Summary

Tre laboratorium prosedyrer for å vurdere forskjellige manifestasjoner av impulsivitet i rotter

Published: March 17, 2019
doi:

Summary

Vi presenterer tre protokoller som vurdere ulike former for impulsivitet i rotter og andre små pattedyr. Intertemporale valg prosedyrer vurdere tendensen å rabatt verdien av forsinket resultater. Differensial forsterkning av lave priser og funksjon-negativ diskriminering evaluere hemming reaksjonsevne med og uten straff for upassende svar, henholdsvis.

Abstract

Denne artikkel gir en guide for gjennomføring og analyse av tre condition-baserte protokoller evaluere impulsivitet i rotter. Impulsivitet er et meningsfullt begrep fordi den er forbundet med psykiatriske tilstander hos mennesker og mistilpasset atferd i ikke-menneskelige dyr. Det antas at impulsivitet er sammensatt av forskjellige faktorer. Det er laboratorium protokoller utviklet for å vurdere hver av disse faktorene bruker standardiserte automatisert utstyr. Forsinkelse diskontere er knyttet til manglende evne til å være motivert av forsinket resultater. Denne faktoren vurderes gjennom intertemporale valg-protokoller, som består av å presentere enkelt valg situasjon involverer en umiddelbar belønning og en større, men forsinket belønning. Svar hemming underskuddet er forbundet med den manglende evne til å holde prepotent svar. Differensial forsterkning av lave priser (DLR) og funksjonen-negativ diskriminering protokoller vurdere svar hemming underskudd faktoren av impulsivitet. Tidligere pålegger en tilstand til en motivert person som de fleste vente en minimal tidsperiode på svar skal belønnes. Sistnevnte evaluerer kapasiteten til enkeltpersoner å avstå fra mat søker svar når et signal av fravær av maten presenteres. Formålet med disse protokollene er å bygge et objektivt kvantitative mål impulsivitet, som tjener til å gjøre cross-species sammenligninger, slik at muligheten av translasjonsforskning. Fordelene med disse bestemte protokoller inkluderer deres enkelt oppsett og program, som stammer fra den relativt lille mengden utstyr som trengs og automatisert natur disse protokollene.

Introduction

Impulsivitet kan være definert som en opptreden dimensjon tilknyttet mistilpasset resultater1. Til tross for utbredt bruk av dette begrepet er det ingen universell enighet på nøyaktige definisjonen. Faktisk, har flere forfattere definert impulsivitet ved å gi eksempler på impulsiv atferd eller deres konsekvenser, i stedet for å skildre hvilke karakteristiske aspekter styrer fenomenet. For eksempel, impulsivitet antas for å involvere en manglende evne til å vente, planlegge, hemmer prepotent atferd, eller en insensitivitet forsinket resultater2, og det har vært ansett som en kjerne sårbarhet for vanedannende atferd3. Bari og Robbins4 har preget impulsivitet som samtidig forekomst av sterke impulser, utløses av dispositional og situasjonsbestemte, og dysfunksjonelle hemmende prosesser. En annen definisjon ble levert av Dalley og Robbins, som har uttalt at impulsivitet kan betraktes som en predisposisjon for rask, ofte tidlig, handlinger uten riktig innsikt5. Likevel en annen definisjon av impulsivitet, foreslått av Sosa og dos Santos6, en opptreden tendens som avviker en organisme fra maksimere tilgjengelig belønninger på grunn av ervervet kontroll utøves over organismens svarer av stimuli forresten relatert til disse gevinstene.

På grunn av atferdsmessige prosesser knyttet til impulsivitet, innebærer sin nevrofysiologiske substrat strukturer til felles med de av motiverte atferd, beslutninger og belønning verdsette. Dette støttes av studier som viser at strukturer av cortico-striatal veien (f.eks nucleus accumbens [NAc], prefrontal cortex [PFC], amygdala og caudate putamen [CPU]), i tillegg til stigende monoaminergic nevrotransmitter systemet, delta i uttrykket av impulsive atferd7. Men er nevrale underlaget av impulsivitet mer kompleks enn. Men NAc og PFC er involvert i impulsiv atferd, disse strukturene er del av et mer komplekst system, og også består av underlag som har forskjellige funksjoner (mer detaljert dokumentasjon, se Dalley og Robbins5).

