Summary
本研究中提出的协议说明了cAMP原位差动检测器通过两种方法测量cAMP的有效性。一种方法使用带有 HEK-293 细胞的 96 孔板读数分光光度计。另一种方法在荧光显微镜下展示单个HASM细胞。
Abstract
cAMP原 位 差异检测器（cADDis）是一种新型生物传感器，可以连续测量活细胞中的cAMP水平。该生物传感器由与Epac2的铰链区域相连的环状置换荧光蛋白制成。这创建了一个单一的荧光团生物传感器，在结合 cAMP 时显示荧光增加或减少。生物传感器有红色和绿色的向上版本，以及绿色的向下版本，以及针对亚细胞位置的几种红色和绿色版本。为了说明生物传感器的有效性，使用了绿色的向下版本，该版本在cAMP结合时荧光减少。演示了使用该传感器的两种方案：一种利用与高通量筛选兼容的 96 孔板读取分光光度计，另一种利用荧光显微镜上的单细胞成像。在酶标仪上，用 10 μM 毛喉素或 10 nM 异丙肾上腺素刺激在 96 孔板中培养的 HEK-293 细胞，其诱导绿色向下版本的荧光快速且大幅减少。该生物传感器用于测量在荧光显微镜下监测的单个人体气道平滑肌 （HASM） 细胞中的 cAMP 水平。当用毛喉素或异丙肾上腺素刺激时，绿色向下的生物传感器对细胞群表现出类似的反应。这种单细胞测定允许在 20 倍和 40 倍放大下可视化生物传感器的位置。因此，这种 cAMP 生物传感器具有灵敏和灵活性，可以实时测量永生化细胞和原代细胞中的 cAMP，以及单细胞或细胞群的 cAMP。这些特性使cADD成为研究活细胞中cAMP信号动力学的宝贵工具。
Introduction
腺苷 3′，5′-环磷酸 （cAMP） 在细胞通讯和各种生理过程的协调中起着核心作用。cAMP 充当第二信使，传递来自激素、神经递质或其他细胞外分子的外部信号，以启动细胞内事件的级联反应1。此外，cAMP 错综复杂地参与各种信号通路，包括与 G 蛋白偶联受体 （GPCR） 和腺苷酸环化酶相关的信号通路。了解 cAMP 在细胞信号转导中的作用对于揭示正常细胞功能背后的复杂机制和开发针对各种疾病的潜在疗法至关重要2.
过去，已经采用各种方法直接或间接地测量 cAMP。这些包括细胞 ATP 池的放射性标记，然后进行色谱柱纯化、HPLC、放射免疫测定和酶联免疫测定 1,2。这些传统检测方法受到限制，因为它们是终点测量，需要大量样本来构建时间依赖性响应。最近，荧光共振能量转移 （FRET） 传感器被开发出来，用于在活细胞中创建检测，产生实时、动态的数据，并允许传感器在不同的亚细胞位置进行靶向3。FRET利用两个荧光团，一个荧光供体和一个荧光受体，当靠近时，受体荧光团将被供体荧光输出激发。最常用的两种荧光基团是青色荧光蛋白 （CFP） 和黄色荧光蛋白 （YFP），因为它们具有相容的激发和发射特性。除CFP和YFP外，绿色荧光蛋白（GFP）和红色荧光蛋白（RFP）的利用也常用于FRET生物传感器。cAMP FRET生物传感器通过在Epac2 cAMP结合蛋白的两端具有供体和受体来操作。cAMP 结合改变了 Epac 的确认，并增加了供体和受体荧光基团之间的距离 3,4。这种构象变化是通过FRET的损失来检测的，即受体荧光团通过从供体荧光团液滴转移的能量激发3。虽然这是一个看似简单的过程，但用于 cAMP 研究的 FRET 生物传感器存在大量限制和问题5.其中之一是荧光蛋白的选择，例如GFP，它可以自然二聚化，从而降低灵敏度6。基于 FRET 的 cAMP 生物传感器已靶向特定微结构域7，但由于具有两个荧光基团的构建体尺寸大，可能存在局限性6。另一个重要问题是，由于荧光团的激发和发射之间的重叠，导致FRET信号的信噪比低，导致采样频率高，结果分析复杂化4,5。
