Summary

Katheterisierung der Darmschlingen bei Wiederkäuern

Published: June 11, 2009
doi:

Summary

Wir beschreiben eine neuartige OP-Methode zur Katheterisierung "Darmschlingen" im Ileum von Schafen. Sobald Tiere haben sich von der Operation erholt haben und gelöscht Antibiotika und Analgetika können mehrere Behandlungen direkt in Schlaufen über den Katheter hinterlegt.

Abstract

Der Darm ist ein komplexes Gebilde, das nicht nur in die Aufnahme von Nährstoffen beteiligt ist, sondern fungiert auch als eine Barriere zwischen dem Individuum und der Außenwelt. Insofern spielt der Darm eine zentrale Rolle in Immunüberwachung und Schutz vor Darm-Erreger. Untersuchung Darm-Physiologie und Immunologie allgemein beschäftigt "Darmschlingen" als ein experimentelles Modell. Die Mehrzahl dieser Schleife Modelle sind Nichtwiedereinziehung operative Eingriffe, die kurzfristig (<24 h) Veränderungen im Darm (1-3) zu studieren. Wir zuvor erstellte eine Erholung Darmschlinge Modell gezielt messen langfristige (<6 Monate) immunologische Veränderungen im Darm der Schafe nach Exposition mit Impfstoffen, Adjuvantien und Viren (4). Dieses Verfahren lokalisiert auf einen speziellen 'Schleife', so dass wir diesen Bereich des Darms Probe. Ein wesentlicher Nachteil dieser Methode ist das einzige Fenster der Gelegenheit, Behandlungen (dh zum Zeitpunkt der Operation) zu verwalten. Darüber hinaus können Proben sowohl der Darmschleimhaut und luminalen Inhalte nur bei Beendigung des Projekts getroffen werden. Sonstige wichtige Einschränkungen der oben genannten Modell, dass die chirurgische Manipulation und erforderliche postoperative Maßnahmen (zB Verabreichung von Antibiotika und Analgetika) kann direkt Einfluss auf die Behandlung selbst und / oder zu verändern Immunfunktion, damit verwirrende Ergebnisse. Deshalb haben wir unsere Darmschlinge Modell, indem Sie langfristige Katheter in die Schlaufen geändert. Sheep vollständig erholen von dem Verfahren und sind unabhängig von den exteriorisierten Kathetern. Insbesondere ermöglicht die Einrichtung von Kathetern in Schlaufen uns mehrere Behandlungen über einen längeren Zeitraum einführen, nach Erholung von der Operation und die Clearance von Medikamenten während der Operation verabreicht und die postoperativen Phase.

Protocol

Versuchsdurchführung: Alle Instrumente sind autoklaviert; nicht autoklavierbar Materialien sind in Germex Kaltsterilisation Lösung für ein Minimum von 10 min sterilisiert. Schafe sind pre-medizinischen mit Acepromazin (0,05 mg / kg), Glycopyrrolat (0,005 mg / kg) und Butorphanoltartrat (0,2 mg / kg) IM, und links für 15-20 min. Der Hals ist rasiert und die Haut chirurgisch abgetrennt. Sobald die Jugularvene wird visualisiert, 0,1 ml Lidocain injiziert wird SC über die Vene, den Kathet…

Discussion

In diesem Verfahren konnten wir erfolgreich etablieren Katheter in Darmschlingen im Ileum von Schafen hergestellt. Durch die Einhaltung strenger post-operative Betreuung, Tiere schnell wieder aus dem Verfahren und wieder normale Aktivität 5-7 Tage nach der Operation. Wir haben festgestellt, dass die Errichtung von Kathetern innerhalb von Schleifen hat keinen Einfluss auf Darmschleimhaut oder Funktion des Immunsystems (Daten nicht gezeigt) und Tiere können für mindestens 8 Wochen nach der Operation zu leben. Dieses Ve…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Forschung konnte nicht ohne das Engagement und die Bemühungen vieler Personen an der Agriculture and Agri-Food Canada Research Centre, Lethbridge, Alberta, Kanada abgeschlossen haben. In diesem Zusammenhang bedanken wir uns bei: Tara Shelton für Pre-und post-operative Betreuung von Tieren, OP-Vorbereitung und Anästhesie, Analyse von Proben und die Unterstützung mit Video-Bildgebung; Randy Wilde und Estela Costa für pre-und post-operative Versorgung; Jenny Gusse für die Probenanalyse, Byron Lee für den Trokar Bild, und Brian Egland für Schafhaltung. Wir danken auch Brent Selinger (Department of Biological Sciences, University of Lethbridge) für die Bereitstellung von Video-Ausrüstung und Beratung sowie sonstige Unterstützung (dh ausführende Produktion) und die Curriculum Re-Development Centre, University of Lethbridge für die Videografie Know-how. Diese Studie wurde zum Teil durch Zuschüsse aus dem erweiterten Foods und Materialien Network (GDI), das Kanada-Alberta Beef Industry Development Fund (GDI) und Agriculture and Agri-Food Canada (GDI und JPK) unterstützt.

