Summary

Физиологические пациент выведенных 3D сфероидов для анти-неопластических наркотиков скрининга целевой рак стволовых клеток

Published: July 05, 2019
doi:

Summary

Этот протокол описывает генерацию сфероидов, полученных из пациента, и анализ вниз по течению, включая количественную оценку пролиферации, тестирование цитотоксичности, цитометрию потока, оленивание иммунофлюоресценции и конфокальные изображения, для оценки препарата потенциал кандидатов в качестве анти-неопластической терапии. Этот протокол поддерживает прецизионную медицину с определением специфических препаратов для каждого пациента и стадии заболевания.

Abstract

В этом протоколе мы описываем процедуру генерации опухолевых сфероидов в 384-хорошо висячих каплях, чтобы обеспечить высокосквозной скрининг противораковой терапии в физиологически репрезентативной микросреде. Мы описываем формирование пациентов полученных сфероидов стволовых клеток, а также, манипуляции этих сфероидов для тщательного анализа после лечения наркотиками. В частности, мы описываем сбор сфероидной морфологии, пролиферации, жизнеспособности, токсичности наркотиков, фенотипа клеток и данных о локализации клеток. Этот протокол в значительной степени фокусируется на методах анализа, которые легко реализуются с помощью 384-хорошо висящей платформы drop, что делает его идеальным для скрининга с высокой пропускной проликстью наркотиков. Хотя мы подчеркиваем важность этой модели в исследованиях рака яичников и исследования стволовых клеток рака, 384-хорошо платформа поддается исследованию других типов рака и моделей заболеваний, расширяя полезность платформы во многих областях. Улучшая скорость персонализированного скрининга на наркотики и качество результатов скрининга за счет легко реализуемых физиологически репрезентативных 3D культур, эта платформа, по прогнозам, поможет в разработке новых терапевтических и специфических для пациентов стратегии лечения, и, таким образом, имеют широкое клиническое воздействие.

Introduction

Смертность от рака во всем мире достигла 9,8 миллионаслучаев смерти в 2018 году 1, что подчеркивает необходимость развития улучшенной терапии. К сожалению, стоимость разработки противораковых препаратов растет, при этом разработка одного лекарства стоимостью около 650 миллионов долларов США2 указывает на необходимость совершенствования стратегий разработки новых противораковых препаратов. Раковые стволовые клетки (CSCs), которые характеризуются повышенной химиорезистентности3, способность к самообновлению, и способность семян новыхопухолей4, как полагают, несет ответственность за рецидив опухоли4, метастаз 5 , и химиорезистентность4,6, которые все способствуют злокачественной способности опухоли и, следовательно, высокий уровень смертности. При раке яичников, эти клетки находятся обогащенные в злокачественных асцитов жидкости в полости перитонеальной полости, состояние, связанное с плохими клиническими исходами1. В результате злокачественных возможностей CSCs, наблюдается толчок к разработке новых CSC ориентации наркотиков для использования в сочетании с традиционной химиотерапии. Существует ряд проблем, которые сопровождают разработку CSC ориентации наркотиков, включая: 1) трудности в расширении и поддержании CSCs in vitro; 2) нехватка образцов пациентов; 3) физиологическая значимость культурной платформы; и 4) неоднородность в чувствительности к лекарственным препаратам между пациентами. В этом протоколе излагается реализация платформы 3D-культуры с высокой пропускной стоимостью, которая может преодолеть каждую из этих проблем. В частности, эта система позволяет быстро скрининг атиса с использованием небольшого числа пациентов полученных яичников CSCs, и в значительной степени поддается вниз по течению методов анализа. В то время как идеально подходит для изучения рака яичников и CSCs, наша платформа также ценна в изучении других видов рака и дифференцированных типов клеток в сложных 3D-средах.

