Summary

अलगाव और माउस भ्रूणीय कीटाणु कक्ष की व्युत्पत्ति

Published: October 22, 2009
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Summary

भ्रूण कीटाणु कोशिकाओं के प्रारंभिक विकास चरणों के दौरान मौलिक कीटाणु कोशिकाओं में अंतर करने की क्षमता के लिए एक आदर्श कैंसर और बांझपन के बारे में हमारी परिकल्पना पता मॉडल है. इस प्रोटोकॉल पता चलता है कि कैसे 10.5-11.5 दिनों के बाद coitum माउस भ्रूण में विकासशील gonads से मौलिक कीटाणु कोशिकाओं को अलग करने के लिए.

Abstract

भ्रूण कीटाणु कोशिकाओं की क्षमता (जैसे) के प्रारंभिक विकास चरणों के दौरान मौलिक कीटाणु कोशिकाओं (PGCs) में और बाद में gametes में अंतर करने के लिए एक आदर्श कैंसर और बांझपन के बारे में हमारी परिकल्पना पता मॉडल है. इस प्रोटोकॉल पता चलता है कि कैसे 10.5-11.5 दिनों के बाद coitum (डीपीसी) माउस भ्रूण में विकासशील gonads से मौलिक कीटाणु कोशिकाओं को अलग करने के लिए. माउस भ्रूण से gonadal लकीरें का विकास (C57BL6J) collagenase के साथ यांत्रिक विघटन, तो एक माउस भ्रूण fibroblast फीडर (MEF – CF1) परत है कि पहले mitotically mitomycin सी के साथ पीटा मीडिया की उपस्थिति में निष्क्रिय और लेकिमिया अवरोध करनेवाला के साथ पूरक में चढ़ाया द्वारा अलग थे (LIF) फैक्टर, बुनियादी fibroblast वृद्धि कारक (bFGF), और स्टेम सेल फैक्टर (SCF). PCG पहचान, अलगाव, संस्कृति शर्तों के और स्थापना के लिए इन अनुकूलित विधियों का प्रयोग अधिक से अधिक 40 दिनों के लिए ईजी कोशिकाओं के दीर्घकालिक संस्कृतियों परमिट. भ्रूण कीटाणु सेल लाइनों भ्रूण और pluripotent राज्य के आम उपयोग मार्करों के phenotype अभिव्यक्ति दिखाया. अलगाव और संस्कृति में कीटाणु कोशिकाओं की व्युत्पत्ति एक उपकरण के लिए इन विट्रो में उनके विकास को समझने और आनुवंशिक और epigenetic स्तर पर oxidative तनाव के प्रदर्शन के बाद संचयी नुकसान की निगरानी करने का अवसर प्रदान करते हैं प्रदान करते हैं.

Protocol

भाग 1: गर्भवती माउस laparotomy ग्रीवा अव्यवस्था का प्रयोग, 10.5-11.5 डीपीसी में एक गर्भवती महिला माउस C57BL6J euthanize. रोगाणुरोधी साबुन के साथ पेट को साफ करें, और तब, यह दाढ़ी. हजामत बनाने के बाद, एक नमकीन घोल के साथ ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

, डॉ. लुसी Senter, डा. ब्रिजिट Willeford और MSU ALAC मान्यता प्राप्त माउस सुविधा प्रशिक्षण और जानवरों की देखभाल के साथ सहायता के लिए माइक Basett, डॉ. ड्वेन समझदार डॉ. नील पहले और पांडुलिपि संपादन के लिए Kourtney विल्किनसन: लेखकों के अमूल्य मदद स्वीकार करते हैं करना चाहते हैं Cesar Monroy, हन्ना Swoope, और MSU में वीडियो उत्पादन के साथ उनकी सहायता के लिए Bobbie हडलस्टन, माइक्रोस्कोपी और छवि पर कब्जा के साथ उसकी सहायता के लिए. इस शोध संस्थागत अनुसंधान और मिसिसिपी राज्य विश्वविद्यालय में जीव विज्ञान विभाग के कार्यालय द्वारा वित्त पोषित किया गया था.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
10.5 – 11.5 dpc pregnant C57BL6J female mouse crossed with the same background male mouse.        
Mouse Fibroblast MEF-CF1 ATCC     SCRC-1040  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)   Invitrogen 14190/086  
Collagenase /Dispase Solution   Roche 269638  
Gelatin   Sigma G1890  
Mitomycin C   Sigma M4287  
Trypsin EDTA   Invitrogen 25200-072  
MEF Medium: Dulbecco Medium Eagle Modified (D-MEM) GLUTAMAX High glucose   Invitrogen 10566024  
10% Fetal Bovine Serum   Invitrogen 16000/044  
1% of antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096  
Knockout Media: 80% knockout D-MEM   Invitrogen 10829/018  
20% Knockout serum Invitrogen Cat. No. 1028/028, 200mM L-glutamine Invitrogen     25130/081 with β-mercaptoethanol Sigma Catalogue Number: M7522
1X non essential amino acid solution   Invitrogen 11140/050  
1% antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096 supplemented with grow factor as 2500 U of Leukemia inhibitory factor (mLIF-ESGRO) Millipore Catalogue Number: ESG1106
40 ng/ml of Recombinant Murine Stem Cell Factor (SCF) ReproTech     250-03  
20 ng/ml of Basic Fibroblast Growth factor (bFGF)   Invitrogen 13256-029  
Corning center well culture dish 60mm   Fisher 07-200-79 1.5 ml eppendorf tube, and 15 ml falcon tubes
Forceps No. 14 and 15, scalpel 35 mm, dissection scissors, surgical fields, antimicrobial soap, saline solution 0.9 %, gauze, ice foam container, razor blade, scalpel 35 mm, fine forceps No. 4 and 5, fine teasing needle with handle, filter paper sheets, and pulled glass pipettes.

Equipment: dissecting stereomicroscope, light source Schott Fostec, inverted microscope, micropipette 10 and 200ul, centrifuge, bio safety Cabinet.

References

  1. DeFelici, M. . Cell Biology: A laboratory Handbook. 1, 73-85 (1998).
  2. Donovan, P. J., De Miguel, M. P. Turning Germ Cells into Stem Cells. Current Opinion in Genetics and Development. 13, 463-471 (2003).
  3. Labosky, P. A., Hogan, B. L. M., Sharp, P. T., Mason, I. Part 12: Mouse Primordial Germ Cells: isolation and in vitro culture. Molecular embryology: methods and protocols. 97, (1999).
  4. Mc Laren, A., Southee, D. Entry of Mouse Embryonic Germ Cells into Meiosis. Developmental Biology. 187, 107-113 (1997).
  5. Yoshimizu, T., Obinata, M., Matsui, Y. Stage-specific tissue and cell interactions play key roles in mouse germ cell specification. Development. 128, 481-490 (2001).
  6. Zhang, J., Hhvorostov, I., Teitell, M. From MEFs to Matrigel I: Passaging hESCs in the Presence of MEFs. J Vis Exp. , (2008).
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Cite This Article
Moreno-Ortiz, H., Esteban-Perez, C., Badran, W., Kent-First, M. Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells. J. Vis. Exp. (32), e1635, doi:10.3791/1635 (2009).

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