Uansett kontroverser om sin natur og biologisk substrat, denne opptreden dimensjonen kalles variere fra enkeltpersoner, da det kan betraktes som en egenskap og i individer, da det kan betraktes som en stat8. Impulsivitet har lenge vært anerkjent som en funksjon av noen psykiske lidelser som oppmerksomhet-underskudd/hyperaktivitet (ADHD), rusmisbruk og maniske episoder9. Det synes å være en høy enighet om at impulsivitet er sammensatt av flere dissociable faktorer, inkludert uvilje mot å vente (dvs. forsinke diskontere), manglende evne til å avstå prepotent svar (dvs. hemmende underskudd), problemer med å fokusere på relevante informasjon (dvs. uoppmerksomhet) og en tendens til å engasjere seg i risikofylte situasjoner (dvs., følelse søker)5,10,11. Hver av disse faktorene kan vurderes gjennom spesielle atferdsmessige oppgaver, som vanligvis er tilordnet to kategorier: valg og svar hemming (disse kan ha forskjellige etiketter mellom hver forfatternes taksonomier). Noen viktige funksjoner i atferdsdata oppgaver er at de kan brukes over flere dyrearter2 og at de tillater studere impulsivitet i kontrollerte laboratorium.

Modellering en opptreden dimensjon med laboratoriet ikke-menneskelige dyr har en rekke fordeler inkludert muligheten for måling bestemt, operasjonalisert atferdsmessige tendenser, slik at forskerne i stor grad redusere forvirrende variabler (f.eks forurensning av tidligere liv hendelser4) og gjennomføre eksperimentelle manipulasjoner som kronisk farmakologiske administrasjon, nevrotoksisk lesjoner, eller genetisk manipulasjon. De fleste av disse protokollene har analoge versjoner for mennesker, som gjør sammenligninger lett5. Viktigere, er bruke analoger av protokollene laboratorium i mennesker effektivt å hjelpe diagnose for psykiske lidelser som ADHD (spesielt når flere enn én protokoll er anvendt12).

Som alle andre psykologisk måling, må laboratorium protokoller for å vurdere impulsivitet overholde bestemte kriterier for å oppnå målet med gir innsikt i fenomenet under studien. Skal anses som en passende modell av impulsive atferd et laboratorium protokollen bør være pålitelig, og besitte (minst, i noen grad) ansikt, konstruksjon eller prediktiv validitet13. Pålitelighet kan bety at en effekt på målingen selv om en manipulasjon er gjennomført to eller flere ganger, eller at målingen er konsekvent over tid eller på tvers av ulike situasjoner14,15. Funksjonen tidligere ville være spesielt nyttig for eksperimentelle studier, mens sistnevnte ville være så for correlational studier14. Ansiktet gyldigheten refererer til graden som hva måles ligner fenomenet som skal modelleres, som er, for eksempel påvirket av de samme variablene. Prediktiv validitet refererer til evnen til et mål å forutsi fremtidige resultater i protokoller som mål å måle den eller en relatert konstruksjon. Endelig refererer begrepsvaliditet til om protokollen gjengir atferd som er teoretisk lyd om prosess(er) antatt for å være involvert i fenomenet under studien. Men selv om disse er svært ettertraktet funksjoner, må en være varsom hvis sier at en protokoll er gyldig utelukkende basert på disse kriteriene16.

Det er flere protokoller måle impulsivitet i laboratoriet innstillinger. Men denne artikkel presenterer tre slike metoder: intertemporale valg, differensial forsterkning av lave priser, og funksjonen-negativ diskriminering. Intertemporale prosedyrer mål å vurdere forsinkelse diskontere (dvs. problemer med forsinket resultater til å kontrollere virkemåten) komponent impulsivitet. Den grunnleggende rasjonale for denne protokollen er konfrontere fag med to belønninger som varierer i både størrelsen og forsinkelse17. Ett alternativ gir en liten umiddelbar belønning (betegnes mindre før, SS) og den andre gir en større, men forsinket belønning (kalt større senere LL). Andelen av svar til SS alternativ kan brukes som en indeks av impulsivitet18. Differensial forsterkning av lave prosedyrer, faktor på impulsivitet skal vurderes er svaret hemming (dvs. manglende evne til å holde prepotent svar) når det er en negativ straff beredskap på upassende svare. Begrunnelsen for denne protokollen introduserer emner til en situasjon der den eneste måten å skaffe belønninger er å stoppe deres svarer19. Til slutt, funksjonen-negativ diskriminering prosedyren evaluerer svar hemming når det er ingen eksplisitt straff på upassende svare. Begrunnelsen for denne protokollen (også kjent som Pavlovian betinget hemming eller A / AX-prosedyre) er å evaluere fag evne til å holde tilbake unødvendige svar20.

