Summary

Germ Cell Transplantation og testis Tissue Xenografting i Mus

Published: February 06, 2012
doi:

Summary

Protokoller for bakterie celle transplantasjon og testis vev xenografting er beskrevet. Bakterie celle transplantasjon resultater i donor-derived spermatogenesen i mottakerlandene testikler og representerer en funksjonell rekonstituering analysen for identifisering av spermatogonial stamceller (SSCs). Testikkel vev xenografting reproduserer testis utvikling og spermatogenesen av ulike donor arter i mottakerlandene mus.

Abstract

Bakterie celle transplantasjon ble utviklet av Dr. Ralph Brinster og kolleger ved University of Pennsylvania i 1994 1,2. Disse banebrytende studier viste at mikroinjeksjon av kjønnsceller fra fruktbare donor mus inn i sædproduserende tubuli av infertile mottakerlandenes mus resulterer i donor-avledet spermatogenesen og sperm produksjon av mottakeren dyret to. Bruken av donor menn bærer bakteriell β-galaktosidase genet tillatt identifisering av donor-avledet spermatogenesen og overføring av donor haplotype til avkommet etter mottakerland dyr 1. Overraskende, etter transplantasjon inn i lumen av seminiferous tubuli, var transplanterte kjønnsceller kunne bevege seg fra luminal rommet til basalmembran hvor spermatogonier ligger tre. Det er generelt akseptert at bare SSCs er i stand til å kolonisere nisje og reetablere spermatogenesen i mottakerlandene testis. Derfor bakterie celletransplantasjon gir en funksjonell tilnærming for å studere stamcelleforskningen nisje i testis og å karakterisere antatte spermatogonial stamceller. Til dags dato er bakterie celle transplantasjon brukes til å belyse grunnleggende stamcelleforskningen biologi, for å produsere transgene dyr gjennom genetisk manipulering av kjønnsceller før transplantasjon 4,5, for å studere sertoli celle-bakterie celle interaksjon 6,7, SSC homing og kolonisering 3, 8, samt SSC selvfornyelse og differensiering 9,10.

Bakterie celle transplantasjon er også mulig i store arter 11. I disse de viktigste programmene er bevaring av fruktbarhet, formidling av elite genetikk i dyrepopulasjoner, og generering av transgene dyr som studiet av spermatogenesen og SSC biologi med denne teknikken er logistikkmessig vanskeligere og dyrere enn hos gnagere. Transplantasjon av kjønnsceller fra store arter i de seminiferøse tubuli av mus resulterer i colonization av donor cellene og spermatogonial ekspansjon, men ikke i sin fulle differensiering antakelig på grunn av inkompatibilitet av mottakeren somatiske kupé med kjønnsceller fra fylogenetisk fjerne arter 12. En alternativ tilnærming er transplantasjon av kjønnsceller fra store arter sammen med sine omkringliggende somatisk avdeling. Vi først rapportert i 2002, at små fragmenter av testikkel vev fra umodne hanner transplantert under dorsal huden av immunsvikt mus er i stand til å overleve og gjennomgå full utvikling med produksjon av befruktning kompetent sperm 13. Siden da testikkel vev xenografting har vist seg å være vellykket i mange arter, og dukket opp som et verdifullt alternativ til å studere testis utvikling og spermatogenesen av store dyr i mus 14.

Protocol

DEL A. Germ celle transplantasjon i mus 1. Utarbeidelse av mottaker mus Mottakere skal være immunologisk tolerant (enten genetisk tilpasset givere eller immun-mangelfull) til donor testis cellene. Mottakere skal være enten naturlig blottet for spermatogenesen (f.eks w / w v mus) eller utarmet av endogene kjønnsceller. Bakterie celle uttømming kan oppnås ved bestråling eller cellegifter som busulfan. I denne protokollen, beskriver vi metoden for å…