最近，新型生物传感器（cAMP Difference Detector In Situ）cADDis 在研究 cAMP 信号传导的调节时解决了这些和其他限制8。一个重要的改进是对单一荧光基团的依赖性。这样可以获得快速高效的信号，具有更宽的动态范围和高信噪比。因此，可以有更高的准确性，因为要梳理的波长范围较小8.与FRET探针一样，该生物传感器已靶向亚细胞位置，从而可以研究脂质筏和非筏以及其他亚细胞结构域中的分隔理论和探索9。也许最重要的是单一荧光团生物传感器适用于高通量筛选，与基于 FRET 的生物传感器相比，它提高了灵敏度和可重复性。该生物传感器被封装到 BacMam 载体中，便于转导多种细胞类型并精确控制蛋白质表达。
通过 BacMam 载体进行表达控制在使用来自不同物种的 GPCR 直系同源物的测定中特别有用，以促进动物研究数据的解释。此外，控制受体表达对于测量不同程度的药物疗效（例如，反向激动剂和部分激动剂）至关重要，而低水平的受体表达有助于模拟动物组织中发现的低水平。BacMam 是一种杆状病毒载体，已被修饰以转导哺乳动物细胞，例如原代细胞培养物和 HEK-293 系10。显性可选标记物使 BacMam 比传统质粒感染具有更高的稳定性11。这种选择性启动子允许更有效的基因递送和表达。此外，添加曲古抑菌素 A（一种组蛋白脱乙酰酶抑制剂）可增强报告蛋白水平11。表达水平可以通过所用 BacMam 病毒的滴度来控制，并且应针对每种细胞类型进行优化。在这种生物传感器的情况下，红色或绿色荧光蛋白与N端和C端的Epac相连。当 cAMP 结合时，生物传感器的构象变化会移动与荧光蛋白相邻的氨基酸。这种位移使吸光度从阴离子态移动到400nm处的中性态，从而降低了荧光。
在单个细胞中有 90-120 个 GPCR 表达，对多种神经体液信号有反应12。因此，可以假设每个细胞至少有几十个GPCRs可以分别通过Gs或Gi偶联刺激或抑制cAMP。虽然在实时监测第二个信使（例如FRET）方面取得了进展，但需要更有效的方法。本文介绍了使用cADDis实时监测cAMP信号合成和降解的方法。可以使用荧光酶标仪进行高通量检测或使用荧光显微镜进行单细胞检测，实时监测荧光的变化。这些方法对于 通过 cAMP进行GPCR信号转导的广泛生物学问题非常有用。
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Protocol
材料表中列出了用于研究的所有试剂和设备的详细信息。
1.读板分光光度计高通量测定
- 在 96 孔板中用 cADDis BacMam 载体接种 HEK-293 细胞（第 1 天）
- 在病毒罩中分裂和感染细胞。
- 在37°C水浴中加热HEK培养基（表1）和0.25%胰蛋白酶-EDTA。
- 用 EtOH 浸泡的纸巾擦拭抽油烟机和材料，对它们进行消毒。
- 用血清移液管从烧瓶中取出并丢弃 HEK 培养基。
- 用血清移液管加入5mL Mg2+ 和Ca2+ 游离DPBS（37°C）。来回倾斜烧瓶，用 DPBS 清洗底部。用血清移液管取出并丢弃 DPBS。
- 通过加入 3 mL 加热的 0.25% 胰蛋白酶-EDTA 和血清移液管来胰蛋白酶化细胞。倾斜烧瓶，确保试剂完全覆盖烧瓶底部。盖上烧瓶盖，让试剂静置 3-5 分钟，让细胞从烧瓶中分离出来。