Disse prosedyrene skiller seg ut i forhold til andre har noen praktiske funksjoner. For eksempel er prosedyrene presenteres her egnet for gjennomført i minimal utstyrt condition kamre (også kjent som “the Skinner box”). Figur 1 viser et diagram over en typisk condition kammer. Condition kamre er nyttig forskning instrumenter av mange fordeler. De tillater automatisk samling av relativt store mengder data, maksimere antall emner vurdert for enhet av tid og rom21. Videre atferdsmessige studier i condition kamre krever minimal forsker intervensjon, noe som reduserer tiden og innsatsen investert av laboratoriet staff, i motsetning til andre tilgjengelige metoder (f.eks ikke-automatiske T-labyrinter, sett-skiftende bokser) 21. minimere forskernes intervensjon også bidra til å redusere forskernes bias, redusere effekten av forskernes læringskurve, og en reduksjon av håndtering-indusert stress22. Typisk condition kamre er relativt standardisert for bruk med middels størrelse gnagere, som rotter (R. norvegicus), men kan brukes til å studere andre taxa, som tilsvarende størrelse marsupials (f.eks D. albiventris, og L. crassicaudata 23). det er også kommersielle condition kamre tilrettelagt for mindre (f.eks mus [M. musculus]) og større (f.eks ikke-menneskelige primater) arter. Sette opp og gjennomføre protokollene presenteres i denne artikkelen krever minimalt med programmering kunnskaper og krever et ganske lavt antall oppnåelige input og output-enheter, i motsetning til mer avanserte alternative metoder (f.eks 5-valget føljetong reaksjonstid oppgave [5- CSRTT]24 og tegn-sporing25).

Figure 1
Figur 1: Diagram av en condition kammer prototype. Hovedkomponentene i condition kammeret inkluderer: (1) venstre spaken, (2) mat beholder (utstyrt med lateral infrarød dioder å oppdage hodet oppføringer), (3) focalized lys, (4) høyttaler for tone utslipp (bakfra), (5) hus lys (bakfra), (6) mat dispenser. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Protocol

De tre protokollene beskrevet i dette avsnittet krever bruk av rotter som fag. De fleste laboratorium rotte stammer egner; for eksempel Wistar, lang-Evans, Sprague-Dawley, etc. Etikk av Universidad Iberoamericana, følge guiden og bruk av forsøksdyr (Institute of laboratorium dyr Resources, provisjon på biovitenskap, National Research Council, 1996) godkjent laboratorium protokoller å bli beskrevet. 1. dyr bolig og forberedelse Bestemme antall rotter som skal brukes. Dette avhenge…

Representative Results

De tre protokollene som er beskrevet i denne artikkelen kan hver utføres alene eller sammen med andre; Dette avhenger av problemet, som i sin tur vil bestemme studien design. Eksempler på studien design som er kompatibel med disse protokollene er: (1) tid serien studier, som tar sikte på å beskrive langsgående endringer i ytelse; (2) kvantifisering av individuelle variasjon, som har som mål å fastslå påliteligheten av tiltak; (3) cross-sectional korrelasjon studier, som mål å v…

Discussion

Denne artikkel gitt en beskrivelse av diverse forskjellige protokoller for screening impulsivitet i rotter. Det er hevdet at disse bestemte protokoller er foretrakk for enkel programmering og data analyse og krever færre drift og stimulans enheter enn andre tilgjengelige alternativer. Det er flere avgjørende skritt for effektiv gjennomføring av disse protokollene, som (1) gir en problemstilling, (2) velge en passende studien design, (3) programmering valgt protokoll, (4) gjennomføre studiet, (5) innsamling av data, (…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Florencia Mata, Maria Elena Chávez, Miguel Burgos og Alejandro Tapia for å gi teknisk assistanse. Vi ønsker også å takke Sarah Gordon Frances for hennes nyttige kommentarer på et tidligere utkast til denne artikkelen og Vladimir Orduña for vennlige gi rådata fra en publisert artikkel. Takk til Claudio Nallen for å opprette diagrammet i figur 1. Vi er takknemlige for Dirección de Investigación av Universidad Iberoamericana Ciudad de México for korrekturlesing/redigering tjenester og video produksjon utgifter.

