Summary

Respirometrische oxidatieve fosforylering Assessment in Saponin-gepermeabiliseerde Cardiac Vezels

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

Saponine-gepermeabiliseerde vezels voorbereiding in combinatie met respirometrische oxidatieve fosforylering analyse geeft integratieve beoordeling van de mitochondriale functie. Mitochondriale ademhaling in fysiologische en pathologische toestanden kan weerspiegelen verschillende regelgevende invloeden waaronder mitochondriale interacties, morfologie en biochemie.

Abstract

Onderzoek van mitochondriale functie is een belangrijke parameter van de cardiale fysiologie als mitochondriën betrokken zijn bij energie-metabolisme, oxidatieve stress, apoptose, veroudering, mitochondriale encephalomyopathies en drugs toxiciteit. Gezien deze, technologieën om cardiale mitochondriale functie te meten zijn in de vraag. Een techniek die een geïntegreerde benadering maakt gebruik van op maat mitochondriale functie is respirometrische oxidatieve fosforylering (OXPHOS) analyse.

Het principe van respirometrische OXPHOS beoordeling is gecentreerd rond het meten van zuurstof met behulp van een Clark-elektrode. Omdat de gepermeabiliseerde vezelbundel verbruikt zuurstof, zuurstof-concentratie in de gesloten kamer af. Met behulp van geselecteerde substraat-remmer-ontkoppelrail titratie protocollen, worden elektronen verstrekt aan specifieke plaatsen van het elektron transport keten, waardoor de evaluatie van de mitochondriale functie. Voorafgaand aan respirometrische analyse van de mitochondriale functie, mechanische en chemische voorbereidende technieken worden gebruikt om de sarcolemma van spiervezels permeabilize. Chemische permeabilisatie heeft saponine om selectief te perforeren het celmembraan met behoud van mobiele architectuur.

Dit document beschrijft uitvoerig de stappen die betrokken zijn bij de voorbereiding van saponine huid cardiale vezels voor zuurstofverbruik metingen om mitochondriale OXPHOS te evalueren. Bovendien, het oplossen van problemen advies evenals specifieke substraten, remmers en uncouplers die kunnen worden gebruikt om de mitochondriën functioneren vast te stellen op specifieke plaatsen van het elektron transport keten geleverd. Belangrijk is, kan de beschreven protocol eenvoudig worden toegepast op hart-en skeletspieren weefsel van verschillende diermodellen en menselijke monsters.

Protocol

1. Bereiding van het reagens De ontspanning en het behoud oplossing (RP Solution) is bereid zoals eerder beschreven met kleine aanpassingen een. Kortom, de RP-oplossing bestaat uit 2.77mM CAK 2 EGTA, 7.23mM K 2 EGTA, 20mm imidazol, 0.5mm dithiothreitol, 20mm taurine, 50 mM K-MES, 6,56 MgCl 2, 5.7mm ATP, 14.3mM phosphocreatine, pH 7,1, aangepast bij kamertemperatuur (RT). Filtreer de oplossing door een 0,45-um filter om te steriliseren. Verdeel het deeg in 15 ml (Fal…

Discussion

De saponine-gepermeabiliseerde cardiale fiber techniek biedt een uniek compromis tussen in vitro en in vivo evaluatie van de mitochondriale OXPHOS zuurstof verbruik. Voordelen van deze techniek zijn onder meer fysiologische relevantie in vergelijking met geïsoleerde mitochondria als cellulaire architectuur is bewaard gebleven. Terwijl de plasmamembraan is afgebroken, intracellulaire membraan structuren met inbegrip van mitochondria 12, 14, 14 sarcoplasmatisch reticulum, myofilamenten en het…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd ondersteund door de Canadese Institutes of Health Research en Genome Canada. JS houdt salaris ondersteuning awards van de Alberta Heritage Foundation voor Medisch Onderzoek, Hart en Stroke Foundation van Canada en de Canadese Diabetes Association. Het laboratorium wil de technische bijstand van Oroboros Instruments te erkennen tijdens de overname van de saponine-gepermeabiliseerde glasvezel techniek.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
100% Ethanol   Fisher Scientific HC600  
70% Ethanol   Fisher Scientific HC-1000  
Adenosine 5′-diphosphate monopotassium salt dihydrate (ADP)   Sigma A5285  
Albumin from bovine serum essentially fatty acid–free   Sigma A-6003  
Antimycin A   Sigma A8674  
Ascobic acid   Sigma A4403  
Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate (ATP)   Sigma A2383  
Atractyloside   Sigma A6882  
Calcium carbonate   Sigma C4830  
Carbonyl cyanide p-(trifluoromethoxy) phenylhydrazone (FCCP)   Sigma C2920  
Cytochrome c   Sigma C7752  
Digitonin   Sigma D141  
Dithiothreitol   Sigma D9779  
Ethylene glycol-bis-(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA)   Sigma E4378  
Glutamic acid   Sigma 27647  
HEPES   Sigma H4034  
Imidazole   Sigma I5513  
Ketamine   Pfizer   Ketaset
Lactobionic acid   Sigma 153516  
Magnesium chloride (MgCl2)   Sigma M9272  
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2∙6H2O)   Sigma M9272  
Malic acid   Sigma M1000  
MES   Sigma M3671  
N,N,N’,N’-Tetramethyl- pphenylenediamine Dihydrochloride (TMPD)   Sigma T3134  
Oligomycin   Sigma O4876  
Phosphocreatine   Sigma P7936  
Potassium Chloride   Sigma P9541  
Potassium Hydroxide   Sigma P5958  
Potassium cyanide   Fluka 60178  
Potassium phosphate monobasic   Sigma P5655  
Rotenone   Sigma R8875  
Saponin   Sigma 47036  
Sodium Pentobarbital   Ceva Sante Animale 1715 138 Conc. 54.7 mg/ml
Sodium pyruvate   Sigma P2256  
Succinic acid   Sigma S3674  
Sucrose   Sigma S7903  
Taurine   Sigma T8691  
Xylazine   Bayer   Rompun
ddH2O        
Ice        
Oroboros Oxygraph-2k   Oroboros Instruments    
Kimwipes   VWR 21905-026  
15ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-368  
50ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-364  
Straight Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-50B  
Curved Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-57B  
Straight Surgery Scissors   George Tiemann & Co. 105-402  
Sterile Surgical Blade   VWR BD371610  
0.45-μm Syringe filters   VWR CA28145-485  
pH meter   VWR CA11388-308  
Glass Petri dishes   VWR 89000-300  
12-well Polystyrene Tissue Culture Plates   VWR 82050-926  
Plate Stirrer   VWR 97042-594  
Fisherbrand Microbars   Fisher Scientific 14-511-67  
Weigh Scale   VWR CA11278-162  
10μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-815-1  
25μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-7  
50μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-5  
Nalgene Squeeze Bottles   Wilkem Scientific LNA2407-1000  
Polystyrene Weighing Dishes   VWR 89106-750  
Dissecting Microscope   Olympus    