Сложные 3-мерные (3D) модели имеют решающее значение при изучении микроокружения опухоли (TME), которая представляет собой 3D нишу, состоящую из раковых клеток, нераковых поддерживающих клеток и внеклеточных матричных (ECM) белков4. Эта 3D-среда приводит к уникальной морфологии клеток, клеток и клеточной матрицы взаимодействий, дифференциации клеток, миграции клеток, плотности клеток, и диффузии градиентов по сравнению с традиционной 2D-клеточной культуры в пробирке4. Все эти факторы кульминацией дифференциальной реакции наркотиков в 3D культур, проявляя повышенную лекарственную устойчивость и физиологическую актуальность7,8. В связи с ролью 3D TME в дифференциации CSC и химиорезности, очень важно, чтобы экран для CSC ориентации наркотиков в физиологических микросредах. Улучшение физиологической значимости платформ скрининга наркотиков CSC имеет потенциал для улучшения пациента конкретных скрининга наркотиков, разработка лекарственных средств, формулировка стратегий лечения, и в конечном итоге клинические результаты. Не менее важно, чтобы платформа, используемая для скрининга лекарственных средств, была высокой пропускной способом исовместима с методами анализа вниз по течению, чтобы свести к минимуму затраты, время и время клинического перевода перспективных препаратов 9.

В настоящее время комплекс TME лучше всего поддерживать для применения скрининга наркотиков через in vivo модели, такие как морин сингенных моделей опухолей, клеточной линии полученных ксенотрансплантатов, и пациента полученных ксенотрансплантата (PDX) модели12, как они обеспечивают физиологические Условия. Тем не менее, низкая пропускная стоимость этих моделей, а также, стоимость, время и технические навыки, которые они требуют ограничивает их полезность в быстрой, высокой пропускной стьюбиния наркотиков скрининга приложений13. В качестве альтернативы этим моделям in vivo, многие модели in vitro 3D, используя гидрогели8, культуры в микрофлюидных устройствах или устройствах “орган-на-чипе”10,14, и неприсоединения культур3,8 были также разработаны, в связи с их низким барьером для входа с точки зрения стоимости, времени и требуемого набора навыков.

Платформы культуры гидрогеля выгодны в тонком контроле, предоставляемом над матричной композицией, механическими свойствами и матричной структурой15; однако, они могут ингибировать культуру клетки высокой плотности14. Кроме того, сбор клеток из гидрогелей может осложнить анализ ниже по течению, из-за потенциально вредного воздействия методов сбора урожая15. Микрофлюидические устройства, с другой стороны, являются микромасштабными устройствами, которые позволяют обнаруживать выход в пределах одного устройства и для клеточной культуры в физиологически значимых масштабах с минимальным потреблением реагентов, снижением времени реакции, минимичными отходами и быстрая диффузия14. Эти характеристики делают их перспективными платформами для исследования токсичности, эффективности и фармакокинетики. Тем не менее, проблемы эффективной, количественной, воспроизводимой и удобной для пользователя 3D-клеточной культуры, а также громоздких и дорогостоящих насосных систем ограничили микрофлюидные приложения в высокопроизводительных исследованиях10. Эффективные установки обнаружения и потенциально трудное внедрение в различных областях также препятствуют широкому внедрению микрофлюидных систем10.

Напротив, сфероиды, генерируемые в неприсоединения в вращающихся смесителях (нутаторах), сверхнизких пластинах крепления и висячих каплях, не включают в себя матричные компоненты, определяемые пользователем. Эти методики особенно актуальны для изучения рака яичников, так как несоблюдение условий являются репрезентативными условий, в которых сфероиды растут в полости перитонеальной полости5. В рамках этих неприсоединения методы культуры, nutator и висит падение сфероидов было показано, чтобы показать более высокое уплотнение, ремоделирование, и химиорезистентность по сравнению с сфероидами, генерируемых в ультра-низких пластин вложения, предлагая увеличение физиологических актуальность16,17,18,19. Из-за увеличения емкости для высокопроизводительного скрининга от меньших размеров скважин и минимальных требуемых номеров клеток, генерация сфероидов в висячих пластинах является идеальной платформой для скрининга наркотиков. Здесь мы представляем настраиваем 3D физиологические платформы в 384-хорошо висит падение пластин, что легко реализовать и высоко поддается вниз по течению анализа, что делает его идеальным для высокой пропускной способности наркотиков скрининга рака яичников и яичников CSCs.