Materials

25 Pin Cables Med Associates SG-213F Connect smart control cards to smart control panels
40 Pin Ribbon Cable Med Associates DIG-700C Connects the computer with the interface cabinet
Computer Dell Computer Company T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB For controlling and monitoring protocols’ processes
Conductor Cables Med Associates SG-210CP-8 Provide power to the smart control panels via the rack mount power supply
Food dispenser with pedestal Med Associates ENV-203M-45 (12937) Silently provides 45 mg food pellets 
Head-Entry Detector Med Associates ENV-254-CB Uses an infrared photo-beam to detect head entries into the food receptacle
House Light Med Associates ENV-215M For providing  diffuse illumination inside the chamber  
Interface Cabinet Med Associates SG-6080D Pod that can hold up to eight smart control cards
Med-PC IV Software Med Associates SOF-735 Translate codes into commands for operating outputs and recording/storing input information
Multiple tone generator  Med Associates ENV-223 (597) For controlling the frequency of the tones
Panel fillers Med Associates ENV-007-FP For filling modular walls when devices are not used
Pellet Receptacle Med Associates ENV-200R2M Receives and holds food pellets delivered by the dispenser
Rack Mount Power Supply Med Associates DIG-700F Provides power to the interface cabinet
Retractable Lever Med Associates ENV-112CM (10455) Detects lever-pressing responses; projects into the chamber or retracts as needed
Smart Control Cards Med Associates DIG-716 Controls up to eight inputs and four outputs of a conditioning chamber 
Smart Control Panels Med Associates SG-716 (3341) Connect smart cards to the devices within the conditioning chambers
Speaker  Med Associates ENV-224AM For providing tones inside the chamber
Standard Modular Chambers for Rat Med Associates ENV-008 Made of aluminum channels designed to hold modular devices 
Standard sound-, light-, and temperature isolating shells Med Associates ENV-022MD Serve to harbor each conditioning chamber
Stimulus Light Med Associates ENV-221M For providing a round focalized light stimulus
Three Pin Cables Med Associates SG-216A-2 Connects smart control panel with each of the input and output devices in the conditioning chambers

