عزل خلايا الدماغ والحبل الشوكي وحيدات النوى Percoll باستخدام التدرجات
Summary
المقالة الحالية يصف بروتوكول السريع لعزل خلايا وحيدات النوى بكفاءة من أنسجة الحبل الشوكي والدماغ التي يمكن استخدامها بشكل فعال لتحليل تدفق cytometric.
Abstract
مطلوب في كثير من الأحيان عزل الخلايا المناعية التي التسلل الى الجهاز العصبي المركزي (CNS) خلال والعدوى المناعة الذاتية ، والصدمات النفسية أو تنكس عصبي ، لتحديد النمط الظاهري ووظائفها المستجيب. النهج النسيجية هي مفيدة لتحديد موقع الخلايا والتسلل لتحليل الجهاز العصبي المركزي المرتبطة الأمراض. ومع ذلك ، محدودة في الموضع الكيمياء النسيجية وتقنيات التلوين مناعي من قبل عدد من الأجسام المضادة التي يمكن استخدامها في وقت واحد لتميز فرعية الخلايا المناعية في نسيج معين. ولذلك ، والنهج النسيجية بالتعاون مع phenotyping المناعة بواسطة التدفق الخلوي حاسمة لتوصيف كامل لتكوين تسلل CNS المحلية. ويستند هذا البروتوكول على الفصل بين الجهاز العصبي المركزي التعليق على مدى الخلوية التدرجات percoll discontinous. المقالة الحالية يصف بروتوكول السريع لعزل خلايا وحيدات النوى بكفاءة من أنسجة الحبل الشوكي والدماغ التي يمكن استخدامها بشكل فعال لتحديد مختلف السكان الخلايا المناعية في عينة واحدة بواسطة التدفق الخلوي.
Protocol
Discussion
وقد استخدمت تحليلات علامات سطح الخلية في الجهاز العصبي المركزي الكريات البيض من الأنسجة الملتهبة والفأر العادي لعدة عقود 1-3. وتستند بروتوكولات العزل في فصل الخلايا الدبقية الصغيرة والكريات البيض بنسبة 4 الطرد المركزي الكثافة. نحن هنا وصف طريقة سريعة وفع?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
وأيد هذا العمل من قبل الجمعية الوطنية لمرض التصلب العصبي المتعدد (TA 3021 – A1 / T لAEC) وجامعة تكساس في سان انطونيو.
Materials
Tissue homogenization and Gradients
- Percoll (Amersham)
- 10X Hanks’ Balanced Salt Solution, without Calcium and Magnesium (Gibco)
- RPMI Medium 1640, without phenol red (Gibco)
- 7-ml or 15-ml Dounce Tissue Grinders (VWR)
Flow cytometry
- Cell Staining Buffer (Biolegend)
- Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block), BD Pharmingen
- Hemacytometer (Fisher)
- Anti-mouse CD45 (clone 30-F11), CD4 (clone RM4-5), CD19 (clone 6D5), BioLegend
- 10X Phosphate Buffered Saline, without Calcium and Magnesium (Thermo Scientific)
- Paraformaldehyde (Sigma Aldrich)
- Flow cytometry analysis performed with a LSR II (BD Biosciences)
References
- Sedgwick, J. D. Isolation and direct characterization of resident microglial cells from the normal and inflamed central nervous system. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 7438-7442 (1991).
- Ponomarev, E. D., Shriver, L. P., Maresz, K., Dittel, B. N. Microglial cell activation and proliferation precedes the onset of CNS autoimmunity. J. Neurosci. Res. 81, 374-389 (2005).
- Ford, A. L., Goodsall, A. L., Hickey, W. F., Sedgwick, J. D. Normal adult ramified microglia separated from other central nervous system macrophages by flow cytometric sorting. Phenotypic differences defined and direct ex vivo antigen presentation to myelin basic protein-reactive CD4+ T cells compared. J Immunol. 154, 4309-4321 (1995).
- Cardona, A. E., Huang, D., Sasse, M. E., Ransohoff, R. M. Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry. Nat. Protoc. 1, 1947-1951 (2006).
- Juedes, A. E., Ruddle, N. H. Resident and infiltrating central nervous system APCs regulate the emergence and resolution of experimental autoimmune encephalomyelitis. J. Immunol. 166, 5168-5175 (2001).
- Prinz, M., Priller, J. Tickets to the brain: Role of CCR2 and CX(3)CR1 in myeloid cell entry in the CNS. J Neuroimmunol. , (2010).
- Mildner, A. Microglia in the adult brain arise from Ly-6ChiCCR2+ monocytes only under defined host conditions. Nat. Neurosci. 10, 1544-1553 (2007).
- Djukic, M. Circulating monocytes engraft in the brain, differentiate into microglia and contribute to the pathology following meningitis in mice. Brain. 129, 2394-2403 (2006).
