Summary

L'isolement et l'enrichissement des cellules de rat souches mésenchymateuses (CSM) et de séparation des mono-colonie Dérivé MSC

Published: March 22, 2010
doi:

Summary

Rat MSC ont été isolés à partir des fémurs et tibias et ensuite enrichi par tri cellulaire magnétique. Cellules triées ont été confirmés pour l'expression des marqueurs de surface par cytométrie en flux. Ces cellules ont également été cultivées à une densité clonale pour former des colonies isolées et ensuite ces colonies ont été séparés par des cylindres de clonage.

Abstract

MSC sont une population de cellules souches adultes qui est une source prometteuse pour des applications thérapeutiques. Ces cellules peuvent être isolées de la moelle osseuse et peut facilement être séparé des cellules souches hématopoïétiques (CSH) en raison de leur adhésion en plastique. Ce protocole décrit comment isoler des MSC à partir des fémurs et des tibias de rats. Les cellules isolées ont été encore enrichie contre deux marqueurs de surface CD54 et CD90 MSC par tri cellulaire magnétique. L'expression de marqueurs de surface CD54 et CD90 ont ensuite été confirmés par une analyse de cytométrie en flux. HSC marqueur CD45 a également été inclus pour vérifier si les cellules souches mésenchymateuses ont été triés appauvri de CSH. MSC sont naturellement très hétérogènes. Il ya des sous-populations de cellules qui ont des formes différentes, la prolifération et les capacités de différenciation. Ces sous-populations expriment tous les marqueurs connus MSC et aucun marqueur unique n'a pas encore été identifiés pour la sous-populations différentes. Par conséquent, une approche alternative pour séparer les différentes sous-populations est d'utiliser le clonage cylindres de séparer une seule colonie de cellules dérivées. Les cellules provenant de colonies unique peut alors être cultivées et évaluées séparément.

Protocol

1. L'isolement des cellules souches mésenchymateuses Rat Les cellules souches mésenchymateuses ont été isolés de 6-8 semaines Sprague-Dawley rats femelles, comme décrit précédemment 1, 2. Isolée MSC peuvent adhérer à la surface en plastique et facilement développer durant la culture in vitro. L'animal a été mis dans une chambre de l'anesthésie et anesthésiés pendant environ cinq minutes. Pendant l'anesthésie, d'observer le taux de c…

Discussion

Ce protocole décrit comment isoler et d'enrichir les MSC. Une méthode pour séparer les cellules mono-colonie dérivée est également intégré. Il ya plusieurs étapes qui sont importantes pour une séparation réussie l'isolement, l'enrichissement et la colonie. Tout en faisant l'isolement cellulaire de rat, il est recommandé de filtrer à travers une passoire cellule ou une maille de nylon stérile de taille similaire pour se débarrasser des caillots de sang et de débris osseux. Après étalemen…

Acknowledgements

Le travail a été soutenu en partie par l'Institut national de la Santé (R01GM079688, R21RR024439 et R21GM075838), la National Science Foundation (EFAC 0.941.055), et la Fondation MSU.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
1X D-PBS   Invitrogen 14040-133  
DMEM   Invitrogen 11885-084  
Cell strainer   BD Bioscience 352350  
FBS   Invitrogen 26140-079  
Pen-Strep   Invitrogen 15140  
Trypsin-EDTA   Invitrogen 25200-056  
BD Imagnet   BD Bioscience 552311  
Biotin mouse IgG2a   BD Bioscience 555572  
Biotin mouse IgG1   BD Bioscience 555747  
Biotin anti-rat CD54   Cedarlane Labs CL054B  
Biotin anti-rat CD90   Cedarlane Labs CL005B  
Biotin anti-rat CD45   Cedarlane Labs CL001B  
BD Imag buffer   BD Bioscience 552362  
Round-bottom tube   BD Bioscience 352063  
Streptavidin particles   BD Bioscience 557812  
SA-PE   R&D systems F0040  
Cloning cylinder   Sigma C2059  

References

  1. de Hemptinne, I., Vermeiren, C., Maloteaux, J. M., Hermans, E. Induction of glial glutamate transporters in adult mesenchymal stem cells. J Neurochem. 91, 155-166 (2004).
  2. Porter, R. M., Huckle, W. R., Goldstein, A. S. Effect of dexamethasone withdrawal on osteoblastic differentiation of bone marrow stromal cells. J Cell Biochem. 90, 13-22 (2003).
  3. Chamberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 25, 2739-2749 (2007).
  4. Abdallah, B. M., Kassem, M. Human mesenchymal stem cells: from basic biology to clinical applications. Gene Ther. 15, 109-116 (2008).
  5. Erica, L., Herzog, L. C., Diane, S. Krause Plasticity of marrow-derived stem cells. Blood. 102, 3483-3493 (2003).
  6. Colter, D. C., Sekiya, I., Prockop, D. J. Identification of a subpopulation of rapidly self-renewing and multipotential adult stem cells in colonies of human marrow stromal cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 7841-7845 (2001).
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Cite This Article
Zhang, L., Chan, C. Isolation and Enrichment of Rat Mesenchymal Stem Cells (MSCs) and Separation of Single-colony Derived MSCs. J. Vis. Exp. (37), e1852, doi:10.3791/1852 (2010).

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