References

  1. Loxton, N. J. The role of reward sensitivity and impulsivity in overeating and food addiction. Current Addiction Reports. 5 (2), 212-222 (2018).
  2. Richards, J. B., Gancarz, A. M., Hawk, L. W., Bardo, M. T., Fishbein, D. H., Milich, R. . Inhibitory control and drug abuse prevention. , (2011).
  3. Gullo, M. J., Loxton, N. J., Dawe, S. Impulsivity: Four ways five fectors are not basic to addiction. Addictive Behaviors. 39 (11), 1547-1556 (2014).
  4. Bari, A., Robbins, T. W. Inhibition and impulsivity: Behavioral and neural basis of response control. Progress in Neurobiology. 108, 44-79 (2013).
  5. Dalley, J. W., Robbins, T. W. Fractionating impulsivity: neuropsychiatric implications. Nature Reviews Neuroscience. 18 (3), 158-171 (2017).
  6. Sosa, R., dos Santos, C. V. Toward a unifying account of impulsivity and the development of self-control. Perspectives in Behavior Science. , 1-32 (2018).
  7. King, J. A., Tenney, J., Rossi, V., Colamussi, L., Burdick, S. Neural substrates underlying impulsivity. Annals of the New York Academy of Sciences. 1008 (1), 160-169 (2003).
  8. Stayer, R., Ferring, D., Schmitt, M. J. States and traits in psychological assessment. European Journal of Psychological Assessment. 8 (2), 79-98 (1992).
  9. Moeller, F. G., Barratt, E. S., Dougherty, D. M., Schmitz, J. M., Swann, A. C. Psychiatric aspects of impulsivity. American Journal of Psychiatry. 158, 1783-1793 (2001).
  10. Evenden, J. L. Varieties of impulsivity. Psychopharmacology. 146 (4), 348-361 (1999).
  11. Winstanley, C. A. The utility of rat models of impulsivity in developing pharmacotherapies for impulse control disorders. British Journal of Pharmacology. 164 (4), 1301-1321 (2011).
  12. Solanto, M. V., et al. The ecological validity of delay aversion and response inhibition as measures of impulsivity in AD/HD: A supplement to the NIMH multimodal treatment study of AD/HD. Journal of Abnormal Child Psychology. 29 (3), 215-218 (2001).
  13. van der Staay, F. J. Animal models of behavioral dysfunctions: Basic concepts and classifications, and an evaluation strategy. Brain Research Reviews. 52, 131-159 (2006).
  14. Hedge, C., Powell, G., Summer, P. The reliability paradox: Why robust cognitive tasks do not produce reliable individual differences. Behavioral Research Methods. , 1-21 (2017).
  15. Nakagawa, S., Schielzeth, H. Repeatability for Gaussian and non-Gaussian data: A practical guide for biologists. Biological Reviews. 85, 935-956 (2010).
  16. Sjoberg, E. Logical fallacies in animal model research. Behavior and Brain Functions. 13 (1), (2017).
  17. Rachlin, H. Self-control: Beyond commitment. Behavioral and Brain Sciences. 18 (01), 109 (1995).
  18. Logue, A. W. Research on self-control: An integrating framework. Behavioral and Brain Sciences. 11 (04), 665 (1988).
  19. Kramer, T. J., Rilling, M. Differential reinforcement of low rates: A selective critique. Psychological Bulletin. 74 (4), 225-254 (1970).
  20. Sosa, R., dos Santos, C. V. Conditioned inhibition and its relationship to impulsivity: Empirical and theoretical considerations. The Psychological Record. , (2018).
  21. Gallistel, C. R., Balci, F., Freestone, D., Kheifets, A., King, A. Automated, quantitative cognitive/behavioral screening of mice: For genetics, pharmacology, animal cognition and undergraduate instruction. Journal of Visualized Experiments. (84), (2014).
  22. Skinner, B. F. A case history in scientific method. American Psychologist. 11 (5), 221-233 (1956).
  23. Papini, M. R. Associative learning in the marsupials Didelphis albiventris and Lutreolina crassicaudata. Journal of Comparative Psychology. 102 (1), 21-27 (1988).
  24. Leonard, J. A. 5 choice serial reaction apparatus. Medical Research Council of Applied Psychology Research. , 326-359 (1959).
  25. Robinson, T. E., Flagel, S. B. Dissociating the Predictive and Incentive Motivational Properties of Reward-Related Cues Through the Study of Individual Differences. Biological Psychiatry. 65 (10), 869-873 (2009).
  26. Charan, J., Kantharia, N. D. How to calculate sample size in animal studies?. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 4 (4), 303-306 (2013).
