Summary

संचरण इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी का उपयोग करके कंकाल मांसपेशी तंतुओं में उपकोशिकीय ग्लाइकोजन वितरण का परिमाणीकरण

Published: February 07, 2022
doi:

Summary

एक संशोधित पोस्ट-फिक्सेशन प्रक्रिया ऊतक में ग्लाइकोजन कणों के विपरीत को बढ़ाती है। यह पेपर एक चरण-दर-चरण प्रोटोकॉल प्रदान करता है जिसमें बताया गया है कि ऊतक को कैसे संभालना है, इमेजिंग का संचालन करना है, और कंकाल की मांसपेशियों में फाइबर प्रकार-विशिष्ट उपकोशिकीय ग्लाइकोजन वितरण पर निष्पक्ष और मात्रात्मक डेटा प्राप्त करने के लिए स्टीरियोलॉजिकल विधियों का उपयोग करना है।

Abstract

संचरण इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी के उपयोग के साथ, व्यक्तिगत मांसपेशी फाइबर युक्त निश्चित नमूनों की उच्च-रिज़ॉल्यूशन छवियों को प्राप्त किया जा सकता है। यह अल्ट्रास्ट्रक्चरल पहलुओं जैसे कि वॉल्यूम अंशों, सतह क्षेत्र से वॉल्यूम अनुपात, मॉर्फोमेट्री और विभिन्न उपकोशिकीय संरचनाओं के भौतिक संपर्क स्थलों के परिमाणीकरण को सक्षम बनाता है। 1970 के दशक में, कोशिकाओं में ग्लाइकोजन के बढ़े हुए दाग के लिए एक प्रोटोकॉल विकसित किया गया था और ट्रांसमिशन इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी का उपयोग करके ग्लाइकोजन और ग्लाइकोजन कण आकार के उपकोशिकीय स्थानीयकरण पर अध्ययन की एक स्ट्रिंग के लिए मार्ग प्रशस्त किया गया था। जबकि अधिकांश विश्लेषण ग्लाइकोजन की व्याख्या करते हैं जैसे कि यह मांसपेशियों के तंतुओं के भीतर सजातीय रूप से वितरित किया जाता है, केवल एक ही मूल्य (उदाहरण के लिए, एक औसत एकाग्रता) प्रदान करता है, संचरण इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी से पता चला है कि ग्लाइकोजन को अलग-अलग उपकोशिकीय डिब्बों में स्थित असतत ग्लाइकोजन कणों के रूप में संग्रहीत किया जाता है। यहां, ऊतक संग्रह से चरण-दर-चरण प्रोटोकॉल से व्यक्तिगत कंकाल मांसपेशी तंतुओं के अलग-अलग उपकोशिकीय डिब्बों में ग्लाइकोजन की मात्रा अंश और कण व्यास के मात्रात्मक निर्धारण का वर्णन किया गया है। 1) ऊतक नमूनों को इकट्ठा करने और दागने के तरीके पर विचार, 2) छवि विश्लेषण और डेटा हैंडलिंग करते हैं, 3) अनुमानों की सटीकता का मूल्यांकन करते हैं, 4) मांसपेशी फाइबर प्रकारों के बीच भेदभाव करते हैं, और 5) पद्धतिगत नुकसान और सीमाएं शामिल हैं।

Introduction

ग्लाइकोजन कण ग्लूकोज और विभिन्न संबद्ध प्रोटीन 1 के शाखित पॉलिमर से बने होते हैं और उच्च चयापचय मांगों के दौरान एक महत्वपूर्ण ईंधन का गठन करते हैं2। हालांकि व्यापक रूप से मान्यता प्राप्त नहीं है, ग्लाइकोजन कण भी एक स्थानीय ईंधन का गठन करते हैं, जहां कुछ उपकोशिकीय प्रक्रियाएं प्लाज्मा ग्लूकोज और फैटी एसिड के रूप में अन्य और अधिक लंबे समय तक चलने वाले ईंधन की उपलब्धता के बावजूद ग्लाइकोजन का उपयोग करती हैं3,4