注意：该实验针对 75 cm2 烧瓶进行了优化;如果使用不同大小的培养器具，则可能需要对试剂进行体积调整。 - 吸取 5 mL 含有抗生素的新鲜培养基。排出并抽取烧瓶的体积，以清洗烧瓶的壁并物理分离细胞。
- 收集烧瓶的总体积（8mL），并在15mL管中以200× g 离心（25°C）5分钟。
- 离心后，用血清移液管除去上清液，注意不要干扰沉淀。
- 为了在不干扰沉淀的情况下洗涤细胞，将 500 μL 不含 Mg2+ 和 Ca2+ DPBS 的 DPBS 添加到 15 mL 试管的一侧。轻轻加入 DPBS 后，在不干扰沉淀的情况下，尽可能多地去除并丢弃缓冲液。再重复一次。
- 对细胞进行计数，并将细胞密度调整为 250,000 个细胞/mL 细胞。
- 根据黑色透明底部 96 孔板每孔所需的试剂量制备预混液。这被称为“组织板”。请参阅以下各卷：
注：1 孔示例（总体积 200 μL）：40 μL 生物传感器 BacMam 载体（2 x 1010 个 病毒基因储备液/mL）、2 μL 曲古抑菌素 A（储备液 100 μM;终浓度 1 μM）、158 μL 250,000 个细胞/mL 细胞密度。10 孔（总体积 2 mL）的示例：400 μL 生物传感器 BacMam 载体（2 x 1010 个 病毒基因储备液/mL）、20 μL 曲古抑菌素 A（100 μM 储备液）、1,580 μL 培养基，密度为 250,000 个细胞/mL 细胞密度。 - 每孔加入 200 μL 预混液。将细胞在37°C和5%CO2 的培养箱中孵育24小时，然后在板读数分光光度计上运行。
- 在病毒罩中分裂和感染细胞。
- 在酶标仪上运行
- 在工作台上，小心地除去每个孔中的所有培养基，并在37°C下用Mg2+ 和Ca2+ 替换180μL DPBS。
- 在显微镜上检查细胞以确认细胞健康状况。
- 将板包裹在铝箔中，并在37°C下孵育30分钟-1小时。
- 孵育时，准备以 1：10 稀释度（也称为 10 倍）读取所需的最终剂量。因此，制备100μM毛喉素和100nM异丙肾上腺素。
- 将 60 μL 每种药物以柱状方式加入透明的 96 孔板（称为“药物板”）中。
注：通过适当的药物稀释并优化读数，将药物添加到透明的 96 孔板中，称为“药物板”，在读数时使用 96-multi 移液器转移到“组织板”，允许药物同时添加到所有孔中并由荧光分光光度计快速读取。
- 荧光酶标仪设置
- 调整荧光酶标仪的设置。
- 读取模式： 荧光。读取类型： 动力学。波长读数： 494 nm 和 522 nm。
- 读取时间：输入基线荧光读数 3 分钟 ，给药后添加 7 分钟 。Interval“ 输入为 00：00：30 ，每次读取之间为 30 秒。
注意： 读取时间可以根据所需的时间进行优化和增加。
- 调整荧光酶标仪的设置。
- 数据采集
- 从培养箱中取出组织板，取下铝箔和板盖，然后将组织板放入酶标仪中。关闭读数器抽屉，让组织板静置并与读数仪的温度 （37 °C） 保持平衡。
- 将装有药物稀释液的透明 96 孔板（药物板）置于 96-multi 移液器下，并练习从孔中吸取 20 μL。确保在移液器吸头中吸入的药物体积均匀。
- 启动“基线”测量运行。
注意：40 RFU 或更高被认为是可行的数据。如果数据低于此值，则应停止并丢弃实验。 - 组织板将在基线运行结束时从读数器中弹出。迅速而小心地将 20 μL 从透明药物板添加到黑色组织板中。然后，快速开始“治疗”运行。加入药物后，组织板不应离开读数器超过 30 秒。