  27. Toth, L. A., Gardiner, T. W. Food and water restriction protocols: Physiological and behavioral considerations. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 39 (6), 9-17 (2000).
  28. Deluty, M. Z. Self-control and impulsiveness involving aversive events. Journal of Experimental Psychology: Animal Behavior Processes. 4, 250-266 (1978).
  29. Cabrera, F., Robayo-Castro, B., Covarrubias, P. The ‘huautli’ alternative: Amaranth as reinforcer in operant procedures. Revista Mexicana de Análisis de la Conducta. 36, 71-92 (2010).
  30. Ferster, C. B., Skinner, B. F. . Schedules of reinforcement. , (1957).
  31. Orduña, V., Valencia-Torres, L., Bouzas, A. DRL performance of spontaneously hypertensive rats: Dissociation of timing and inhibition of responses. Behavioural Brain Research. 201 (1), 158-165 (2009).
  32. Freestone, D. M., Balci, F., Simen, P., Church, R. Optimal response rates in humans and animals. Journal of Experimental Psychology: Animal Behavior and Cognition. 41 (1), 39-51 (2015).
  33. Sanabria, F., Killeen, P. R. Evidence for impulsivity in the Spontaneously Hypertensive Rat drawn from complementary response-withholding tasks. Behavioral and Brain Functions. 4 (1), 7 (2008).
  34. van den Bergh, F. S., et al. Spontaneously hypertensive rats do not predict symptoms of attention-deficit hyperactivity disorder. Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 83, 11 (2006).
  35. Topping, J. S., Pickering, J. W. Effects of punishing different bands of IRTs on DRL responding. Psychological Reports. 31 (19-22), (1972).
  36. Richards, J. B., Sabol, K. E., Seiden, L. S. DRL interresponse-time distributions: quantification by peak deviation analysis. Journal of the Experimental Analysis of Behavior. 60 (2), 361-385 (1993).
  37. Orduña, V. Impulsivity and sensitivity to amount and delay of reinforcement in an animal model of ADHD. Behavioural Brain Research. 294, 62-71 (2015).
  38. Harmer, C. J., Phillips, G. D. Enhanced conditioned inhibition following repeated pretreatment with d -amphetamine. Psychopharmacology. 142 (2), 120-131 (1999).
  39. Lister, S., Pearce, J. M., Butcher, S. P., Collard, K. J., Foster, G. Acquisition of conditioned inhibition in rats is impaired by ablation of serotoninergic pathways. European Journal of Neuroscience. 8, 415-423 (1996).
  40. Meyer, H. C., Bucci, D. J. The contribution of medial prefrontal cortical regions to conditioned inhibition. Behavioral Neuroscience. 128 (6), 644-653 (2014).
  41. McNicol, D. . A primer of signal detection theory. , (1972).
  42. Carnero, S., Morís, J., Acebes, F., Loy, I. Percepción de la contingencia en ratas: Modulación fechneriana y metodología de la detección de señales. Revista Electrónica de Metodología Aplicada. 14 (2), (2009).
  43. López, H. H., Ettenberg, A. Dopamine antagonism attenuates the unconditioned incentive value of estrus female cues. Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 68, 411-416 (2001).
  44. Schotte, A., Janssen, P. F. M., Megens, A. A. H. P., Leysen, J. E. Occupancy of central neurotransmitter receptors by risperidone, clozapine and haloperidol, measured ex vivo. Brain Research. 631 (2), 191-202 (1993).
  45. van Hest, A., van Haaren, F., van de Poll, N. Haloperidol, but not apomorphine, differentially affects low response rates of male and female wistar rats. Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 29, 529-532 (1988).
  46. Finnegan, K. T., Ricaurte, G., Seiden, L. S., Schuster, C. R. Altered sensitivity to d-methylamphetamine, apomorphine, and haloperidol in rhesus monkeys depleted of caudate dopamine by repeated administration of d-methylamphetamine. Psychopharmacology. 77, 43-52 (1982).
  47. Britton, K. T., Koob, G. F. Effects of corticotropin releasing factor, desipramine and haloperidol on a DRL schedule of reinforcement. Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 32, 967-970 (1989).
  48. Maricq, A. V., Church, R. The differential effects of haloperidol and metamphetamine on time estimation in the rat. Psychopharmacology. 79, 10-15 (1983).
  49. Dalley, J. W., et al. Nucleus accumbens D2/3 receptors predict trait impulsivity and cocaine reinforcement. Science. 315, 1267-1270 (2007).