Наша 3D физиологическая платформа обеспечивает все преимущества 3D-культуры, в том числе физиологические контакты клеток, градиенты диффузии, плотность клеток, и естественно производства белков ECM, которые могут способствовать реалистичным лекарственным реакциям16, 17,18,19. Кроме того, генерируя эти сфероиды с помощью CSCs, полученных из пациента, мы можем определить конкретные реакции пациента на препараты1 с большим количеством технических реплик одновременно, чтобы преодолеть неоднородность, которая может быть найдена в опухоли пациента образцы20. Кроме того, 3D-культура была показана дляповышения поддержания популяций CSC 3,16 и, таким образом, является репрезентативным для обогащенных популяций CSC в ascites7. Это в сочетании с легким анализом вниз по течению, включая анализ цитометрии потока жизнеспособности и пропорций CSC позволяет оптимально оценивать эффективность CSC, нацеленную на эффективность препарата. Наконец, эта физиологичная платформа совместима с визуализацией в несколько точек времени в ходе эксперимента, оценкой гибели клеток и пролиферации, организацией клеток и морфологией с иммуногистохимией, растворимым сигнализирующим с ELISA на условии средние, клеточные фенотипы с цитометрией потока и экспрессией генов после ПЦР.

Protocol

Все образцы пациентов собираются в соответствии с утвержденным протоколом IRB от согласных пациентов, чьи образцы де-идентифицированы после удаления опухоли и асцита. 1. Поколение сфероидов из малых номеров клеток в 384-хорошо висячие пластины Drop Поместите висячие пл?…

Representative Results

Сфероиды, образованные с помощью клеточных линий или csCs, полученных пациентом, могут быть сформированы с диапазоном небольших номеров клеток в пределах висячих капель(рисунок 2A). Сфероиды образуют надежно всего 10 клеток на скважину, что позволяет сохранить редкие образ…

Discussion

384-хорошо висит падение пластины платформы для 3D сфероидов формирования легко реализован инструмент для любой клеточной биологии или рака биологии лабораторий. Эта физиологическая платформа позволяет изучать клеточные линии, а также первичные образцы пациентов в физиологически знач…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа поддерживается в первую очередь DOD OCRP Ранняя карьера Следователь премии W81XWH-13-1-0134 (GM), DOD Пилот награда W81XWH-16-1-0426 (GM), DOD Следователь Инициированный награду W81XWH-17-OCRP-IIRA (GM), Ривкин Центр рака яичников и Мичигана яичников Альянс. Исследование, о которых сообщается в этой публикации, было поддержано Национальным институтом рака Национальных институтов здравоохранения под номером премии P30CA046592. CMN поддерживается Национальным научным фондом стипендий в соответствии с Грант Омской No 1256260. MEB поддерживается Департаментом образования аспирантуры в областях национальных потребностей (GAANN) стипендий.

