Summary

Démonstration des utilisations du spectromètre force gravitationnelle roman de s'étirer et de mesurer les protéines fibreuses

Published: March 19, 2011
doi:

Summary

Ceci est une étape-par étape indiquant l'objet, l'exploitation et des résultats représentatifs du spectromètre force gravitationnelle roman.

Abstract

L'étude de la structure macromoléculaire est devenue critique à l'élucidation des mécanismes moléculaires et de la fonction. Il ya plusieurs BioInstruments limité, mais important, capable de tester la dépendance vigueur de caractéristiques structurelles de protéines. Échelle a été un paramètre limitant de la précision avec les chercheurs peuvent les pairs dans le monde nanomécaniques de molécules, comme les acides nucléiques, enzymes et protéines motrices qui assurent maintien de la vie de travail. La microscopie à force atomique (AFM) est bien réglé pour déterminer les structures des protéines fibreuses natif avec une résolution de distance à égalité avec la microscopie électronique. Toutefois, dans les études de la force AFM, les forces sont généralement beaucoup plus élevé que une seule molécule pourrait l'expérience 1, 2. Pièges optiques (OT) sont très bons à la détermination de la distance relative entre les billes piégées et qu'elles peuvent transmettre des forces très petit 3. Cependant, ils ne donnent pas de précision longueurs absolues des molécules à l'étude. Simulations moléculaires fournissent des informations favorables à de telles expériences, mais ils sont limités dans la capacité à gérer les mêmes grandes tailles moléculaires, de longues périodes, et convaincre certains chercheurs en l'absence de preuves à l'appui d'autres 2, 4.

La force gravitationnelle spectromètre (SFG) remplit un créneau essentiel dans l'arsenal d'un enquêteur en offrant une combinaison unique de capacités. Cet instrument est capable de générer des forces en général, avec 98% ou plus de précision de la gamme à la gamme femtonewton nanonewton. Les mesures de distance sont actuellement capables de résoudre la longueur moléculaire absolue à cinq nanomètres, et relative perles distances de séparation paire avec une précision semblable à un piège optique. En outre, le SFP peut déterminer étirement ou dévidage où la force est à proximité de l'équilibre, ou de fournir une force graduée de juxtaposer contre toute modification structurelle mesurée. Il est même possible de déterminer combien de résidus d'acides aminés sont impliqués dans des événements dérouler sous une force physiologique 2. Contrairement à d'autres méthodes où il ya l'étalonnage vigueur vaste qui doit précéder toute épreuve, le SFP nécessite pas de calibration telle force 5. En complétant les forces d'autres méthodes, le GFS combler les lacunes dans la compréhension de la nanomécanique de protéines essentielles et d'autres macromolécules.

Protocol

Introduction à la nouvelle configuration GFS La SFP est constitué de plusieurs éléments essentiels: un microscope à lumière régulière, une monture équatoriale, une caméra et un ordinateur [Figure 1]. Les scellés de flux des cellules de chambre qui détient l'échantillon est également indispensable en fonction de la conception des SFP. Le microscope optique est monté sur la monture équatoriale de sorte que le champ peut être tourné dans différentes orientations dans l'…

Discussion

Lors de la conversion d'un film à une représentation numérique seuillée, il est crucial pour l'image seuillée pour maintenir la même région, dans chaque image de la vidéo. Parce que les perles dans une paire de billes se déplacent indépendamment les uns des autres, toute dérive dans les zones seuillée peuvent aussi causer les distances relatives entre les centroïdes des perles à la dérive et d'introduire des erreurs significatives. Contrôle de la zone seuil réduit l'erreur de cinq fois d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce matériau est basé sur des travaux appuyés par la Fondation nationale des sciences par la concession numéro 0842736.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
3-Aminopropyltriethoxysilane   Poly Sciences 919-30-2  
Acetone   Fisher Scientific A18P-4  
Pyridine   Sigma Aldrich 110-86-1  
Glutaraldehyde   Fisher Scientific G7776  
Glycine   Research Organics BP381-1  
Tris   Sigma 9682T  
Sodium azide   Amresco 71289  
BSA   Sigma Aldrich AMR-0332-100G  
NaCl   Sigma S7653  
EDTA   MSI E9884  
Nitrocellulose   Sigma 60443  
N-N Dimethyl Formamide   Extracted from Large New D4254  
Rabbit skeletal myosin II   Zealand White Rabbits (7-8) NA  
MF30 antibody (9-10)   Developmental Studies MF30  
MF20 antibody (6)   Hybridoma Bank MF20  
Lab microscope   Boreal WW57905M00  
Equatorial mount   Celestron CG-5  
Digital video cam   Sony XCDV60  
Caliper release   Cabelas IA-415482  
Compression spring   Jones Spring Co. 723  
Extension spring   Jones Spring Co. 770  
ImageJ   NIH NA  
Fire-i drivers & application   Unibrain 3.80  
Excel   Microsoft NA  

References

  1. Schwaiger, I., Sattler, C., Hostetter, D. R., Rief, M. The myosin coiled-coil is a truly elastic protein structure. Nat. Mater. 1, 232-235 (2002).
  2. Root, D. D., Yadavalli, V. M., Forbes, J. G., Wang, K. Coiled-coil nanomechanics and uncoiling and unfolding of the superhelix and alpha-helices of myosin. Biophysical Journal. 90, 2852-2866 (2006).
  3. Nishizaka, T., Miyata, H., Yoshikawa, H., Ishiwata, S., Kinosita, K. Unbinding force of a single motor molecule of muscle measured using optical tweezers. Nature. 377, 251-254 (1995).
  4. Gawalapu, R. K., Root, D. D. Fluorescence labeling and computational analysis of the strut of myosin’s 50 kDa cleft. Arch. Biochem. Biophys. 456, 102-111 (2006).
  5. Kellermayer, M. S. Z. Visualizing and manipulating individual protein. Molecules Physiol. Meas. 26, R119-R153 (2005).
  6. Shimizu, T., Dennis, J. E., Masaki, T., Fischman, D. A. Axial arrangement of the myosin rod in vertebrate thick filaments: immunoelectron microscopy with a monoclonal antibody to light meromyosin. J. Cell Biol. 101, 1115-1123 (1985).
  7. Godfrey, J. E., Harrington, W. F. Self-association in the myosin system at high ionic strength. I. Sensitivity of the interaction to pH and ionic environment. Biochemistry. 9, 886-893 (1970).
  8. Root, D. D., Stewart, S., Xu, J. Dynamic docking of myosin and actin observed with resonance energy transfer. Biochemistry. 41, 1786-1794 (2002).
  9. Xu, J., Root, D. D. Conformational Selection during Weak Binding at the Actin and Myosin Interface. Biophys. J. 79, 1498-1510 (2000).
  10. Sattin, B. D., Pelling, A. E., Goh, M. C. DNA base pair resolution by single molecule force spectroscopy. Nucleic Acids Res. 32, 4876-4883 (2004).
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Cite This Article
Dunn, J. W., Root, D. D. Demonstrating the Uses of the Novel Gravitational Force Spectrometer to Stretch and Measure Fibrous Proteins. J. Vis. Exp. (49), e2624, doi:10.3791/2624 (2011).

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