注意：如果药物添加得太快，细胞会从组织板上脱落，从而产生无法使用的实验。此外，细胞被光敏绿色荧光蛋白感染;因此，迅速而迅速地添加药物并开始第二次阅读对于避免错过反应的早期部分至关重要。 - 第二次读数完成后，确保将组织板从读数器中弹出并结束数据收集。
注意：在处理组织板之前，最佳做法是确认细胞仍附着在板上。在显微镜下观察细胞。如果细胞分离，则结果无效，应丢弃。需要重复该实验。 - 将结果数据导出为 Excel 文件。
- 从酶标仪中打开导出的Excel可读数据，将相关信息复制粘贴到Excel转换模板中。数据将从酶标仪设置转换为单孔，列读数位于复制数据的右侧。
注：孔随时间变化的荧光柱列列在RFU（标题为柱变换）中，并作为相对于初始读数时RFU读数的小数变化（t0 ，标题为Delta F）。在 Excel 模板中，Delta F 表设置为药物添加前的最后一个基线读数。这是第 6 个 数据收集点。 - 数据转换后，从Delta F复制数据，并将其粘贴到数据分析软件中，作为荧光随时间推移的衰减或相对衰减。
- 将 X 标题更改为“time （s）”，将 Y 标题更改为“ΔF/F0”，以获得相对十进制值。
2. 使用倒置荧光显微镜进行单细胞测定
- 在 35 mm 培养皿中使用 cADDis BacMam 载体接种 （HASM） 细胞（第 1 天）
- 在病毒罩中分裂和感染细胞。
- 温热的HASM培养基（表1），0.25%胰蛋白酶-EDTA在37°C水浴中。
- 对抽油烟机和材料进行消毒，并用 EtOH 浸泡的纸巾擦拭抽油烟机。
- 用血清移液管从烧瓶中取出并丢弃 HASM 培养基。
- 用新的血清移液管加入5mL Mg2+ 和Ca2 + 游离DPBS（37°C），并倾斜烧瓶以用DPBS洗涤底部。
- 通过用血清移液管加入 3 mL 加热的 0.25% 胰蛋白酶-EDTA 来胰蛋白酶化细胞。倾斜烧瓶，确保试剂完全覆盖烧瓶底部。让试剂静置 3-5 分钟，让细胞从烧瓶中分离出来。
- 吸取 5 mL 含有抗生素的新鲜培养基，然后排出移液管以从烧瓶底部除去细胞。
- 将烧瓶（8mL）的总体积收集在离心管中以200×g离心5分钟。
- 离心后，用血清移液管除去上清液，注意不要干扰沉淀。
- 在不干扰沉淀的情况下，将 500 μL 不含 Mg2+ 和 Ca2+ DPBS 的 DPBS 添加到离心管的一侧。取出并丢弃尽可能多的液体，然后再重复一次。
注意：该实验针对 75 cm2 烧瓶进行了优化;如果使用不同大小的培养器具，则可能需要对试剂进行体积调整。 - 对细胞进行计数并调整至 40,000 个细胞/mL 细胞密度。
- 根据 35 mm 培养皿中每孔所需的试剂体积制备预混液。请参阅以下各卷：
注：1 孔示例（总体积 500 μL）：20 μL 生物传感器 BacMam 载体（2 x 1010 个 病毒基因储备液/mL）、5 μL 曲古抑菌素 A（储备液 100 μM，终浓度 1 μM）、500 μL 40,000 个细胞/mL 细胞密度。4 孔（总体积 2 mL）的示例：80 μL 生物传感器 BacMam 载体（病毒基因储备液/mL）、20 μL 曲古抑菌素 A（储备液 100 μM，终浓度 1 μM）、2000 μL 培养基 40,000 个细胞/mL 细胞密度。 - 每孔加入 500 μL 预混液。将细胞在37°C和5%CO2 下孵育24小时，然后再继续实验。
注：细胞数量可能因细胞系而异。为避免分析中的像元重叠，请使用较少的像元数。
- 在病毒罩中分裂和感染细胞。
- 准备药理学药物（第 2 天）
- 小心地去除每个孔中的培养基，并在37°C下用Mg2+ 和Ca2+ 替换450μL DPBS。