  50. Cole, B. J., Robbins, T. W. Effects of 6-hydroxydopamine lesions of the nucleus accumbens septi on performance of a 5-choice serial reaction time task in rats: Implications for theories of selective attention and arousal. Behavior and Brain Research. 33, 165-179 (1989).
  51. Reynolds, B., de Wit, H., Richards, J. B. Delay of gratification and delay discounting in rats. Behavioural Processes. 59 (3), 157-168 (2002).
  52. Evenden, J. L., Ryan, C. N. The pharmacology of impulsive behavior in rats: The effects of drugs on response choice with varying delays of reinforcement. Psychopharmacology. 128, 161-170 (1996).
  53. Autor, S. M., Hendry, D. P. . Conditioned reinforcement. , (1969).
  54. van den Broek, M. D., Bradshaw, C. M., Szabadi, E. Behaviour of ‘impulsive’ and ‘non-impulsive’ humans in a temporal differentiation schedule of reinforcement. Personality and Individual Differences. 8 (2), 233-239 (1987).
  55. McGuire, P. S., Seiden, L. S. The effects of tricyclicantidepressants on performance under a differential-reinforcement-of-low-rates schedule in rats. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 214 (3), 635-641 (1980).
  56. O’Donnell, J. M., Seiden, L. S. Differential-reinforcement-of-low-rates 72-second schedule: Selective effects of antidepressant drugs. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 224 (1), 80-88 (1983).
  57. Seiden, L. S., Dahms, J. L., Shaughnessy, R. A. Behavioral screen for antidepressants: The effects of drugs and electroconvulsive shock on performance under a differential-reinforcement-of-low-rates schedule. Psychopharmacology. 86, 55-60 (1985).
  58. He, Z., Cassaday, H. J., Howard, R. C., Khalifa, N., Bonardi, C. Impaired Pavlovian conditioned inhibition in offenders with personality disorders. The Quarterly Journal of Experimental Psychology. 64 (12), 2334-2351 (2011).
  59. He, Z., Cassaday, H. J., Bonardi, C., Bibi, P. A. Do personality traits predict individual differences in excitatory and inhibitory learning?. Frontiers in Psychology. 4, 1-12 (2013).
  60. Bucci, D. J., Hopkins, M. E., Keene, C. S., Sharma, M., Orr, L. E. Sex differences in learning and inhibition in spontaneously hypertensive rats. Behavioural Brain Research. 187 (1), 27-32 (2008).
  61. Gershon, J. A meta-analytic review of gender differences in ADHD. Journal of Attention Disorders. 5, 143-154 (2012).
  62. Mobini, S., et al. Effects of lesions of the orbitofrontal cortex on sensitivity to delayed and probabilistic reinforcement. Psychopharmacology. 160 (3), 290-298 (2002).
  63. Bouton, M. E., Nelson, J. B. Context-specificity of target versus feature inhibition in a negative-feature discrimination. Journal of Experimental Psychology: Animal Behavior Processes. 20 (1), 51-65 (1994).
  64. Bouton, M. E., Nelson, J. B., Schmajuk, N., Holland, P. . Occasion setting: Associative learning and cognition in animals. , 69-112 (1998).
  65. Rescorla, R. A. Pavlovian conditioned inhibition. Psychological Bulletin. 72 (2), 77-94 (1969).
  66. Miller, R. R., Matzel, L. D., Bower, G. H. . The psychology of learning and motivation. , (1988).
  67. Williams, D. A., Overmier, J. B., Lolordo, V. M. A reevaluation of Rescorla’s early dictums about conditioned inhibition. Psychological Bulletin. 111 (2), 275-290 (1992).
  68. Papini, M. R., Bitterman, M. E. The two-test strategy in the study of inhibitory conditioning. Psychological Review. 97 (3), 396-403 (1993).
  69. Sosa, R., Ramírez, M. N. Conditioned inhibition: Critiques and controversies in the light of recent advances. Journal of Experimental Psychology: Animal Behavior and Cognition. , (2018).
  70. Fox, A. T., Hand, D. J., Reilly, M. P. Impulsive choice in a rodent model of attention-deficit/hyperactivity disorder. Behavioural Brain Research. 187, 146-152 (2008).
  71. Foscue, E. P., Wood, K. N., Schramm-Sapyta, N. L. Characterization of a semi-rapid method for assessing delay discounting in rodents. Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 101, 187-192 (2012).
  72. Brucks, D., Marshall-Pescini, S., Wallis, L. J., Huber, L., Range, F. Measures of Dogs’ Inhibitory Control Abilities Do Not Correlate across Tasks. Frontiers in Psychology. 8, (2017).