Materials

0.25% trypsin-EDTA Gibco ILT25200056
10 mL serological pipet Fisher Scientific 13-678-11E
10,000 cSt Si oil Millipore Sigma 63148-62-9 Used to coat spheroid array mold to facilitate removal of tissue processing gels, like Histogel, from the mold.
100 mm tissue culture dish Thermo Scientific 130182
15 ml conical tube Celltreat FL4021
1X DMEM for Serum Free Medium Gibco 11965-092
1X F12 for Serum Free Medium Gibco 11765-054
1X phosphate buffered saline (PBS) Gibco ILT10010023
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Thermo Fisher D1306
40 µm filter Fisher Scientific 22363547
6-well plate Fisher Scientific 353046
Accutase Innovative Cell Technologies Inc. 1449 A gentle cell detachment enzyme composed of proteolytic and collagenolytic enzymes.
ACK Lysing Buffer Thermo Scientific A1049201
alamarBlue Invitrogen DAL1025 Resazurin dye used to measure viability and proliferation of cells based on their ability to reduce resazurin to resorufin, which is highly fluorescent.
ALDEFLUOR assay kit Stem Cell Tech 1700 Kit to identify stem and progenitor cells that express high levels of aldehyde dehydrogenase , an indicator of cancer stem cells. The kit is composed of ALDEFLUOR Reagent, DEAB, Hydrochloric Acid, Dimethylsulphoxide, and ALDEFLUOR Assay Buffer.
ALDEFLUOR Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) Stem Cell Tech 1705 Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) is an inhibitor of ALDH isozymes, used to determine non-specific ALDH staining.
Andor iXon x3 CCD Camera Oxford Instruments
Antibiotics and Antimycotics Gibco 15240-062
APC-isotype IgG2b Miltenyi biotec 130-092-217 Isotype control to quantify non-specific staining of IgG2b antibodies.
B27 Supplement Gibco 17504044
basic Fibroblast Growth Factor Stem Cell Technologies 78003.1
BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes Fisher Scientific 14-826-79
BioTek Synergy HT Microplate Reader BioTek 7091000
CD133-APC Miltenyi biotec 130-113-184 Fluorescent antibody targeting CD133, a cancer stem cell marker.
cellSens Dimension Software Olympus
Cisplatin Sigma-Aldrich P4394 Platinum based chemotherapy agent that functions as an alkylating agent that disrupts DNA.
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306
Epidermal Growth Factor Gibco PHG0311
EVOS XL Core Cell Imaging System Life Technologies AME3300
Fetal Bovine Serum – premium (FBS) Atlanta Biologicals S11150
Ficoll 400 Sigma-Aldrich F4375
Hemacytometer Hausser Scientific 1490
Histogel Thermo Scientific HG-4000-012 Tissue processing gel that can penetrate and hold the specimen within the gel while preventing discoloration around the specimen upon staining.
Human Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells Lonza PT-5006
Human Microvascular Endothelial Cells Lonza CC2543
Insulin-Transferrin-Selenium Supplement Gibco 51500-056
Live/Dead viability kit Invitrogen L3224 Kit for the fluorescence based detection of live (calcein-AM) and dead cells (Ethidium Homodimer-1).
MEM Non-essential Amino Acids Gibco 11140-050
MetaMorph 7.8 Software Molecular Devices
Olympus IX81 Inverted Confocal Microscope Olympus
Olympus IX83 Research Inverted Microscope Olympus
Parafilm M Thomas Scientific 7315D35 Thermoplastic polymer strips that serve to limit droplet evaporation in hanging drop plates while still allowing for gas exchange.
Perfecta 3D 384 Well Hanging Drop Plates 3D Biomatrix HDP1384-8 Available through Sigma-Aldrich
phalloidin AlexaFluor488 Invitrogen A12379 Phalloidin is a peptide to fluorescently label F-actin in fixed cells.
ProJet 3500 HD Max 3D Systems 3D printer
Sterile DI water Fisher Scientific 353046
Trypan Blue Gibco 15250061 Azo dye used to differentiate between live and dead cells based on its ability to pass through the damaged membrane of dead cells, but not the intact membrane of live cells.
VisiJet M3 Crystal 3D Systems A biocompatible polymer material for 3D printing.
Yokogawa CSU-X1 Confocal Scanner Unit Yokogawa

