Summary

Induzione di Graft-versus-host disease e<em> In Vivo</em> T monitoraggio cellulare Utilizzando un MHC-abbinato modello murino

Published: August 29, 2012
doi:

Summary

Murine trapianto di midollo osseo è una tecnica ampiamente utilizzata per studiare i meccanismi immunologici che regolano graft-versus-host disease negli esseri umani. La capacità di monitorare il traffico delle cellule T modelli<em> In vivo</em> Consente per l'analisi dettagliata dello sviluppo e la perpetuazione delle risposte delle cellule T durante la graft-versus-host disease.

Abstract

Graft-versus-host disease (GVHD) è la barriera che limita l'ampio utilizzo di trapianto di midollo osseo come terapia curativa per una serie di carenze ematologiche. GVHD è causata da cellule T mature alloreattive presenti nel trapianto midollo osseo che sono infuse nel ricevente e causare danni agli organi di accoglienza. Tuttavia, nei topi, cellule T deve essere aggiunto al inoculo midollo osseo a causare GVHD. Sebbene un ampio lavoro è stato fatto per caratterizzare le risposte delle cellule T dopo trapianto, bioluminescente tecnologia di imaging è un metodo non invasivo per monitorare il traffico delle cellule T modelli in vivo.

A seguito di irradiazione letale, topi riceventi sono trapiantati con cellule del midollo osseo e splenociti di topi donatori. Sottopopolazioni di cellule T da L2G85.B6 (topi transgenici che esprimono costitutivamente luciferasi) sono incluse nel trapianto. Da trapiantare solo alcune sottopopolazioni di cellule T, è in grado di monitorare specifici sottogruppi di cellule T in vivo,e in base alla loro posizione, sviluppare ipotesi sul ruolo di specifici sottogruppi di cellule T nel promuovere la GVHD in vari momenti. A intervalli predeterminati dopo il trapianto, topi riceventi vengono esposte con una Xenogen IVIS camera CCD. L'intensità della luce può essere quantificato utilizzando il software Image Vivere per generare una pseudo-immagine a colori in base all'intensità fotone (rosso = alta intensità, viola intensità = bassa).

Tra 4-7 dopo il trapianto giorni, topi riceventi cominciano a mostrare segni clinici di GVHD. Cooke et al. 1 messo a punto un sistema di valutazione per quantificare la progressione della malattia in base al destinatario pelliccia trama topi, l'integrità della pelle, attività, perdita di peso, e la postura. I topi sono segnati tutti i giorni, e l'eutanasia quando diventano moribondi. Topi riceventi diventano in genere moribondo 20-30 giorni dopo il trapianto.

Modelli murini sono strumenti preziosi per lo studio della immunologia di GVHD. Selettivamente il trapianto delle cellule T sottoinsiemi particolare alminimi per l'identificazione accurata dei ruoli ogni sottoinsieme gioca. Non invasivo di monitoraggio risposte delle cellule T in vivo aggiunge un ulteriore livello di valore per i modelli murini GVHD.

Protocol

1. Irradiazione letale Inserire fino a 10 topi riceventi in una gabbia microisolator compatibile con l'irradiatore da utilizzare. Irradiare in 2 dosi uguali sommatori dose totale (dose totale = 9 cGy per i destinatari BALB.B). Irraggiamento secondo dovrebbe essere di 3 ore dopo la prima. L'iniezione deve avvenire tra 4-6 ore dopo l'irradiazione finale. Topi irradiano in entrambi 137 sorgente Cs o RS2, 000, irradiatore. Dopo la seconda dose di radiazioni, i topi in ga…

Discussion

Il protocollo per indurre GVHD nei topi qui presentato rappresenta un modello clinicamente rilevante di GVHD murino. Fondato da Berger et al. Nel 1994, il C57Bl / 6 in combinazione ceppo BALB.B è MHC-abbinato, con una mortalità GVHD mediata da CD4, CD8 dipendenti effettori T 2, molto simili allo scenario clinico più comune 3. E 'noto che trapiantando cellule T CD8 sola non causa GVHD in questo modello, tuttavia, la progressione della malattia è significativamente peggiore quando si…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Siamo in debito con Alice Gaughan e-Jiao Jing Wang cui eccellente supporto tecnico, apporto intellettuale, e sostegno morale hanno contribuito a spostare in avanti questi studi. Questi studi sono stati sostenuti dalla concessione NIH AI036532 a GAH.

Materials

Name of Reagent Company Catalogue Number Comments
RPMI 1640 Invitrogen 12633-012  
Fetal Calf Serum Invitrogen 10439016  
40 μM Cell Strainer BD Biosciences 352340  
CD3e-Biotin Miltenyi Biotech 130-093-021  
Anti-Biotin Microbeads Miltenyi Biotech 130-091-147  
CD8a Microbeads Miltenyi Biotech 130-049-401 Used to deplete CD8 T cells from spleen.
CD8a Purification Antibody Cocktail Miltenyi Biotech 130-095-236 Used to purify CD8 T cells from spleen.
D-Luciferin Caliper Life Sciences 122796  

References

  1. Cooke, K. R. An experimental model of idiopathic pneumonia syndrome after bone marrow transplantation: The roles of minor H antigens and endotoxin. Blood. 88, 3230-3239 (1996).
  2. Berger, M. T cell subsets involved in lethal graft-versus-host disease directed to immunodominant minor histocompatibility antigens. Transplantation. 57, 1095-1102 (1994).
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Cite This Article
Anthony, B. A., Hadley, G. A. Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model. J. Vis. Exp. (66), e3697, doi:10.3791/3697 (2012).

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