Summary

ניתוח ציטומטריית זרימה של תאי גזע ותאי אב המטופויטיים של מח עצם מורין ותאי נישה סטרומליים

Published: September 28, 2022
doi:

Summary

כאן, אנו מתארים פרוטוקול פשוט לבידוד והכתמה של תאי מח עצם מורין לפנוטיפ תאי גזע המופויטיים ותאי אב יחד עם תאי גזע אנדותל ומזנכימליים תומכים. כמו כן נכללת שיטה להעשרת תאים הממוקמים באזורי אנדוסטל ומח עצם מרכזי.

Abstract

מח העצם (BM) הוא הרקמה הרכה המצויה בתוך העצמות שבהן מתרחשת בעיקר המטופויזה, התהליך שבו נוצרים תאי דם חדשים. ככזה, הוא מכיל תאי גזע ותאי אב המטופויטיים (HSPCs), כמו גם תאי סטרומה תומכים התורמים לתחזוקה ולוויסות של HSPCs. הפרעות BM המטולוגיות ואחרות משבשות את ההמטופוייזה על ידי השפעה ישירה על תאים המטופויטיים ו / או באמצעות שינוי של נישת BM. כאן, אנו מתארים שיטה לחקר hematopoiesis בבריאות וממאירות באמצעות ניתוח פנוטיפי של מורין BM HSPCs ואוכלוסיות נישה סטרומה על ידי ציטומטריית זרימה. השיטה שלנו מפרטת את השלבים הנדרשים להעשרת תאי BM בשברים אנדוסטליים ובשברי BM מרכזיים, כמו גם את אסטרטגיות הגאטינג המתאימות לזיהוי שני סוגי תאי הנישה העיקריים המעורבים בוויסות HSPC, תאי אנדותל ותאי גזע מזנכימליים. הניתוח הפנוטיפי המוצע כאן עשוי להיות משולב עם מוטציות עכבר, מודלים של מחלות ומבדקים פונקציונליים כדי לאפיין את תא HSPC ואת הנישה שלו.

Introduction

ציטומטריית זרימה היא שיטה רבת ערך לאפיון ובידוד פרוספקטיבי של תאים חיסוניים והמטופויאטיים. הוא גם משמש יותר ויותר לניתוח אוכלוסיות סטרומה ואפיתל של רקמות שונות. לתא הגזע ההמטופויאטי (HSC) תכונות ייחודיות של התחדשות עצמית ורב-עוצמה. ביונקים בוגרים, HSCs מתגוררים בעיקר במח העצם (BM), שם הם מקבלים אותות שקט והישרדות מהמיקרו-סביבה שמסביב או מנישה1. HSCs מוגדרים באופן רשמי על פי בדיקות פונקציונליות2. אף על פי כן, מספר מאמרים פורצי דרך הראו את התועלת של ציטומטריית זרימה לזיהוי HSCs. באמצעות שימוש בסמנים מוגבלים בפני השטח של התא, ניתן להבחין בין אוכלוסיות המטופויטיות המועשרות מאוד ב-HSCs3. ציטומטריית זרימה היא, אם כן, שיטה מרכזית בשדה תאי הגזע. נעשה בו שימוש נרחב כדי להעריך את ההשפעה של סוגי תאי נישה משוערים וגורמי נישה על HSC. על ידי שילוב של ציטומטריית זרימה עם הדמיה ובדיקות פונקציונליות, הוכח כי HSCs נתמכים באופן קריטי על ידי תאי גזע מזנכימליים פריווסקולריים (MSCs) ותאי אנדותל (ECs). BM MSCs הם קבוצה הטרוגנית ויש להם תרומות ציטוקינים שונות4, אבל זה מבוסס היטב כי קולטן לפטין (LepR)+ MSCs הם תאי נישה מרכזיים1. BM ECs הם גם הטרוגניים מאוד ויכולים להיות חלק מסינוסואידים, עורקים וכלי דם מסוג H / מעבר5. מחקרים שונים הראו את התרומה הניואנסית של ECs שונים אלה. לדוגמה, ECs סינוסואידים אנדוסטליים קרובים יותר מרחבית ל- HSCs6 שקטים, בעוד HSCs לא נודדים עם רמות נמוכות יותר של מיני חמצן תגובתי ממוקמים ליד ECsעורקיים 7. גם המיקום האנדוסטאלי לעומת המרכזי של הנישות חשוב מאוד. כלי דם מסוג H אנדוסטלים קשורים לתאי סטרומה פריווסקולריים שאבדו עם ההזדקנות, מה שמוביל לאובדן HSCs8. בלוקמיה מיאלואידית חריפה, ECs מרכזיים מורחבים, בעוד כלי אנדוסטל ו- HSCs אנדוסטליים הולכים לאיבוד9.