References

  1. Saks, V. A., Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V. Permeabilized cell and skinned fiber techniques in studies of mitochondrial function in vivo. Mol Cell Biochem. 184, 81-100 (1998).
  2. Gnaiger, E., Kuznetsov, A. V., Schneeberger, S., Heldmaier, G., Klingenspor, M. Mitochondria in the cold. Life in the Cold. , 431-442 (2000).
  3. Rasmussen, H. N., Rasmussen, U. F. Oxygen solubilities of media used in electrochemical respiration measurements. Anal Biochem. 319, 105-113 (2003).
  4. Visscher, G. D. e., Rooker, S., Jorens, P. Pentobarbital fails to reduce cerebral oxygen consumption early after non-hemorrhagic closed head injury in rats. J Neurotrauma. 22, 793-806 (2005).
  5. Kuznetsov, A. V., Veksler, V., Gellerich, F. N. Analysis of mitochondrial function in situ in permeabilized muscle fibers, tissues and cells. Nat Protoc. 3, 965-976 (2008).
  6. Gnaiger, E. Oxygen conformance of cellular respiration. A perspective of mitochondrial physiology. Adv Exp Med Biol. 543, 39-55 (2003).
  7. Gnaiger, E. Capacity of oxidative phosphorylation in human skeletal muscle: new perspectives of mitochondrial physiology. Int J Biochem Cell Biol. 41, 1837-1845 .
  8. Sena, S., Hu, P., Zhang, D. Impaired insulin signaling accelerates cardiac mitochondrial dysfunction after myocardial infarction. J Mol Cell Cardiol. 46, 910-918 (2009).
  9. Boudina, S., Sena, S., O’Neill, B. T. Reduced mitochondrial oxidative capacity and increased mitochondrial uncoupling impair myocardial energetics in obesity. Circulation. 112, 2686-2695 (2005).
  10. Lenaz, G., Genova, M. L. Structure and organization of mitochondrial respiratory complexes: a new understanding of an old subject. Antioxid Redox Signal. 12, 961-1008 .
  11. Lemieux, H., Hoppel, C. L. Mitochondria in the human heart. J Bioenerg Biomembr. 41, 99-106 (2009).
  12. O, . Retarded diffusion of ADP in cardiomyocytes: possible role of mitochondrial outer membrane and creatine kinase in cellular regulation of oxidative phosphorylation. Biochim Biophys Acta. 1144, 134-148 (1993).
  13. Endo, M., Kitazawa, T., Morad, M. E-C coupling studies in skinned cardiac fibers. Biophysical Aspects of Cardiac Muscle. , 307-327 (1978).
  14. Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V., Sharov, V. G. Mitochondrial respiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinned fibers. Biochim Biophys Acta. 892, 191-196 (1987).
  15. Bangham, A. D., Horne, R. W., Glauert, A. M. Action of saponin on biological cell membranes. Nature. , 196-952 (1962).
  16. Daum, G. Lipids of mitochondria. Biochim Biophys Acta. 822, 1-42 (1985).
  17. Milner, D. J., Mavroidis, M., Weisleder, N. Desmin cytoskeleton linked to muscle mitochondrial distribution and respiratory function. J Cell Biol. 150, 1283-1298 (2000).
  18. Skladal, D., Sperl, W., Schranzhofer, R., Skladal, E., Gellerich, F., Wyss, M. Preservation of mitochondrial functions in human skeletal muscle during storage in high energy preservation solution (HEPS). What is Controlling Life?. , 268-271 (1994).
  19. Kuznetsov, A. V., Wiedemann, F. R., Winkler, K. Use of saponin-permeabilized muscle fibers for the diagnosis of mitochondrial diseases. Biofactors. 7, 221-223 (1998).
  20. Gnaiger, E., Dykens, J., Will, Y. Polarographic oxygen sensors, the oxygraph and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. , 327-352 (2008).
check_url/2431?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hughey, C. C., Hittel, D. S., Johnsen, V. L., Shearer, J. Respirometric Oxidative Phosphorylation Assessment in Saponin-permeabilized Cardiac Fibers. J. Vis. Exp. (48), e2431, doi:10.3791/2431 (2011).

View Video