एक उपकोशिकीय विशिष्ट स्थानीयकृत ईंधन के रूप में ग्लाइकोजन के भंडारण के महत्व पर कई समीक्षाओं में चर्चा की गई है5,6 मुख्य रूप से संचरण इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (टीईएम) 7,8 द्वारा ग्लाइकोजन के उपकोशिकीय वितरण के कुछ शुरुआती दस्तावेजों पर आधारित है। पहले अध्ययनों ने ग्लाइकोजन के विपरीत को हिस्टोकेमिकल स्टेनिंग तकनीकों से नकारात्मक और सकारात्मक धुंधला 9,10 तक बढ़ाने के लिए विभिन्न प्रोटोकॉल का उपयोग किया। एक महत्वपूर्ण methodological विकास पोटेशियम फेरोसायनाइड-कम osmium11,12,13,14 के साथ परिष्कृत पोस्ट-फिक्सेशन प्रोटोकॉल था, जिसने ग्लाइकोजन कणों के विपरीत में काफी सुधार किया। इस परिष्कृत प्रोटोकॉल का उपयोग व्यायाम-प्रेरित ग्लाइकोजन कमी 15 पर कुछ अग्रणी कार्यों में नहीं किया गया था, लेकिन ग्राहम और सहकर्मियों द्वारा फिर से पेश किया गया था16,17

2-आयामी छवियों के आधार पर, ग्लाइकोजन के उपकोशिकीय वितरण को अक्सर तीन पूलों में स्थित ग्लाइकोजन कणों के रूप में वर्णित किया जाता है: सबसारकोलेमल (सतह की झिल्ली के ठीक नीचे), इंटरमायोफाइब्रिलर (मायोफाइब्रिल के बीच), या इंट्रामायोफाइब्रिलर (मायोफिब्रिल के भीतर)। हालांकि, ग्लाइकोजन कणों को भी संबद्ध के रूप में वर्णित किया जा सकता है, उदाहरण के लिए, सार्कोप्लाज्मिक रेटिकुलम 7 या न्यूक्ल्यूक्लियम 18। उपकोशिकीय वितरण के अलावा, टीईएम-अनुमानित ग्लाइकोजन सामग्री का लाभ यह भी है कि एकल फाइबर स्तर पर परिमाणीकरण आयोजित किया जा सकता है। यह फाइबर-टू-फाइबर परिवर्तनशीलता की जांच की अनुमति देता है और माइटोकॉन्ड्रिया और लिपिड बूंदों के रूप में फाइबर प्रकार और सेलुलर घटकों के साथ correlative विश्लेषण करता है।

यहां, कंकाल की मांसपेशी तंतुओं में ग्लाइकोजन के तीन सामान्य उपकोशिकीय पूलों (सबसारकोलेमल, इंटरमायोफिब्रिलर, और इंट्रामायोफाइब्रिलर) की टीईएम-अनुमानित फाइबर प्रकार-विशिष्ट वॉल्यूमेट्रिक सामग्री के लिए प्रोटोकॉल का वर्णन किया गया है। इस विधि को मनुष्यों से कंकाल की मांसपेशियों पर लागू किया गया है19, चूहों 20, और mice21; साथ ही पक्षियों और मछलियों 22; और चूहों से कार्डियोमायोसाइट्स23.

Protocol

मानव बायोप्सी कंकाल की मांसपेशियों के नमूनों का उपयोग करके वर्तमान प्रोटोकॉल को दक्षिणी डेनमार्क के लिए स्वास्थ्य अनुसंधान नैतिकता पर क्षेत्रीय समितियों (एस -20170198) द्वारा अनुमोदित किया गया था। मांसप?…

Representative Results

इस प्रोटोकॉल का उपयोग करते हुए, ग्लाइकोजन कण काले और अलग दिखाई देते हैं (आंकड़े 1 और चित्र2)। ग्लाइकोजन के सामान्य मूल्यों को चित्र 3 में दर्शाया गया है। ये डेटा 41 स्वस्थ ?…

Discussion

विधि का महत्वपूर्ण कदम पोस्ट-फिक्सेशन के दौरान पोटेशियम फेरोसायनाइड द्वारा कम ऑस्मियम का उपयोग है। ग्लाइकोजन का पता लगाने के लिए इस संशोधित फिक्सेटिव की चयनात्मकता को रसायन विज्ञान द्वारा पूरी तरह ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को स्वीडिश ओलंपिक समिति द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

