Summary

Fare Embriyonik Germinal Hücreleri İzolasyon ve türetilmesi

Published: October 22, 2009
doi:

Summary

Ilkel germinal hücrelerin ayırt etmek için erken geliştirme aşamasında, embriyonik germinal hücreler, kanser ve kısırlık hakkındaki hipotezi adresine yeteneği mükemmel bir model. Bu protokol, 10,5-11,5 gün coitum fare embriyoları, gelişmekte olan gonadlar ilkel germinal hücreleri izole etmek için nasıl gösterir.

Abstract

Embriyonik germinal hücrelerin yeteneği (EG), kanser ve kısırlık hakkındaki hipotezi adresi için mükemmel bir model, erken gelişim aşamalarında, ilkel germinal hücreleri (PGCs) içine ve daha sonra gamet içine ayırt etmek için. Bu protokol, 10,5-11,5 gün coitum (DPC) fare embriyoları, gelişmekte olan gonadlar ilkel germinal hücreleri izole etmek için nasıl gösterir. Fare embriyoları gonadal sırtlar Geliştirme (C57BL6J) sonra daha önce mitotik nakavt medya huzurunda mitomisin C ile inaktive edilmiş ve Lösemi İnhibitörü ile desteklenmiş bir fare embriyo fibroblast besleyici tabaka (MEF-CF1) kaplama kollajenaz ile mekanik parçalanması, ayrışmış edildi Faktörü (LIF), temel Fibroblast Büyüme Faktörü (bFGF) ve Kök Hücre Faktörü (SCF). PCG kimlik, kültür koşulları, izolasyon, ve kurulması için optimize edilmiş, bu yöntemleri kullanarak, en fazla 40 gün için EG hücreleri uzun vadeli kültürleri izin verir. Embriyonik germinal hücre hatları, pluripotent devletin yaygın olarak kullanılan belirteçlerin embriyonik fenotip ve ifade gösterdi. İzolasyon ve kültür germinal hücrelerin türetme gelişimini anlamak ve in vitro genetik ve epigenetik düzeyde oksidatif strese maruz kaldıktan sonra birikimli hasar izlemek için bir fırsat sunmak için bir araç sağlar.

Protocol

Bölüm 1: Hamile Fare Laparotomi Servikal dislokasyon kullanarak, 10,5-11,5 DPC, hamile bir C57BL6J kadın fare euthanize. Karın antimikrobiyal sabun ile temizleyin ve sonra, tıraş. Tıraştan sonra karın, bir tuzlu su çözeltisi ile yıkayın. Sonra steril bir gazlı bez ile karın kurulayın. Yeni bir steril alan fare ile kaplayın. Forseps ve diseksiyon makas kullanarak ventral kesi olun. Belirlenmesi ve karın boşluğuna kadar tüm rahim k…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dr Lucy Senter, Dr. Brigit Willeford ve MSU ALAC akredite fare tesisi, eğitim ve hayvan bakımı ile ilgili yardım için Mike Basett; Dr. Dwayne Wise Dr Neal Birinci ve yazının düzenleme için Kourtney Wilkinson: Yazarlar, paha biçilmez bir yardım kabul etmek istiyorum Cesar Monroy Hannah Swoope ve Bobbie Huddleston MSU video üretimi ile yardım için mikroskopi ve görüntü yakalama ile yaptığı yardım için. Bu araştırma, Mississippi State Üniversitesi Kurumsal Araştırma ve Biyolojik Bilimler Bölümü Ofisi tarafından finanse edildi.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
10.5 – 11.5 dpc pregnant C57BL6J female mouse crossed with the same background male mouse.        
Mouse Fibroblast MEF-CF1 ATCC     SCRC-1040  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)   Invitrogen 14190/086  
Collagenase /Dispase Solution   Roche 269638  
Gelatin   Sigma G1890  
Mitomycin C   Sigma M4287  
Trypsin EDTA   Invitrogen 25200-072  
MEF Medium: Dulbecco Medium Eagle Modified (D-MEM) GLUTAMAX High glucose   Invitrogen 10566024  
10% Fetal Bovine Serum   Invitrogen 16000/044  
1% of antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096  
Knockout Media: 80% knockout D-MEM   Invitrogen 10829/018  
20% Knockout serum Invitrogen Cat. No. 1028/028, 200mM L-glutamine Invitrogen     25130/081 with β-mercaptoethanol Sigma Catalogue Number: M7522
1X non essential amino acid solution   Invitrogen 11140/050  
1% antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096 supplemented with grow factor as 2500 U of Leukemia inhibitory factor (mLIF-ESGRO) Millipore Catalogue Number: ESG1106
40 ng/ml of Recombinant Murine Stem Cell Factor (SCF) ReproTech     250-03  
20 ng/ml of Basic Fibroblast Growth factor (bFGF)   Invitrogen 13256-029  
Corning center well culture dish 60mm   Fisher 07-200-79 1.5 ml eppendorf tube, and 15 ml falcon tubes
Forceps No. 14 and 15, scalpel 35 mm, dissection scissors, surgical fields, antimicrobial soap, saline solution 0.9 %, gauze, ice foam container, razor blade, scalpel 35 mm, fine forceps No. 4 and 5, fine teasing needle with handle, filter paper sheets, and pulled glass pipettes.

Equipment: dissecting stereomicroscope, light source Schott Fostec, inverted microscope, micropipette 10 and 200ul, centrifuge, bio safety Cabinet.

References

  1. DeFelici, M. . Cell Biology: A laboratory Handbook. 1, 73-85 (1998).
  2. Donovan, P. J., De Miguel, M. P. Turning Germ Cells into Stem Cells. Current Opinion in Genetics and Development. 13, 463-471 (2003).
  3. Labosky, P. A., Hogan, B. L. M., Sharp, P. T., Mason, I. Part 12: Mouse Primordial Germ Cells: isolation and in vitro culture. Molecular embryology: methods and protocols. 97, (1999).
  4. Mc Laren, A., Southee, D. Entry of Mouse Embryonic Germ Cells into Meiosis. Developmental Biology. 187, 107-113 (1997).
  5. Yoshimizu, T., Obinata, M., Matsui, Y. Stage-specific tissue and cell interactions play key roles in mouse germ cell specification. Development. 128, 481-490 (2001).
  6. Zhang, J., Hhvorostov, I., Teitell, M. From MEFs to Matrigel I: Passaging hESCs in the Presence of MEFs. J Vis Exp. , (2008).
check_url/1635?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Moreno-Ortiz, H., Esteban-Perez, C., Badran, W., Kent-First, M. Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells. J. Vis. Exp. (32), e1635, doi:10.3791/1635 (2009).

View Video