- 将板包裹在铝箔中，并将35mm圆盘在37°C孵育30分钟-1小时。
- 在显微镜上检查细胞以确认细胞健康状况。
- 同时，准备药物，使读数高于所需最终浓度（10倍高）1个对数单位。因此，制备100μM毛喉素和100nM异丙肾上腺素。
- 对于对数剂量滴度，以 10 mM 制备药物并使用连续稀释以获得 100 μM 毛喉素和 100 nM 异丙肾上腺素。
- 数据采集
注意：以下设置适用于荧光倒置显微镜。每台显微镜随附的软件可能不同;此处介绍了当前协议中使用的常规设置。- 打开中央集线器，然后打开倒置荧光显微镜。
- 打开将用于捕获的软件，然后选择 延时捕获 选项。
- 将35mm培养皿样品架放在显微镜载物台上。
- 将物镜设置为 x20。
- 使用 自动对焦 并获得尽可能清晰的图片。如果很难找到单个细胞，请从 4 倍物镜开始，然后移至 20 倍物镜。如果显微镜缺少自动对焦功能，请手动对样品进行对焦。
注意：如果需要更重要的细胞形态细节，可以使用 40 倍的放大倍数。 - 调整以下设置以获得最佳数据采集： 自动亮度 （曝光）、 激发波长、 黑平衡 （以减少背景噪声）、 自动对焦。
- 在找到具有几个细胞质荧光细胞的视野区域后，使用延时捕获每 30 秒 20 分钟获取数据。
- 单击 “转到 ”开始阅读。
- 运行 3 分钟以收集基线。一旦捕获 3 分钟，轻轻地将 50 μL 药物加入适当的孔中。当加入药物时，培养皿上的最终浓度将是 10 μM 毛喉素和 10 nM 异丙肾上腺素。
注意：必须小心添加药物;请勿用移液器吸头触摸板，因为这可能会移动视野 view 所做的并使 sample 无法分析。 - 让实验再运行 17 分钟，每 30 秒捕获一次数据。
- 测试完成后，请确保数据已准备好进行分析。
注意：虽然目前的协议没有包含焦点漂移的控制，但在实验中包含一个可能是有益的。例如，在显微镜分析过程中，使用核染料可以帮助管理焦点漂移，特别是在长时间捕获活细胞图像时。cADDis 生物传感器通常广泛分布在细胞内，使宽焦平面成为最有效的捕获方式，并减少了控制焦距漂移的需要9。
- 分析数据
注意：每台显微镜随附的软件可能不同，因此此处介绍了应用于分析捕获图像的一般设置。- 打开实验期间捕获的图像文件。
- 使用 面 或 圆圈 工具选择每个像元的感兴趣区域以执行分析。分析应给出每个时间点每个单元格的亮度。
注意：最佳做法是选择单个细胞，而不是接触培养皿壁或其他细胞壁的细胞。这确保了最佳的数据收集。在每个条件下选择至少 5 个细胞进行分析，并至少重复实验 3 次。 - 分析数据后，在Excel表格中打开数据，并计算每张照片中每种条件的平均亮度，从图片开始，然后再添加药理学试剂或载体。在此示例中，在显微镜上拍摄的第 3 分钟标记或第 6 张照片，因为每张照片每 30 秒拍摄一次。
- 计算每个条件下每个平均值的 ΔF/F0 。
- 加载到统计分析软件中，并以 s 为单位绘制 ΔF/F0 与时间的关系图。
注： 图 1 提供了协议主要步骤的示意图。
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Representative Results
本研究在酶标仪和显微镜检测中验证了胞质生物传感器。一旦细胞表达生物传感器，它们就会用10μM毛喉素（腺苷酸环化酶的直接激活剂），10nM异丙肾上腺素（ß1AR和ß2AR的激动剂）或载体（图1）刺激。每 30 秒捕获一次荧光的后续变化，表明 cAMP 的产生。