Discussion

1. Bakterie celle transplantasjon

Bakterie celle transplantasjon gir den eneste funksjonelle analysen for utvetydig bekreftelse av tilstedeværelse av spermatogonial stamceller (SSCs) i en celle befolkning. Bare SSCs kan hjem til og kolonisere SSC nisje på basalmembran og initiere donor-derived spermatogenesen. Bakterie celle transplantasjon gjorde det mulig å studere og manipulere SSCs på en enestående måte. Teknikken har blitt brukt til å produsere transgene dyr gjennom genetisk manipu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeid fra forfattere laboratoriet har vært støttet av USDA / CSREES / NRICGP (2007-35203-18213); NIH / NCRR (2 R01 RR17359-06), NIH / NIEHS (1 R21 ES014856-01A2) og Alberta innovates – Helse Solutions.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Collagenase (type IV) Sigma C5138
Trypsin-EDTA Invitrogen 25200-056
DNaseI Sigma DN25
DMEM Invitrogen 31053-028
Trypan blue stain Invitrogen 15250-061
Nylon mesh cell strainer BD biosciences 352340 (40μm)
352350 (70μm)
Busulfan Sigma B2635
Thin-Wall Glass Capillaries World Precision Instrument TW 100-3
BD intramedic plyethylene tubing (PE100) BD CA-63018-725
Ethicon 6-0 Silk Suture Ethicon 706G
Wound clips BD 427631
Sigmacote Sigma SL2
X-gal Sigma B4252
Potassium Ferrocyanide Sigma P9387
Potassium Ferricyanide Sigma P3667
magnesium chloride Sigma 208337
sodium deoxycholate Sigma D6750
N,N-Dimethylformamide Sigma D4551
Igepal CA-630 Sigma 18896