Referências

  1. . . All cancers Source: Globocan. , (2018).
  2. Prasad, V., Mailankody, S. Research and Development Spending to Bring a Single Cancer Drug to Market and Revenues After Approval. JAMA Internal Medicine. 177, 1569-1575 (2017).
  3. Raghavan, S., et al. Personalized Medicine Based Approach to Model Patterns of Chemoresistance and Tumor Recurrence Using Ovarian Cancer Stem Cell Spheroids. Clinical Cancer Research. 23 (22), 6934-6945 (2017).
  4. Jordan, C. T., Guzman, M. L., Noble, M. Cancer Stem Cells. New England Journal of Medicine. 355, 1253-1261 (2006).
  5. Ishiguro, T., et al. Establishment and Characterization of an In Vitro Model of Ovarian Cancer Stem-like Cells with an Enhanced Proliferative Capacity. Pesquisa do Câncer. 76, 150-160 (2016).
  6. Páez, D., et al. Cancer Dormancy: A Model of Early Dissemination and Late Cancer Recurrence. Clinical Cancer Research. 18, 645-653 (2012).
  7. Ahmed, N., Stenvers, K. L. Getting to Know Ovarian Cancer Ascites: Opportunities for Targeted Therapy-Based Translational Research. Frontiers in Oncology. 3, (2013).
  8. Pradhan, S., Clary, J. M., Seliktar, D., Lipke, E. A. A three-dimensional spheroidal cancer model based on PEG-fibrinogen hydrogel microspheres. Biomaterials. 115, 141-154 (2017).
  9. Varna, M., Bertheau, P., Legrès, L. Tumor Microenvironment in Human Tumor Xenografted Mouse Models. Journal of Analytical Oncology. 3, 159-166 (2014).
  10. Huang, S. B., et al. An integrated microfluidic cell culture system for high-throughput perfusion three-dimensional cell culture-based assays: Effect of cell culture model on the results of chemosensitivity assays. Lab on a Chip. 13, 1133-1143 (2013).
  11. Zang, R., Li, D., Tang, I. C., Wang, J., Yang, S. T. Cell-Based Assays in High-Throughput Screening for Drug Discovery. International Journal of Biotechnology for Wellness Industries. , (2012).
  12. Murphy, B., et al. Evaluation of alternative in vivo drug screening methodology: a single mouse analysis. Pesquisa do Câncer. 76, 5798-5809 (2016).
  13. Hidalgo, M., et al. Patient-derived Xenograft models: An emerging platform for translational cancer research. Cancer Discovery. 4, 998-1013 (2014).
  14. Damiati, S., Kompella, U. B., Damiati, S. A., Kodzius, R. Microfluidic devices for drug delivery systems and drug screening. Genes. 9, (2018).
  15. Caliari, S. R., Burdick, J. A. A Practical Guide to Hydrogels for Cell Culture. Nature Methods. 14, 69-81 (2016).
  16. Mehta, G., Hsiao, A. Y., Ingram, M., Luker, G. D., Takayama, S. Opportunities and challenges for use of tumor spheroids as models to test drug delivery and efficacy. Journal of Control Release. , (2012).
  17. Mehta, P., Novak, C., Raghavan, S., Ward, M., Mehta, G., Papaccio, G., Desiderio, V. Self-Renewal and CSCs In Vitro Enrichment: Growth as Floating Spheres. Cancer Stem Cells: Methods and Protocols. , 61-75 (2018).
  18. Raghavan, S., et al. Formation of stable small cell number three-dimensional ovarian cancer spheroids using hanging drop arrays for preclinical drug sensitivity assays. Gynecologic Oncology. 138, 181-189 (2015).
  19. Raghavan, S., et al. Comparative analysis of tumor spheroid generation techniques for differential in vitro drug toxicity. Oncotarget. 7, 16948-16961 (2016).
  20. Kim, S., et al. Evaluating Tumor Evolution via Genomic Profiling of Individual Tumor Spheroids in a Malignant Ascites. Scientific Reports. 8, 1-11 (2018).
  21. Silva, I. A., et al. Aldehyde dehydrogenase in combination with CD133 defines angiogenic ovarian cancer stem cells that portend poor patient survival. Pesquisa do Câncer. 71, 3991-4001 (2011).
  22. Pulaski, H. L., et al. Identifying alemtuzumab as an anti-myeloid cell antiangiogenic therapy for the treatment of ovarian cancer. Journal of Translational Medicine. 7, 49 (2009).
  23. Jager, L. D., et al. Effect of enzymatic and mechanical methods of dissociation on neural progenitor cells derived from induced pluripotent stem cells. Advances in Medical Sciences. 61, 78-84 (2016).
  24. Ivanov, D. P., Grabowska, A. M. Spheroid arrays for high-throughput single-cell analysis of spatial patterns and biomarker expression in 3D. Scientific Reports. 7, 41160 (2017).

Play Video

Citar este artigo
Bregenzer, M. E., Davis, C., Horst, E. N., Mehta, P., Novak, C. M., Raghavan, S., Snyder, C. S., Mehta, G. Physiologic Patient Derived 3D Spheroids for Anti-neoplastic Drug Screening to Target Cancer Stem Cells. J. Vis. Exp. (149), e59696, doi:10.3791/59696 (2019).

View Video