数据被转换为荧光相对于初始荧光的变化 （ΔF/F0）。将单位点衰变模型应用于荧光数据，以量化不同条件下cAMP水平的时间变化（图2和图3）。这些衰减曲线的参数可用于量化对给定浓度药物的反应。使用衰减率 （k） 和平台期的乘积作为量化药物反应的单一值，当应用多种浓度的相同药物时，这些值用于创建浓度-反应曲线13。
在酶标仪上，用 10 μM 毛喉素刺激后，胞质传感器在几秒钟内显示荧光强度显着降低，并在数分钟内进展（从 200 秒时的基线 0Δ F/Fo 到 600 秒时的 -0.7 ΔF/Fo ）在 HEK-293 细胞中（图 2A）。鉴于绿色传感器的设计，荧光的减少表明 cAMP 的产生增加，表明毛喉素导致胞质溶胶中 cAMP 水平的均匀增加。用亚最大浓度的异丙肾上腺素（10nM）刺激HEK-293细胞导致生物传感器荧光快速但较小的降低（600秒时为-0.3 ΔF / Fo， 图2A）。当随着时间的推移在单个细胞孔中检查这些较低浓度的异丙肾上腺素（10nM和100nM）时，在HEK-293细胞中观察到cAMP水平的振荡（图2B）。这些振荡的周期始终在200秒左右。常规数据分析包括将响应拟合到单个站点衰减模型，该模型对这些振荡进行平均（参见连接线）。将多个实验平均在一起通常会导致这些振荡在数据中变得模糊不清。尽管如此，生物传感器仍显示出灵敏度和快速动力学，可以观察 cAMP 振荡。
cADDis也可以使用荧光显微镜进行测量。这种方法允许监测单细胞中的cAMP，也可以用于可视化针对不同亚细胞位置的生物传感器。在本研究中，生物传感器用于原代人气道平滑肌（HASM）细胞。用载体，10μM毛喉素或10nM异丙肾上腺素刺激HASM导致荧光强度随着时间的推移明显降低（从基线0Δ F/ F o 在120秒到-0.9 ΔF/ F o在410秒）（图3）（视频1， 视频2和 视频3）。荧光均匀分布在细胞的胞质溶胶中，不包括细胞核（参见延时视频）。因此，毛喉素和异丙肾上腺素在荧光HASM细胞中产生了类似的快速和相当大的减少。这些数据证明了在原代细胞培养中使用生物传感器的能力。
图 1：生物传感器协议步骤的示意图。 最初，将培养细胞分裂并用新鲜培养基重悬，然后用携带 cADDis 传感器的 BacMam 病毒感染。转染后细胞受到药理学药物的刺激，触发改变 cAMP 的细胞通路。使用板读数分光光度计 （A） 或荧光显微镜 （B） 捕获响应于 cAMP 浓度变化的荧光强度变化，从而提供 cAMP 动力学的实时量化。 请点击这里查看此图的较大版本.
图 2：在平板读数分光光度计上实时监测活 HEK-293 细胞中的 cAMP 。在表达生物传感器的 96 孔板上测量 HEK-293 细胞的荧光随时间变化。建立基线荧光后，监测荧光衰减7分钟。 （A）加入10μM毛喉素或10nM异丙肾上腺素后的荧光衰减绘制为10-15个实验的平均值±SEM。（B） 通过绘制加入 10 nM 或 100 nM 异丙肾上腺素后的单个实验来显示荧光衰减振荡。两个图中的数据都与单个站点衰减模型（连接线）拟合。 请点击这里查看此图的较大版本.
图 3：在荧光显微镜上实时监测活 HASM 细胞中的 cAMP 。在表达生物传感器的镀层 35 mm 培养皿上测量 HASM 细胞的荧光随时间变化。建立基线值后，每 30 秒测量一次荧光衰减，持续 20 分钟。在 120 秒（箭头）时加入指示的试剂。生物传感器荧光衰减曲线响应载体、10 μM 毛喉素或 10 nM 异丙肾上腺素。来自单个实验的数据用连接线显示。包括用载体（对照）、毛喉素或异丙肾上腺素处理的细胞的延时视频，以提供生物传感器荧光反应的视觉表示。 请点击这里查看此图的较大版本.
