Summary

Demonstration der Verwendung des neuartigen Gravitationskraft Spectrometer auf Stretch and Measure Faserproteinen

Published: March 19, 2011
doi:

Summary

Dies ist eine Schritt-für-Schritt-Anleitung zeigt den Zweck, den Betrieb und repräsentative Ergebnisse aus dem Roman Gravitationskraft Spektrometer.

Abstract

Das Studium der makromolekularen Struktur hat sich kritisch zur Aufklärung der molekularen Mechanismen und Funktion. Es gibt mehrere begrenzte, aber wichtige Bioinstrumente der Lage, die Prüfung der Kraft Abhängigkeit der strukturellen Merkmale in Proteine. Skala hat eine Begrenzung der Parameter, wie genau können die Forscher in den nanomechanischen Welt der Moleküle, wie Nukleinsäuren, Enzymen und Motor-Proteine, die lebenserhaltende Arbeit zu verrichten Peer worden. Atomic Force Microscopy (AFM) ist gut abgestimmt, um einheimische Strukturen Faserproteinen mit einem Abstand Auflösung auf Augenhöhe mit der Elektronenmikroskopie bestimmen. Doch in AFM-Studien sind die Kräfte in der Regel viel höher als ein einzelnes Molekül kann 1, 2 zu erleben. Optische Fallen (OT) sind sehr gut auf die Bestimmung der relative Abstand zwischen den eingeschlossenen Perlen, und sie verleihen können sehr kleine Forces 3. Allerdings stehen sie nicht nachgeben genaue absolute Länge der Moleküle unter-Studie. Molekulare Simulationen liefern unterstützende Informationen für solche Experimente, sondern in der Fähigkeit, die gleichen großen molekularen Größen, lange Zeiträume, Griff und überzeugen einige Forscher in Ermangelung anderer Belege 2, 4 begrenzt.

Die Gravitationskraft Spektrometer (GFS) füllt eine kritische Nische in das Arsenal der Ermittler durch eine einzigartige Kombination von Fähigkeiten. Dieses Instrument ist in der Lage Kräfte in der Regel mit 98% oder eine höhere Genauigkeit bei der femtonewton Bereich der Nanonewton Bereich. Die Abstandsmessungen derzeit sind in der Lage die Lösung der absolute molekulare Länge bis fünf Nanometer, und die relative bead Paar Abstände mit einer Genauigkeit vergleichbar mit einer optischen Falle. Außerdem kann die GFS bestimmen Dehnung oder Abwickeln, wo die Kraft der Nähe des Gleichgewichts ist, oder eine abgestufte Kraft gegen jede gemessene strukturelle Veränderungen gegenüberzustellen. Es ist sogar möglich, festzustellen, wie viele Aminosäuren sind in Abwickeln Veranstaltungen unter physiologischen Kraftbelastungen 2 beteiligt. Im Gegensatz zu anderen Methoden, wo es umfangreiche Kraftkalibrierung, dass alle Tests vorausgehen muss, erfordert die GFS keine solche Kraft Kalibrierung 5. Durch die Ergänzung der Stärken des anderen Methoden wird die GFS Lücken im Verständnis der Nanomechanik lebenswichtiger Proteine ​​und andere Makromoleküle zu überbrücken.

Protocol

Einführung in die Novel GFS-Konfiguration Die GFS besteht aus mehreren wesentlichen Komponenten: Eine regelmäßige Lichtmikroskop, eine Montierung, eine Kamera und einen Computer [Abb. 1]. Die versiegelten Flow-Zelle Kammer, die die Probe hält, ist auch nach der GFS-Design unverzichtbar. Das Licht-Mikroskop wird auf die Montierung angebracht, so der Umfang gedreht werden kann, in verschiedene Orientierungen im Raum. Diese Fähigkeit ermöglicht die statische Vektor der Schwerkraft zu nutzen…

