Summary

L'isolement et la dérivation de cellules germinales embryonnaires de souris

Published: October 22, 2009
doi:

Summary

La capacité des cellules embryonnaires germinales à se différencier en cellules germinales primordiales durant les stades de développement précoce est un modèle parfait pour répondre à nos hypothèses sur le cancer et l'infertilité. Ce protocole montre comment isoler des cellules germinales primordiales gonades en développement en 10/05 à 11/05 jours post coïtum embryons de souris.

Abstract

La capacité des cellules embryonnaires germinales (EG) de se différencier en cellules germinales primordiales (PGC) et plus tard en gamètes premiers stades de développement est un modèle parfait pour répondre à nos hypothèses sur le cancer et l'infertilité. Ce protocole montre comment isoler des cellules germinales primordiales gonades en développement dans les embryons 10/05 au 11/05 jours post-coïtum souris (DPC). Développer les crêtes gonadiques d'embryons de souris (C57BL6J) ont été dissociées par une rupture mécanique avec de la collagénase, puis étalées en une couche de fibroblastes d'embryon de souris d'alimentation (MEF-CF1) qui était auparavant mitotiquement inactivé par la mitomycine C, en présence des médias à élimination directe et complétée par un inhibiteur de la leucémie Cell Factor Factor (LIF), facteur de croissance basique des fibroblastes (bFGF), et souches (SCF). L'utilisation de ces méthodes optimisées pour l'identification PCG, l'isolement, et l'établissement de conditions de culture permet les cultures à long terme des cellules EG depuis plus de 40 jours. Les lignes de cellules embryonnaires germinales montré phénotype embryonnaire et l'expression des marqueurs utilisés commune de l'état pluripotent. L'isolement et la dérivation de cellules germinales dans la culture de fournir un outil pour comprendre leur développement in vitro et offrent la possibilité de surveiller les dommages cumulatifs aux niveaux génétiques et épigénétiques après l'exposition au stress oxydatif.

Protocol

Partie 1: Laparotomie souris enceintes Par dislocation cervicale, euthanasier une souris C57BL6J enceinte femelle à 10/05 au 11/05 DPC. Nettoyer l'abdomen avec un savon antimicrobien, et puis, il raser. Après le rasage, lavage de l'abdomen avec une solution saline. Ensuite, séchez l'abdomen avec une gaze stérile. Couvrir la souris avec un nouveau champ stérile. Faire une incision ventrale aide de pinces et de ciseaux de dissection. I…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à souligner l'aide inestimable de: Dr Neal First et Kourtney Wilkinson pour le manuscrit d'édition, le Dr Lucy Senter, le Dr Brigitte Willeford et Mike Basett de l'aide pour les soins de formation et d'animaux à l'installation MSU ALAC souris accrédités; Dr Dwayne Wise pour son aide à la microscopie et la capture d'image; Cesar Monroy, Hannah Swoope, et Bobbie Huddleston pour leur aide à la production vidéo à la MSU. Cette recherche a été financée par l'Office de la recherche institutionnelle et le Département des sciences biologiques à la Mississippi State University.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
10.5 – 11.5 dpc pregnant C57BL6J female mouse crossed with the same background male mouse.        
Mouse Fibroblast MEF-CF1 ATCC     SCRC-1040  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)   Invitrogen 14190/086  
Collagenase /Dispase Solution   Roche 269638  
Gelatin   Sigma G1890  
Mitomycin C   Sigma M4287  
Trypsin EDTA   Invitrogen 25200-072  
MEF Medium: Dulbecco Medium Eagle Modified (D-MEM) GLUTAMAX High glucose   Invitrogen 10566024  
10% Fetal Bovine Serum   Invitrogen 16000/044  
1% of antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096  
Knockout Media: 80% knockout D-MEM   Invitrogen 10829/018  
20% Knockout serum Invitrogen Cat. No. 1028/028, 200mM L-glutamine Invitrogen     25130/081 with β-mercaptoethanol Sigma Catalogue Number: M7522
1X non essential amino acid solution   Invitrogen 11140/050  
1% antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096 supplemented with grow factor as 2500 U of Leukemia inhibitory factor (mLIF-ESGRO) Millipore Catalogue Number: ESG1106
40 ng/ml of Recombinant Murine Stem Cell Factor (SCF) ReproTech     250-03  
20 ng/ml of Basic Fibroblast Growth factor (bFGF)   Invitrogen 13256-029  
Corning center well culture dish 60mm   Fisher 07-200-79 1.5 ml eppendorf tube, and 15 ml falcon tubes
Forceps No. 14 and 15, scalpel 35 mm, dissection scissors, surgical fields, antimicrobial soap, saline solution 0.9 %, gauze, ice foam container, razor blade, scalpel 35 mm, fine forceps No. 4 and 5, fine teasing needle with handle, filter paper sheets, and pulled glass pipettes.

Equipment: dissecting stereomicroscope, light source Schott Fostec, inverted microscope, micropipette 10 and 200ul, centrifuge, bio safety Cabinet.

References

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  2. Donovan, P. J., De Miguel, M. P. Turning Germ Cells into Stem Cells. Current Opinion in Genetics and Development. 13, 463-471 (2003).
  3. Labosky, P. A., Hogan, B. L. M., Sharp, P. T., Mason, I. Part 12: Mouse Primordial Germ Cells: isolation and in vitro culture. Molecular embryology: methods and protocols. 97, (1999).
  4. Mc Laren, A., Southee, D. Entry of Mouse Embryonic Germ Cells into Meiosis. Developmental Biology. 187, 107-113 (1997).
  5. Yoshimizu, T., Obinata, M., Matsui, Y. Stage-specific tissue and cell interactions play key roles in mouse germ cell specification. Development. 128, 481-490 (2001).
  6. Zhang, J., Hhvorostov, I., Teitell, M. From MEFs to Matrigel I: Passaging hESCs in the Presence of MEFs. J Vis Exp. , (2008).
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Cite This Article
Moreno-Ortiz, H., Esteban-Perez, C., Badran, W., Kent-First, M. Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells. J. Vis. Exp. (32), e1635, doi:10.3791/1635 (2009).

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