视频 1：实时监测活 HASM 细胞中 cAMP 响应载体的延时视频。 生物传感器响应载体（对照）的荧光衰减曲线。每 30 秒捕获一帧，持续 20 分钟。比例尺：40μM。 请按此下载此短片。
视频 2：响应 10 μM 毛喉素的活 HASM 细胞中 cAMP 实时监测的延时视频。 生物传感器对 10 μM 毛喉素的荧光衰减曲线。每 30 秒捕获一帧，持续 20 分钟。比例尺：40μM。 请按此下载此短片。
视频 3：响应 10 nM 异丙肾上腺素实时监测活 HASM 细胞中 cAMP 的延时视频。 生物传感器响应10nM异丙肾上腺素的荧光衰减曲线。每 30 秒捕获一帧，持续 20 分钟。比例尺：40μM。 请按此下载此短片。
| 培养基配制 | |
| HASM培养基 | |
| 名字 | 卷 |
| 汉姆的F-12K | 419.65毫升 |
| 胎牛血清 （FBS） | 50毫升 |
| 肝炎 （1M） | 12.5毫升 |
| 氢氧化钠溶液 | 6毫升 |
| L-谷氨酰胺 200 mM （100X） | 5毫升 |
| 氯化钙（1 M） | 0.850毫升 |
| 抗生素 - 抗真菌药 （100X） | 5毫升 |
| 普里莫辛 | 1毫升 |
| HEK培养基 | |
| 名字 | 卷 |
| DMEM （1x） | 444毫升 |
| 胎牛血清 （FBS） | 50毫升 |
| 抗生素 - 抗真菌药 （100X） | 5毫升 |
| 普里莫辛 | 1毫升 |
表1：HASM培养基和HEK培养基的培养基配方。
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Discussion
准确、灵敏地测量 cAMP 对于了解其在各种细胞过程中的作用以及研究 cAMP 依赖性信号通路的活性至关重要。通常采用几种方法测量 cAMP 水平，包括 ELISA、放射免疫测定、FRET 生物传感器和 GloSensor cAMP 测定 14,15,16,17,18。每种 cAMP 检测都有其优点和缺点。该协议允许实时检测和监测，范围从几分钟到几小时不等，并测量活细胞内的cAMP动力学，而无需包括磷酸二酯酶抑制剂。对于有兴趣研究磷酸二酯酶亚型在调节 cAMP 信号传导中的作用的研究人员来说，后一点至关重要19。该生物传感器有多种版本（见材料表）：绿色荧光团在cAMP结合时荧光减少，红色荧光团在cAMP结合时荧光增加，绿色荧光团在cAMP结合时荧光增加。生物传感器的向下版本最有用，因为主要限制因素是生物传感器的表达水平，并且该版本将在开始实验之前在基线上显示最大荧光，从而减轻了通过添加最大 cAMP 刺激来评估生物传感器表达的需要。该生物传感器还提供针对膜微结构域、初级纤毛或细胞核的版本。这些不同的版本可以在同一细胞内的胞质和膜/纤毛区室中同时测量 cAMP。这些新工具在可视化和量化不同细胞成分的 cAMP 动态方面具有独特的优势，这是一个快速发展且重要的研究领域20。
生物传感器提供了一种简单的方法来有效监测实时 cAMP 动态，使研究人员能够以出色的时间分辨率观察 cAMP 水平的快速变化。生物传感器的主要优势之一在于其高灵敏度，可以检测 cAMP 浓度的细微和显着变化8。在不存在磷酸二酯酶抑制剂的HEK-293细胞中，在低水平的异丙肾上腺素刺激下观察到cAMP振荡的一个例子（图2B）。这种振荡行为尚不清楚，并且对于这些细胞来说似乎是独一无二的，但是生物传感器的灵敏度和快速动力学使它们能够被检测到。然而，应该注意的是，生物传感器很容易饱和，因此这种生物传感器在量化中型和大型cAMP信号之间的差异方面可能会受到限制。当使用磷酸二酯酶抑制剂时，这种限制性特征尤其重要，当受体刺激也存在时，磷酸二酯酶抑制剂会导致 cAMP 水平的整体升高。虽然我们在这项研究中介绍了 HASM 的感染，但重要的是要承认使用 BacMam 载体感染原代细胞相关的挑战。条件应针对单个细胞类型进行优化，以实现生物传感器的充分表达。尽管如此，生物传感器的灵敏度和可扩展性使其非常适合高通量检测。
与基于FRET的传感器相比，使用这种生物传感器的另一个改进是最大限度地减少了光漂白。许多荧光生物传感器在长时间和反复的激发后会发生光漂白。这里描述的协议涉及间隔 30 秒的短时激发。生物传感器也非常明亮，从而限制了此类分析的潜在光漂白。在初始基线读数期间，将观察到光漂白作为漂移。如果要发生基线漂移，则可以在拟合曲线之前从数据中减去漂移基线，或者增加采样间隔以降低激励频率。
与其他 cAMP 生物传感器一样，该生物传感器与 cAMP 结合具有高度特异性。因此，该测定产生的信号与 cAMP 水平直接相关，显着减少了来自其他细胞成分的潜在干扰并提供可靠的结果。此外，生物传感器的多功能性也值得强调。虽然GloSensor检测在该领域被广泛使用，但它确实有一定的局限性。例如，依赖瞬时转染可能会导致特定细胞类型的效率低下，并且分析同一细胞内的多个参数或过程是一项挑战。此外，该检测依赖于荧光素酶，这些酶可能会受到某些化合物的影响，从而可能导致结果准确性受损21。另一方面，生物传感器可用于各种细胞类型和实验系统，包括贴壁细胞和悬浮细胞。它与多种细胞环境的兼容性使研究人员能够研究不同生物系统的 cAMP 动力学 22,23,24。这种生物传感器测定与荧光显微镜的集成进一步增强了其实用性，因为也可以收集细胞形态信息25,26,27。