  73. McDonald, J., Schleifer, L., Richards, J. B., de Wit, H. Effects of THC on Behavioral Measures of Impulsivity in Humans. Neuropsychopharmacology. 28 (7), 1356-1365 (2003).
  74. Reynolds, B., Ortengren, A., Richards, J. B., de Wit, H. Dimensions of impulsive behavior: Personality and behavioral measures. Personality and Individual Differences. 40 (2), 305-315 (2006).
  75. Dellu-Hagedorn, F. Relationship between impulsivity, hyperactivity and working memory: a differential analysis in the rat. Behavioral and Brain Functions. 2 (10), 18 (2006).
  76. López, P., Alba, R., Orduña, V. Individual differences in incentive salience attribution are not related to suboptimal choice in rats. Behavior and Brain Research. 341 (2), 71-78 (2017).
  77. Ho, M. Y., Al-Zahrani, S. S. A., Al-Ruwaitea, A. S. A., Bradshaw, C. M., Szabadi, E. 5-Hydroxytryptamine and impulse control: prospects for a behavioural analysis. Journal of Psychopharmacology. 12 (1), 68-78 (1998).
  78. Sagvolden, T., Russell, V. A., Aase, H., Johansen, E. B., Farshbaf, M. Rodent models of attention-deficit/hyperactivity disorder. Biological Psychiatry. 57, 9 (2005).
  79. Tomie, A., Aguado, A. S., Pohorecky, L. A., Benjamin, D. Ethanol induces impulsive-like responding in a delay-of-reward operant choice procedure: impulsivity predicts autoshaping. Psychopharmacology. 139 (4), 376-382 (1998).
  80. Monterosso, J., Ainslie, G. Beyond discounting: possible experimental models of impulse control. Psychopharmacology. 146 (4), 339-347 (1999).
  81. Burguess, M. A., Rabbit, P. . Methodology of frontal and executive function. , 81-116 (1997).
  82. Watterson, E., Mazur, G. J., Sanabria, F. Validation of a method to assess ADHD-related impulsivity in animal models. Journal of Neuroscience Methods. 252, 36-47 (2015).
  83. Hackenberg, T. D. Of pigeons and people: some observations on species differences in choice and self-control. Brazilian Journal of Behavior Analysis. 1 (2), 135-147 (2005).
  84. Asinof, S., Paine, T. A. The 5-choice serial reaction time task: A task of attention and impulse control for rodents. Journal of Visualized Experiments. (90), e51574 (2014).
  85. Masaki, D., et al. Relationship between limbic and cortical 5-HT neurotransmission and acquisition and reversal learning in a go/no-go task in rats. Psychopharmacology. 189, 249-258 (2006).
  86. Bari, A., et al. Prefrontal and monoaminergic contributions to stop-signal task performance in rats. The Journal of Neuroscience. 31, 9254-9263 (2011).
  87. Flagel, S. B., Watson, S. J., Robinson, T. E., Akil, H. Individual differences in the propensity to approach signals vs goals promote different adaptations in the dopamine system of rats. Psychopharmacology. 191, 599-607 (2007).
  88. Swann, A. C., Lijffijt, M., Lane, S. D., Steinberg, J. L., Moeller, F. G. Trait impulsivity and response inhibition in antisocial personality disorder. Journal of Psychiatric Research. 43 (12), 1057-1063 (2009).
  89. Lawrence, A. J., Luty, J., Bogdan, N. A., Sahakian, B. J., Clark, L. Impulsivity and response inhibition in alcohol dependence and problem gambling. Psychopharmacology. 207 (1), 163-172 (2009).
  90. Dougherty, D. M., et al. Behavioral impulsivity paradigms: a comparison in hospitalized adolescents with disruptive behavior disorders. Journal of Child Psychology and Psychiatry. 44 (8), 1145-1157 (2003).
  91. Rosval, L., et al. Impulsivity in women with eating disorders: Problem of response inhibition, planning, or attention. International Journal of Eating Disorders. 39 (7), 590-593 (2006).
  92. Huddy, V. C., et al. Reflection impulsivity and response inhibition in first-episode psychosis: relationship to cannabis use. Psychological Medicine. 43 (10), 2097-2107 (2013).
check_url/59070?article_type=t&slug=three-laboratory-procedures-for-assessing-different-manifestations

Play Video

Cite This Article
Sosa, R., Saavedra, P., Niño de Rivera, R., Lago, G., Moreno, P., Galicia-Castillo, O., Hernández-Guerrero, C., Buenrostro-Jáuregui, M. Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats. J. Vis. Exp. (145), e59070, doi:10.3791/59070 (2019).

View Video