References

  1. Brinster, R. L., Avarbock, M. R. Germline transmission of donor haplotype following spermatogonial transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (24), 11303-11303 (1994).
  2. Brinster, R. L., Zimmermann, J. W. Spermatogenesis following male germ-cell transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (24), 11298-11298 (1994).
  3. Nagano, M., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Pattern and kinetics of mouse donor spermatogonial stem cell colonization in recipient testes. Biology of Reproduction. 60 (6), 1429-1429 (1999).
  4. Nagano, M., Brinster, C. J., Orwig, K. E. Transgenic mice produced by retroviral transduction of male germ-line stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (23), 13090-13090 (2001).
  5. Ryu, B. Y., Orwig, K. E., Oatley, J. M. Efficient generation of transgenic rats through the male germline using lentiviral transduction and transplantation of spermatogonial stem cells. Journal of Andrology. 28 (2), 353-353 (2007).
  6. Hess, R. A., Cooke, P. S., Hofmann, M. C. Mechanistic insights into the regulation of the spermatogonial stem cell niche. Cell Cycle. 5 (11), 1164-1164 (2006).
  7. Oatley, M. J., Racicot, K. E., Oatley, J. M. Sertoli cells dictate spermatogonial stem cell niches in the mouse testis. Biology of Reproduction. 84 (4), 639-639 (2011).
  8. Nagano, M. C. Homing efficiency and proliferation kinetics of male germ line stem cells following transplantation in mice. Biology of Reproduction. 69 (2), 701-701 (2003).
  9. Kubota, H., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Growth factors essential for self-renewal and expansion of mouse spermatogonial stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (47), 16489-16489 (2004).
  10. Oatley, J. M., Avarbock, M. R., Telaranta, A. I. Identifying genes important for spermatogonial stem cell self-renewal and survival. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (25), 9524-9524 (2006).
  11. Dobrinski, I. Germ cell transplantation and testis tissue xenografting in domestic animals. Animal Reproduction Science. 89 (1-4), 137-137 (2005).
  12. Dobrinski, I., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Transplantation of germ cells from rabbits and dogs into mouse testes. Biology of Reproduction. 61 (5), 1331-1331 (1999).
  13. Honaramooz, A., Snedaker, A., Boiani, M. Sperm from neonatal mammalian testes grafted in mice. Nature. 418 (6899), 778-778 (2002).
  14. Rodriguez-Sosa, J. R., Dobrinski, I. Recent developments in testis tissue xenografting. Reproduction. 138 (2), 187-187 (2009).
  15. Dobrinski, I., Rathi, R. Ectopic grafting of mammalian testis tissue into mouse hosts. Methods in Molecular Biology. 139, 450-450 (2008).
  16. Rodriguez-Sosa, J. R., Schlatt, S., Dobrinski, I., Seli, E., Agarwal, A. Testicular tissue transplantation for fertility preservation. Fertility Preservation: Emerging Technologies and Clinical Applications. , 331-331 (2011).
  17. Rathi, R., Honaramooz, A., Zeng, W. Germ cell fate and seminiferous tubule development in bovine testis xenografts. Reproduction. 130 (6), 923-923 (2005).
  18. Rathi, R., Honaramooz, A., Zeng, W. Germ cell development in equine testis tissue xenografted into mice. Reproduction. 131 (6), 1091-1091 (2006).
  19. Kim, Y., Selvaraj, V., Pukazhenthi, B. Effect of donor age on success of spermatogenesis in feline testis xenografts. Reproduction, Fertility, and Development. 19 (7), 869-869 (2007).
  20. Arregui, L., Rathi, R., Zeng, W. Xenografting of adult mammalian testis tissue. Animal Reproduction Science. 106 (1-2), 65-65 (2008).
  21. Schlatt, S., Honaramooz, A., Ehmcke, J. Limited survival of adult human testicular tissue as ectopic xenograft. Human Reproduction. 21 (2), 384-384 (2006).
  22. Shinohara, T., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. beta1- and alpha6-integrin are surface markers on mouse spermatogonial stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (10), 5504-5504 (1999).
  23. Kanatsu-Shinohara, M., Toyokuni, S., Shinohara, T. CD9 is a surface marker on mouse and rat male germline stem cells. Biology of Reproduction. 70 (1), 70-70 (2004).
  24. Ryu, B. Y., Orwig, K. E., Oatley, J. M. Effects of aging and niche microenvironment on spermatogonial stem cell self-renewal. Stem Cells. 24 (6), 1505-1505 (2006).
  25. Costoya, J. A., Hobbs, R. M., Barna, M. Essential role of Plzf in maintenance of spermatogonial stem cells. Nature Genetics. 36 (6), 653-653 (2004).
  26. Morrow, C. M., Hostetler, C. E., Griswold, M. D. ETV5 is required for continuous spermatogenesis in adult mice and may mediate blood testes barrier function and testicular immune privilege. Annals of the New York Academy of Sciences. 1120, 144-144 (2007).
  27. Zeng, W., Snedaker, A. K., Megee, S. Preservation and transplantation of porcine testis tissue. Reproduction, Fertility and Development. 21 (3), 489-489 (2009).
  28. Jahnukainen, K., Ehmcke, J., Hergenrother, S. D. Effect of cold storage and cryopreservation of immature non-human primate testicular tissue on spermatogonial stem cell potential in xenografts. Human Reproduction. 22 (4), 1060-1060 (2007).
  29. Rathi, R., Zeng, W., Megee, S. Maturation of testicular tissue from infant monkeys after xenografting into mice. Endocrinology. 149 (10), 5288-5288 (2008).
  30. Honaramooz, A., Li, M. W., Penedo, M. C. Accelerated maturation of primate testis by xenografting into mice. Biology of Reproduction. 70 (5), 1500-1500 (2004).

Play Video

Cite This Article
Tang, L., Rodriguez-Sosa, J. R., Dobrinski, I. Germ Cell Transplantation and Testis Tissue Xenografting in Mice. J. Vis. Exp. (60), e3545, doi:10.3791/3545 (2012).

View Video