Materials

Category / Item NumberCompanyCatalogue
Surgeon supplies
Surgical glovesWDDCa103091
Surgical maskWDDCMAX53013
Surgical gownCDMVb3365
OB ApronWDDC900062
Surgical capWDDC903271
EZ Scrub brushWDDCBDC377479
Anesthesia and drugs
Anesthetic machineBoyle
SodasorbWDDC108638
LaryngoscopeWDDC
Laryngoscope blade (Miller blade #4)WDDC902667
Endotracheal tube (7.0 – 8.5 mm)WDDC
Lidocaine endotracheal sprayWDDC103364
AcepromazineWDDCAUS01020
GlycopyrrolateWDDCSAB2880
Butorphanol tartrateWDDCAYE304541
DiazepamWDDCsab790
Thiopental sodiumWDDC103508
Epinephrine hydrochlorideWDDC103856
DoxapramStrathcona Pharmacy
IsofluraneWDDC100339
HemostamWDDC103857
FlunixinWDDCsch140100
EnrofloxacinWDDChll0049
MetronidazoleWDDC101653
AmpicillinWDDCNOV67185-6
CefazolinWDDCnov69397
Surgical equipment and supplies
ElectroscapelMacanMV8
Heating matKanePHMD-48
Stomach tube (Nalgene tubing 5/16″ ID)Fisher Scientific
Needle driverWDDC108338
Addison brown forcepWDDC911075
Rat tooth forcepCDMV5275
Kelly forcepWDDC901133
Mosquito hemostatWDDC108471
Carmalt forcepWDDC901225
Scalpel handleWDDC900285
Scalpel blade #22WDDC900511
Metzenbaum scissorWDDC901166
Sharp-sharp scissorWDDC108264
Towel clampWDDC901213
Allis tissue forcepWDDC901201
Doyen’s forcepWDDC904226
Stainless steel bowlWDDC903601
Stainless steel trocar (curved)Local supplier
Catheter introducerWDDC11440
Surgical towelCDMV7972
Disposable drapeWDDC900035
Steri drapeCDMV2323
Drape (40 x 40 cm)CDMV8358
Surgical drape (7″ x 11 ¼” opening)CDMV2694
Vicryl (2-0)WDDCJJMJ333H
Silk 2-0WDDC105248
Catgut #3WDDCCSL547-2070
Supramid #1WDDCCSL547-3040
Needles (cutting and non-cutting)WDDC
Catheter
Silastic tubing (0.040″ ID, 0.085″ OD)Fisher Scientific11-189-15D
Orbeseal ointmentWDDC106344
Clear silicone (732 multi-purpose sealant)Local supplier
Blunt end needleWDDC905035
Marker (permanent industrial)Local supplier
Catheter pouch (constructed of Elastoplast 7.5 cm)WDDC104094
Bandages
Hospital tape (2″)WDDC103842
Hospital tape (1″)WDDCVLMRENF20
Gauze sponge 4×4WDDC107551
Gauze clingWDDC107633
Elastoplast 7.5cmWDDC104094
Elastoplast rippable bandageWDDC104093
Needles and syringes
Syringe (60 ml)WDDC104004
Syringe (10 ml)WDDCbdc301604
25G NeedleWDDCBDC305122
20G NeedleWDDCBDC305175
18G NeedleWDDC903353
Intravenous
Intracath IV catheter (16G 8″)WDDCbdc3831621
IV administration set (10 drop)WDDC101797
0.9% NaCl solutionWDDCBAXJB1322P
Plasmalyte 148 solutionWDDCBAXJB2534
DextroseWDDCMCT60190
Peristaltic pumpCole Parmer7524-10
Livestock identification tag cementLocal supplier
Sanatizers / disinfectants
Germex solutionWDDCmtc60270
Isopropyl alcoholWDDC104590
Stanhexidine cleanserWDDC109248
Prepodyne solutionWDDC105710
Prepodyne scrubWDDC105711

aWestern Drug Distribution Center LTD, Edmonton, AB.

bThe Veterinary Medication Distribution Center Inc., St. Hyacinthe, QE.

References

  1. Vidal, J. E., McClane, B. A., Saputo, J., Parker, J., Uzal, F. A. Effects of Clostridium perfringens beta-toxin on the rabbit small intestine and colon. Infect. Immun. 76, 4396-4404 (2008).
  2. Santos, R. L., Zhang, S., Tsolis, R. M., Baumler, A. J., Adams, L. G. Morphologic and molecular characterization of Salmonella typhimurium infection in neonatal calves. Vet. Pathol. 39, 200-215 (2002).
  3. Uzzau, S., Leori, G. S., Petruzzi, V., Watson, P. R., Schianchi, G., Bacciu, D., Mazzarello, V., Wallis, T. S., Rubino, S. Salmonella enterica serovar-host specificity does not correlate with the magnitude of intestinal invasion in sheep. Infect. Immun. 69, 3092-3099 (2001).
  4. Gerdts, V., Uwiera, R. R. E., Mutwiri, G. K., Wilson, D. J., Bowersock, T., Kindane, A., Babiuk, L. A., Griebel, P. J. Multiple intestinal ‘loops’ provide an in vivo model to analyse multiple mucosal immune responses. J. Immunol. Methods. 256, 19-33 (2001).
  5. Greibel, P. J., Davis, W. C., Reynolds, J. D. An analysis of the growth and differentiation of b cells isolated from follicles from ileal Peyer’s patch of sheep. Immunology. 75, 601-607 (1992).
  6. Motyka, G., Greibel, P. J., Reynolds, J. D. Agents that activate protein kinase C resue sheep ileal Peyer’s patch B cells from apoptosis. Eur. J. Immunol. 23, 1314-1321 (1993).
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Cite This Article
Uwiera, R. R. E., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of Intestinal Loops in Ruminants. J. Vis. Exp. (28), e1301, doi:10.3791/1301 (2009).

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