1,2-Propylene oxide Merck 75-56-9
Embedding 812 resin medium kit Taab T031
Glutaraldehyde solution 25% Merck 1.04239.0250
ITEM Olympus Imaging software
Leica EM AC20 Leica Automatic contrasting system
OSIS Veleta digital camera Olympus
Osmium tetroxide 4% solution Polysciences 0972A
Philips CM 100 Transmission EM Philips
Potassium hexacyanoferrate (II) trihydrate Sigma-Aldrich 455989-245G
Sodium cacodylatbuffer 0,2 M ph 7.4 Ampliqon.com AMPQ40989.0500
Ultra-microtome Leica UC7 Leica
Ultrostain lead citrate 3%, stabilised solution Leica 16707235
Uranyl acetate dihydrate Polysciences 6159-44-0

Referências

  1. Prats, C., Graham, T. E., Shearer, J. The dynamic life of the glycogen granule. Journal of Biological Chemistry. 293 (19), 7089-7098 (2018).
  2. Gollnick, P. D., Piehl, K., Saltin, B. Selective glycogen depletion pattern in human muscle fibres after exercise of varying intensity and at varying pedalling rates. Journal of Physiology. 241 (1), 45-57 (1974).
  3. James, J. H., et al. Stimulation of both aerobic glycolysis and Na+-K+-ATPase activity in skeletal muscle by epinephrine or amylin. American Journal of Physiology Endocrinology Metabolism. 277 (1), 176-186 (1999).
  4. Jensen, R., Nielsen, J., Ørtenblad, N. Inhibition of glycogenolysis prolongs action potential repriming period and impairs muscle function in rat skeletal muscle. Journal of Physiology. 598 (4), 789-803 (2020).
  5. Green, H. J. How important is endogenous muscle glycogen to fatigue in prolonged exercise. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 69 (2), 290-297 (1991).
  6. Fitts, R. H. Cellular mechanisms of muscle fatigue. Physiological Reviews. 74 (1), 49-94 (1994).
  7. Wanson, J. C., Drochmans, P. Role of the sarcoplasmic reticulum in glycogen metabolism. Journal of Cellular Biology. 54 (2), 206-224 (1972).
  8. Schmalbruch, H., Kamieniecka, Z. Fiber types in the human brachial biceps muscle. Experimental Neurology. 44 (2), 313-328 (1974).
  9. Drochmans, P. Morphology of glycogen. Electron microscopic study of the negative stains of particulate glycogen. Journal of Ultrastructure Research. 6, 141-163 (1962).
  10. Thiery, J. -. P. Demonstration of polysaccharides on thin sections by electron microscopy. Journal of Microscopy. 6, 987-1018 (1967).
  11. De Bruijn, W. C. Glycogen, its chemistry and morphologic appearance in the electron microscope. I. A modified OsO4 fixative which selectively contrasts glycogen. Journal of Ultrastructural Research. 42 (1), 29-50 (1973).
  12. Robinson, J. M., Karnovsky, M. L., Karnovsky, M. J. Glycogen accumulation in polymorphonuclear leukocytes, and other intracellular alterations that occur during inflammation. The Journal of Cell Biology. 95 (3), 933-942 (1982).
  13. Rybicka, K. K. Glycosomes – the organelles of glycogen metabolism. Tissue and Cell. 28 (3), 253-265 (1996).
  14. Gadisseux, J. F., Evrard, P. Glial-neuronal relationship in the developing central nervous system. A histochemical-electron microscope study of radial glial cell particulate glycogen in normal and reeler mice and the human fetus. Developmental Neuroscience. 7 (1), 12-32 (1985).
  15. Fridén, J., Seger, J., Ekblom, B. Implementation of periodic acid-thiosemicarbazide-silver proteinate staining for ultrastructural assessment of muscle glycogen utilization during exercise. Cell Tissue Research. 242 (1), 229-232 (1985).
  16. Marchand, I., et al. Quantification of subcellular glycogen in resting human muscle: granule size, number, and location. Journal of Applied Physiology. 93 (5), 1598-1607 (2002).
  17. Marchand, I., et al. Quantitative assessment of human muscle glycogen granules size and number in subcellular locations during recovery from prolonged exercise. Journal of Physiology. 580, 617-628 (2007).