רוב המחקרים בתחום התמקדו בהמטופויזה עצמה ובוויסות החיצוני של התא של HSCs. עם זאת, יותר ויותר הוכר כי יש צורך לאפיין טוב יותר את הנישות המווסתות אבות אחרים, כלומר אבות רב-פוטנטיים (MPPs), במיוחד בהתחשב בכך שהם הנהגים העיקריים של hematopoiesis במצב יציב10. בניגוד למבנה היררכי קבוע, מחקרים אחרונים הראו כי המטופויזיס הוא רצף שבו HSCs מתמיינים ל-MPPs מוטים בשלב מוקדם11. MPPs נקראו על שם תוכניות סיווג שונות12, אך נייר קונצנזוס שנערך לאחרונה על ידי האגודה הבינלאומית להמטולוגיה ניסויית (ISEH) הציע MPPs להיות מופלים כמו MPPs מוקדם ועל פי הלימפה שלהם (MPP-Ly), megakaryocytic ו erythroid (MPP-Mk/E), ומיאלואיד (MPP-G/M)הטיה 13. השימוש בציטומטריית זרימה יהיה קריטי בהמשך המחקר על חשיבותן של נישות BM בוויסות אוכלוסיות אלה. שיטות ציטומטריית זרימה נוכחית משתמשות באסטרטגיות gating משתנות כדי להתמיין HSPCs ולזהות תאי סטרומה, כלומר ECs, באמצעות סמנים לא עקביים. מטרת השיטה הנוכחית היא להציג תהליך עבודה פשוט וניתן לשחזור של צביעת BM כדי לזהות תת-אוכלוסיות HSPC, קבוצות הטרוגניות של ECs ו- LepR+ MSCs. אנו מאמינים כי טכניקה זו, למרות שניתן להשוות אותה לשיטות שדווחו בעבר (ראה, למשל, הפניה 14), מספקת פרוטוקול מעודכן וקל ליישום לניתוח פנוטיפי של תאים המטופויטיים בשני אזורי מח המוח הפונקציונליים, אנדוסטל ו- BM 8,15 מרכזי, כמו גם תאי נישה סטרומה BM.

Protocol

בעלי החיים המשמשים בפרוטוקול זה שוכנו במתקן בעלי החיים i3S בתנאים ספציפיים נטולי פתוגנים במחזור אור-חושך של 12 שעות ובסביבה מבוקרת טמפרטורה. גישה חופשית לצ’או מכרסמים סטנדרטי ומים סופקה. כל בעלי החיים קיבלו טיפול הומני על פי הקריטריונים שהותוו על ידי הפדרציה האירופית של אגודות מדעי חיות מעב…

Representative Results

חלקות מייצגות של ניתוח ציטומטריית זרימה של HSCs ו-MPPs בעכבר C57Bl/6 בוגר צעיר ובריא מוצגות באיור 1. אסטרטגיית הגאטינג עוקבת אחר המינוח ההרמוני האחרון שהוצע על ידי ISEH13. כאשר מנתחים את ההשפעה של הפרעה, כגון זיהום או סרטן, חשוב להשתמש בעכבר בקרה כהפניה לשערים רגילים. פקד?…

Discussion

בעוד שהפרוטוקול המתואר הוא פשוט וקל לביצוע, יש להקדיש תשומת לב מיוחדת לשלבים ספציפיים. לדוגמה, בעת קבלת BM סמוק (שלב 5.2), אין לחרוג מהנפח או מספר הפעמים המצוינות כדי להעביר PBS 2% FBS דרך החלק הפנימי של החלק המרכזי של העצם, מכיוון שהדבר עלול לגרום לזיהום משמעותי של הדגימה הסמוקה על ידי אוכלוסיות ת?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

