers for microglya gene marker
Gapdh TaqMan probe Applied Biosystems. CTCATGACCACAGTCCA nucleotide sequence for reference/housekeeping gene
Gapdh Forward primer Applied Biosystems. GACAACTTTGGCATCGTGGAA nucleotide sequence for reference/housekeeping gene
Gapdh Reverse primer Applied Biosystems. CACAGTCTTCTGAGTGGCAGTGA nucleotide sequence for reference/housekeeping gene
Oligo2 TaqMan probe Applied Biosystems. Rn01767116_m1  TaqMan probe/primers for oligodendrocytic gene marker
P1000 pipettor Rainin 17014382 It is refered to as the pipette with a large tip diameter in steps 3.1 and 3.3 for mild tissue trituration and step 6.7 to resuspend cells
7500 Fast Real-time PCR system Applied Biosystems. 446985 for quantitative PCR
FACSAria I Cell Sorter BD Biosciences for FACS sorting

Referências

  1. Bossert, J. M., et al. Ventral medial prefrontal cortex neuronal ensembles mediate context-induced relapse to heroin. Nat Neurosci. 14, 420-422 (2011).
  2. Cruz, F. C., et al. Role of nucleus accumbens shell neuronal ensembles in context-induced reinstatement of cocaine-seeking. J Neurosci. 34, 7437-7446 (2014).
  3. Fanous, S., et al. Role of orbitofrontal cortex neuronal ensembles in the expression of incubation of heroin craving. J Neurosci. 32, 11600-11609 (2012).
  4. Koya, E., et al. Targeted disruption of cocaine-activated nucleus accumbens neurons prevents context-specific sensitization. Nat Neurosci. 12, 1069-1073 (2009).
  5. Cruz, F. C., Rubio, F. J., Hope, B. T. Using c-fos to study neuronal ensembles in corticostriatal circuitry of addiction. Brain Research. 1628, 157-173 (2015).
  6. Kamentsky, L. A., Melamed, M. R. Spectrophotometric cell sorter. Science. 156, 1364-1365 (1967).
  7. Kamentsky, L. A., Melamed, M. R., Derman, H. Spectrophotometer: new instrument for ultrarapid cell analysis. Science. 150, 630-631 (1965).
  8. Lobo, M. K., Karsten, S. L., Gray, M., Geschwind, D. H., Yang, X. W. FACS-array profiling of striatal projection neuron subtypes in juvenile and adult mouse brains. Nat Neurosci. 9, 443-452 (2006).
  9. Lobo, M. K. Molecular profiling of striatonigral and striatopallidal medium spiny neurons past, present, and future. Int Rev Neurobiol. 89, 1-35 (2009).
  10. Guez-Barber, D., et al. FACS purification of immunolabeled cell types from adult rat brain. J Neurosci Methods. 203, 10-18 (2012).
  11. Guez-Barber, D., et al. FACS identifies unique cocaine-induced gene regulation in selectively activated adult striatal neurons. J Neurosci. 31, 4251-4259 (2011).
  12. Fanous, S., et al. Unique gene alterations are induced in FACS-purified Fos-positive neurons activated during cue-induced relapse to heroin seeking. J Neurochem. 124, 100-108 (2013).
  13. Liu, Q. R., et al. Detection of molecular alterations in methamphetamine-activated Fos-expressing neurons from a single rat dorsal striatum using fluorescence-activated cell sorting (FACS). J Neurochem. 128, 173-185 (2014).
  14. Rubio, F. J., et al. Context-induced reinstatement of methamphetamine seeking is associated with unique molecular alterations in Fos-expressing dorsolateral striatum neurons. J Neurosci. 35, 5625-5639 (2015).
  15. Li, X., et al. Incubation of methamphetamine craving is associated with selective increases in expression of Bdnf and trkb, glutamate receptors, and epigenetic enzymes in cue-activated fos-expressing dorsal striatal neurons. J Neurosci. 35, 8232-8244 (2015).
  16. US National Research Council. . Guide for the care and use of laboratory animals. , (2011).
  17. Koya, E., Margetts-Smith, G., Hope, B. T. Daun02 inactivation of behaviourally-activated Fos-expressing neuronal ensembles. Current Protocols. , (2016).
  18. Cruz, F. C., et al. New technologies for examining the role of neuronal ensembles in drug addiction and fear. Nat Rev Neurosci. 14, 743-754 (2013).
  19. Mardones, G., Gonzalez, A. Selective plasma membrane permeabilization by freeze-thawing and immunofluorescence epitope access to determine the topology of intracellular membrane proteins. J Immunol Methods. 275, 169-177 (2003).
  20. Molyneaux, B. J., et al. DeCoN: genome-wide analysis of in vivo transcriptional dynamics during pyramidal neuron fate selection in neocortex. Neuron. 85, 275-288 (2015).
  21. Schwarz, J. M. Using fluorescence activated cell sorting to examine cell-type-specific gene expression in rat brain tissue. J Vis Exp. , e52537 (2015).
check_url/pt/54358?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Rubio, F. J., Li, X., Liu, Q., Cimbro, R., Hope, B. T. Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS) and Gene Expression Analysis of Fos-expressing Neurons from Fresh and Frozen Rat Brain Tissue. J. Vis. Exp. (114), e54358, doi:10.3791/54358 (2016).

View Video