Discussion

Bei der Konvertierung eines Films auf einem digital Schwellenwert Darstellung, ist es entscheidend für den Schwellenwert Bild, um die gleiche Fläche in jedem Frame des Videos zu erhalten. Da die Kügelchen in eine Perle Paar unabhängig voneinander bewegen, kann eine Drift in den Schwellenwert Bereichen auch dazu führen, die relativen Abstände zwischen den Schwerpunkten der Perlen zu treiben und führen zu signifikanten Fehler. Controlling der Schwelle Bereich reduziert den Fehler das Fünffache in die Abstandsmessu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dieses Material ist auf der Arbeit von der National Science Foundation unter Grant No 0842736 unterstützt werden.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
3-Aminopropyltriethoxysilane   Poly Sciences 919-30-2  
Acetone   Fisher Scientific A18P-4  
Pyridine   Sigma Aldrich 110-86-1  
Glutaraldehyde   Fisher Scientific G7776  
Glycine   Research Organics BP381-1  
Tris   Sigma 9682T  
Sodium azide   Amresco 71289  
BSA   Sigma Aldrich AMR-0332-100G  
NaCl   Sigma S7653  
EDTA   MSI E9884  
Nitrocellulose   Sigma 60443  
N-N Dimethyl Formamide   Extracted from Large New D4254  
Rabbit skeletal myosin II   Zealand White Rabbits (7-8) NA  
MF30 antibody (9-10)   Developmental Studies MF30  
MF20 antibody (6)   Hybridoma Bank MF20  
Lab microscope   Boreal WW57905M00  
Equatorial mount   Celestron CG-5  
Digital video cam   Sony XCDV60  
Caliper release   Cabelas IA-415482  
Compression spring   Jones Spring Co. 723  
Extension spring   Jones Spring Co. 770  
ImageJ   NIH NA  
Fire-i drivers & application   Unibrain 3.80  
Excel   Microsoft NA  

References

  1. Schwaiger, I., Sattler, C., Hostetter, D. R., Rief, M. The myosin coiled-coil is a truly elastic protein structure. Nat. Mater. 1, 232-235 (2002).
  2. Root, D. D., Yadavalli, V. M., Forbes, J. G., Wang, K. Coiled-coil nanomechanics and uncoiling and unfolding of the superhelix and alpha-helices of myosin. Biophysical Journal. 90, 2852-2866 (2006).
  3. Nishizaka, T., Miyata, H., Yoshikawa, H., Ishiwata, S., Kinosita, K. Unbinding force of a single motor molecule of muscle measured using optical tweezers. Nature. 377, 251-254 (1995).
  4. Gawalapu, R. K., Root, D. D. Fluorescence labeling and computational analysis of the strut of myosin’s 50 kDa cleft. Arch. Biochem. Biophys. 456, 102-111 (2006).
  5. Kellermayer, M. S. Z. Visualizing and manipulating individual protein. Molecules Physiol. Meas. 26, R119-R153 (2005).
  6. Shimizu, T., Dennis, J. E., Masaki, T., Fischman, D. A. Axial arrangement of the myosin rod in vertebrate thick filaments: immunoelectron microscopy with a monoclonal antibody to light meromyosin. J. Cell Biol. 101, 1115-1123 (1985).
  7. Godfrey, J. E., Harrington, W. F. Self-association in the myosin system at high ionic strength. I. Sensitivity of the interaction to pH and ionic environment. Biochemistry. 9, 886-893 (1970).
  8. Root, D. D., Stewart, S., Xu, J. Dynamic docking of myosin and actin observed with resonance energy transfer. Biochemistry. 41, 1786-1794 (2002).
  9. Xu, J., Root, D. D. Conformational Selection during Weak Binding at the Actin and Myosin Interface. Biophys. J. 79, 1498-1510 (2000).
  10. Sattin, B. D., Pelling, A. E., Goh, M. C. DNA base pair resolution by single molecule force spectroscopy. Nucleic Acids Res. 32, 4876-4883 (2004).
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Cite This Article
Dunn, J. W., Root, D. D. Demonstrating the Uses of the Novel Gravitational Force Spectrometer to Stretch and Measure Fibrous Proteins. J. Vis. Exp. (49), e2624, doi:10.3791/2624 (2011).

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