LM נתמך על ידי מענק מקרן הזיכרון ליידי טאטא. JR נתמך על ידי מלגת דוקטורט מ- Fundação para a Ciência e Tecnologia (FCT; ממשק משתמש של מלגת FCT/BD/150833/2021). ML נתמכה על ידי מלגת דוקטורט של FCT (מלגת FCT 2021.04773.BD). DD נתמך על ידי מענקים מהאגודה האמריקאית להמטולוגיה, קרן Pablove, FCT (EXPL/MED-ONC/0522/2021) והאגודה הפורטוגזית להמטולוגיה. אנו מודים לתמיכה של ד”ר קטרינה מיירלס ואמיליה קרדוסו ממתקן TRACY ב-i3s.

Materials

Alexa Fluor 647 anti-mouse CD54/ICAM-1 antibody BioLegend 116114
APC Streptavidin BioLegend 405207
APC/Cyanine7 anti-mouse CD117 (c-kit) antibody BioLegend 105826
APC/Cyanine7 anti-mouse CD45 antibody BioLegend 103116
APC/Cyanine7 anti-mouse TER-119/erythroid cells antibody BioLegend 116223
Biotin anti-mouse CD3ε antibody BioLegend 100304
Biotin anti-mouse CD4 antibody BioLegend 100404
Biotin anti-mouse CD8a antibody BioLegend 100704
Biotin anti-mouse Ly-6G/Ly-6C (Gr-1) antibody BioLegend 108404
Biotin anti-mouse TER-119/erythroid cells antibody BioLegend 116204
Biotin anti-mouse/human CD11b antibody BioLegend 101204
Biotin anti-mouse/human CD45R/B220 antibody BioLegend 103204
Brilliant Violet 510 anti-mouse CD150 (SLAM) antibody BioLegend 115929
Calibrite 2 Color Beads BD Biosciences 349502
Collagenase IV Merck Life Science C1889
Dispase II Merck Life Science D4693
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated, E.U.-approved, South America Origin ThermoFisher Scientific 10500064
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) ThermoFisher Scientific 14175095
Mouse Leptin R Biotinylated Antibody R&D systems BAF497
NucBlue Fixed Cell Reagent (DAPI) ThermoFisher Scientific R37606 DAPI reagent
PE anti-mouse endomucin antibody ThermoFisher Scientific 12-5851-82
PE anti-mouse Flk2 (CD135) ThermoFisher Scientific 12-1351-82
PE/Cyanine7 anti-mouse CD31 antibody BioLegend 102524
PE/Cyanine7 anti-mouse CD48 antibody BioLegend 103424
PerCP anti-mouse Ly-6A/E (Sca-1) antibody BioLegend 108122
Phosphate-buffered saline (PBS) tablets Merck Life Science P4417
Purified anti-mouse CD16/32 antibody BioLegend 101302
RBC lysis buffer 10x BioLegend 420302
Zombie Violet Fixable Viability Dye BioLegend 423114 fluorescent dye

