Summary

In-vivo-Visualisierung von synaptischen Vesikeln Innerhalb Drosophila Larven Segmentale Axone

Published: October 15, 2010
doi:

Summary

Dieses Protokoll beschreibt die Live-Präparation<em> Drosophila</em> Larven zum Zwecke der Abbildung der Bewegung der GFP markierten axonalen Bläschen auf Mikrotubuli.

Abstract

Die Aufklärung der Mechanismen der axonalen Transport hat gezeigt, dass sehr wichtig bei der Bestimmung, wie Mängel in Ferntransport verschiedenen neurologischen Erkrankungen beeinflussen. Mängel in diesem wichtigen Prozess kann nachteilige Auswirkungen auf die neuronale Funktion und Entwicklung. Wir haben eine Dissektion Protokoll, das entworfen, um das Expose wird entwickelt<em> Drosophila</em> Larven segmentalen Nerven axonalen Transport in Echtzeit anzeigen. Wir haben dieses Protokoll für Live-Aufnahmen von der von Hurd und Saxton (1996) für immunolocalizatin der Larven segmentalen Nerven verwendet veröffentlicht angepasst. Eine sorgfältige Präparation und richtige Puffer-Bedingungen sind entscheidend für die Maximierung der Lebensdauer des seziert Larven. Wenn es richtig getan haben, seziert Larven robust Vesikeltransport für 2-3 Stunden unter physiologischen Bedingungen gezeigt. Wir nutzen die UAS-GAL4-Methode<sup> 1</sup> Zum Ausdruck zu bringen GFP-markierten APP oder Synaptotagmin Vesikel innerhalb eines einzigen Axon oder viele Axone in Larven segmentalen Nerven durch verschiedene neuronale GAL4-Treiber. Andere fluoreszenzmarkierten Marker, zum Beispiel Mitochondrien (MitoTracker) oder Lysosomen (LysoTracker), kann auch für die Larven vor der Anzeige angewendet werden. GFP-Vesikel Bewegung und der Bewegung von Teilchen können gleichzeitig angezeigt werden mit unterschiedlichen Wellenlängen.

Protocol

1. Vorbereitung der Reagenzien Bereiten Sie die Dissektion Puffer Vorbereitung, indem Sie die folgenden Verbindungen: 128 mM NaCl, 1 mM EGTA, 4 mM MgCl 2, 2 mM KCl, 5 mM HEPES und 36 mM Saccharose in 1000 ml, pH auf 7,2 und Filter zu sterilisieren. 2. Vorbereitung für die Präparation Siligard cube: Das Gel wird auf etwa einen Zentimeter breit, 1 cm lang und ca. 1cm hoch geschnitten. Das Gel Würfel ist auf einem Glasträger beim Präparieren platziert…

Discussion

In-vivo-Bildgebung der synaptischen Vesikel Transport innerhalb Drosophila Larve segmentalen Nerven ist ein leistungsfähiges Werkzeug für die Erforschung der Mechanismen in axonalen Transport. Wir haben bereits dieses Protokoll verwendet, um den Transport Dynamik innerhalb larvalen Nerven Ausdruck erweitert polyQ wiederholt, um aufzuklären, wie Ausbau der wiederholt die Dynamik der Vesikeltransport beeinflussen 3 zu bewerten. Über dieses Protokoll die Geschwindigkeit der Vesikel Bewegung…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SG wird durch Mittel aus der State University of New York at Buffalo und von John R. Oishei Foundation unterstützt.

MK wurde von einem Student Research Award CURCA bei UB unterstützt.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
1 Pair Micro Dissection Scissors   Fine Scientific   Spring scissors – 6mm blade. 0.125 mm tip diameter
2 Pair Forceps   Fischer Scientific   Fisherbrand Dissecting Micro-Adson serrated tip forceps
Box of Dissection Pins   Fine Scientific   Minutien Pins 0.1mm diameter

References

  1. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
  2. Hurd, D. D., Saxton, W. M. Kinesin mutations cause motor neuron disease phenotypes by disrupting fast axonal transport in Drosophila. Genetics. 144, 1075-1085 (1996).
  3. Gunawardena, S., Her, L. S., Brusch, R. G., Laymon, R. A., Niesman, I. R., Gordesky-Gold, B., Sintasath, L., Bonini, N. M., Goldstein, L. S. Disruption of axonal transport by loss of huntingtin or expression of pathogenic polyQ proteins in Drosophila. Neuron. 40, 25-40 (2003).
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Cite This Article
Kuznicki, M. L., Gunawardena, S. In vivo Visualization of Synaptic Vesicles Within Drosophila Larval Segmental Axons. J. Vis. Exp. (44), e2151, doi:10.3791/2151 (2010).

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