  18. Sun, R. C., et al. Nuclear Glycogenolysis Modulates Histone Acetylation in Human Non-Small Cell Lung Cancers. Cell Metabolism. 30 (5), 903-916 (2019).
  19. Jensen, R., et al. Heterogeneity in subcellular muscle glycogen utilisation during exercise impacts endurance capacity in men. Journal of Physiology. 598 (19), 4271-4292 (2020).
  20. Nielsen, J., Schrøder, H. D., Rix, C. G., Ørtenblad, N. Distinct effects of subcellular glycogen localization on tetanic relaxation time and endurance in mechanically skinned rat skeletal muscle fibres. Journal of Physiology. 587 (14), 3679-3690 (2009).
  21. Nielsen, J., Cheng, A. J., Ørtenblad, N., Westerblad, H. Subcellular distribution of glycogen and decreased tetanic Ca2+ in fatigued single intact mouse muscle fibres. Journal of Physiology. 592 (9), 2003-2012 (2014).
  22. Mead, A. F., et al. Fundamental constraints in synchronous muscle limit superfast motor control in vertebrates. eLife. 6, 29425 (2017).
  23. Nielsen, J., Johnsen, J., Pryds, K., Ørtenblad, N., Bøtker, H. E. Myocardial subcellular glycogen distribution and sarcoplasmic reticulum Ca2+ handling: effects of ischaemia, reperfusion and ischaemic preconditioning. Journal of Muscle Research and Cellular Motility. 42 (1), 17-31 (2021).
  24. Nielsen, J., Holmberg, H. C., Schrøder, H. D., Saltin, B., Ørtenblad, N. Human skeletal muscle glycogen utilization in exhaustive exercise: role of subcellular localization and fibre type. Journal of Physiology. 589 (11), 2871-2885 (2011).
  25. Weibel, E. R. . Stereological Methods. Vol. 2: Theoretical Foundations. , (1980).
  26. Gundersen, H. J., et al. Some new, simple and efficient stereological methods and their use in pathological research and diagnosis. APMIS. 96 (5), 379-394 (1988).
  27. Saltin, B., Gollnick, P. D. Skeletal muscle adaptability: significance for metabolism and performance. Handbook of Physiology. Skeletal Muscle. 10, 555-632 (1983).
  28. Howard, C. V., Reed, M. G. . Unbiased Stereology. Three-dimensional Measurement in Microscopy. , (2005).
  29. Nielsen, J., et al. Subcellular localization-dependent decrements in skeletal muscle glycogen and mitochondria content following short-term disuse in young and old men. American Journal of Physiology Endocrinology Metabolism. 299 (6), 1053-1060 (2010).
  30. Hokken, R., et al. Subcellular localization- and fibre type-dependent utilization of muscle glycogen during heavy resistance exercise in elite power and Olympic weightlifters. Acta Physiologica (Oxford). 231 (2), 13561 (2021).
  31. Nielsen, J., Farup, J., Rahbek, S. K., de Paoli, F. V., Vissing, K. Enhanced glycogen storage of a subcellular hot spot in human skeletal muscle during early recovery from eccentric contractions. PLoS One. 10 (5), 0127808 (2015).
  32. Sjöström, M., et al. Morphometric analyses of human muscle fiber types. Muscle Nerve. 5 (7), 538-553 (1982).
  33. Gejl, K. D., et al. Local depletion of glycogen with supramaximal exercise in human skeletal muscle fibres. Journal of Physiology. 595 (9), 2809-2821 (2017).
  34. Stanley, W. C., Recchia, F. A., Lopaschuk, G. D. Myocardial substrate metabolism in the normal and failing heart. Physiological Reviews. 85 (3), 1093-1129 (2005).

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Jensen, R., Ørtenblad, N., di Benedetto, C., Qvortrup, K., Nielsen, J. Quantification of Subcellular Glycogen Distribution in Skeletal Muscle Fibers using Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (180), e63347, doi:10.3791/63347 (2022).

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