Referências

  1. Comazzetto, S., Shen, B., Morrison, S. J. Niches that regulate stem cells and hematopoiesis in adult bone marrow. Developmental Cell. 56 (13), 1848-1860 (2021).
  2. Purton, L. E., Scadden, D. T. Limiting factors in murine hematopoietic stem cell assays. Cell Stem Cell. 1 (3), 263-270 (2007).
  3. Kiel, M. J., et al. SLAM family receptors distinguish hematopoietic stem and progenitor cells and reveal endothelial niches for stem cells. Cell. 121 (7), 1109-1121 (2005).
  4. Asada, N., et al. Differential cytokine contributions of perivascular haematopoietic stem cell niches. Nature Cell Biology. 19 (3), 214-223 (2017).
  5. Mosteo, L., et al. The dynamic interface between the bone marrow vascular niche and hematopoietic stem cells in myeloid malignancy. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 635189 (2021).
  6. Christodoulou, C., et al. Live-animal imaging of native haematopoietic stem and progenitor cells. Nature. 578 (7794), 278-283 (2020).
  7. Itkin, T., et al. Distinct bone marrow blood vessels differentially regulate haematopoiesis. Nature. 532 (7599), 323-328 (2016).
  8. Kusumbe, A. P., et al. Age-dependent modulation of vascular niches for haematopoietic stem cells. Nature. 532 (7599), 380-384 (2016).
  9. Duarte, D., et al. Inhibition of endosteal vascular niche remodeling rescues hematopoietic stem cell loss in AML. Cell Stem Cell. 22 (1), 64-77 (2018).
  10. Busch, K., et al. Fundamental properties of unperturbed haematopoiesis from stem cells in vivo. Nature. 518 (7540), 542-546 (2015).
  11. Laurenti, E., Gottgens, B. From haematopoietic stem cells to complex differentiation landscapes. Nature. 553 (7689), 418-426 (2018).
  12. Pietras, E. M., et al. Functionally distinct subsets of lineage-biased multipotent progenitors control blood production in normal and regenerative conditions. Cell Stem Cell. 17 (1), 35-46 (2015).
  13. Challen, G. A., Pietras, E. M., Wallscheid, N. C., Signer, R. A. J. Simplified murine multipotent progenitor isolation scheme: Establishing a consensus approach for multipotent progenitor identification. Experimental Hematology. 104, 55-63 (2021).
  14. Mayle, A., Luo, M., Jeong, M., Goodell, M. A. Flow cytometry analysis of murine hematopoietic stem cells. Cytometry A. 83 (1), 27-37 (2013).
  15. Kusumbe, A. P., Ramasamy, S. K., Adams, R. H. Coupling of angiogenesis and osteogenesis by a specific vessel subtype in bone. Nature. 507 (7492), 323-328 (2014).
  16. Hawkins, E. D., et al. Measuring lymphocyte proliferation, survival and differentiation using CFSE time-series data. Nature Protocols. 2 (9), 2057-2067 (2007).
  17. Akinduro, O., et al. Proliferation dynamics of acute myeloid leukaemia and haematopoietic progenitors competing for bone marrow space. Nature Communications. 9 (1), 519 (2018).
  18. Beerman, I., et al. Functionally distinct hematopoietic stem cells modulate hematopoietic lineage potential during aging by a mechanism of clonal expansion. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (12), 5465-5470 (2010).
  19. Gomariz, A., et al. Quantitative spatial analysis of haematopoiesis-regulating stromal cells in the bone marrow microenvironment by 3D microscopy. Nature Communications. 9 (1), 2532 (2018).
  20. Xu, C., et al. Stem cell factor is selectively secreted by arterial endothelial cells in bone marrow. Nature Communications. 9 (1), 2449 (2018).
  21. Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation. Journal of Visualized Experiments. (110), e53936 (2016).
  22. Wang, Y., et al. Ephrin-B2 controls VEGF-induced angiogenesis and lymphangiogenesis. Nature. 465 (7297), 483-486 (2010).
  23. DeFalco, J., et al. Virus-assisted mapping of neural inputs to a feeding center in the hypothalamus. Science. 291 (5513), 2608-2613 (2001).
  24. Boyer, S. W., Schroeder, A. V., Smith-Berdan, S., Forsberg, E. C. All hematopoietic cells develop from hematopoietic stem cells through Flk2/Flt3-positive progenitor cells. Cell Stem Cell. 9 (1), 64-73 (2011).
  25. Siegemund, S., Shepherd, J., Xiao, C., Sauer, K. hCD2-iCre and Vav-iCre mediated gene recombination patterns in murine hematopoietic cells. PLoS One. 10 (4), 0124661 (2015).
check_url/pt/64248?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Mosteo, L., Reis, J., Rocha, L., Lopes, M., Duarte, D. Flow Cytometry Analysis of Murine Bone Marrow Hematopoietic Stem and Progenitor Cells and Stromal Niche Cells. J. Vis. Exp. (187), e64248, doi:10.3791/64248 (2022).

View Video