该检测为研究人员在实验设计方面提供了极大的灵活性，从而能够进行与 cAMP 信号转导相关的广泛研究。它具有多种用途，允许测量基础 cAMP 水平，研究 cAMP 对不同刺激或治疗的反应波动，以及探索各种生理或病理条件下的 cAMP 动力学。该检测的关键优势之一是其与其他技术的兼容性，这使得对 cAMP 信号转导有更全面的理解。通过将生物传感器与免疫荧光染色或基因操作10 等方法相结合，研究人员可以更深入地了解特定细胞区室或信号通路内 cAMP 的精确空间和时间调控。通过这种整合，研究人员可以研究cAMP在各种情况下的多种功能，从而对cAMP介导的细胞过程的复杂性产生有价值的见解。采用这些技术使研究人员能够在单个细胞和群体水平上可视化和量化 cAMP 水平，从而全面了解其在细胞内的分布，包括识别 cAMP 池。因此，这些方法的结合能够获取精确的数据，极大地促进了我们对cAMP信号转导的了解。
虽然传统方法对于cAMP分析很有价值，但cADDis的引入代表了该领域的一个有希望的进步。它的特异性、灵敏度和实时性使其成为研究人员工具包的宝贵补充，特别是由于其与活细胞的兼容性。该生物传感器具有实时监测cAMP水平的能力和高灵敏度，在各种实验环境中具有显着优势。这一进展有助于更深入地理解cAMP信号转导的动态性质及其在生理和病理过程中的功能影响。
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Disclosures
提交人没有相互竞争的经济利益。
Acknowledgments
这项研究得到了美国国家心肺血液研究所 （NHLBI） （HL169522） 的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 96-well plate (clear) | Fisherbrand | 21-377-203 | |
| 35 mm dish | Greiner Bio-One | 627870 | Cell culture dishes with glass bottom |
| 96-well plate | Corning | 3904 | Black with clear flat bottom |
| Antibiotic-Antimycotic (100x) | Gibco | 15240062 | For HEK and HASM media |
| BZ-X fluorescence microscope | Keyence | ||
| Calcium chloride (IM) | Quality Biological Inc | E506 | For HASM media |
| Centrifuge tube (15 mL) | Thermo Scientific | 339651 | |
| DMEM (1x) | Gibco | 11965092 | HEK media |
| DPBS with Mg2+ and Ca2+ | Gibco | 14040-133 | |
| DPBS without Mg2+ and Ca2+ | Corning | 14040-133 | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | R&D systems | S11195 | For HEK and HASM media |
| Forskolin | Millipore | 344270 | Drug |
| Green Down cADDis cAMP Assay Kit | Montana Molecular | #D0200G | Reagent |
| Ham's F-12K | Gibco | 21127022 | For HASM media |
| HEPES (1M) | Gibco | 15630080 | For HASM media |
| Isoproterenol | Sigma | I6504 | Drug |
| L-glutamine 200 mM (100x) | Gibco | 25030-081 | For HASM media |
| Microcentrifuge tube (2 mL) | Eppendorf | 22363352 | |
| Primocin | Invitrogen | ant-pm-1 | Antibiotic for HASM media |
| RNAse away | Thermo Scientific | 700511 | Reagent |
| Sodium hydroxide solution | Sigma | S2770 | For HASM media |
| Spectrmax M5 plate reader | Molecular Devices | ||
| Trichostatin A | TCI America | T2477 | Reagent |
| Trypsin EDTA | Gibco | 25200-056 | Reagent |
References
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